Представленный материал является образцом учебного исследования, примером структуры и содержания учебного исследования по заявленной теме. Размещён исключительно в информационных и ознакомительных целях.
Workspay.ru оказывает информационные услуги по сбору, обработке и структурированию материалов в соответствии с требованиями заказчика.
Размещение материала не означает публикацию произведения впервые и не предполагает передачу исключительных авторских прав третьим лицам.
Материал не предназначен для дословной сдачи в образовательные организации и требует самостоятельной переработки с соблюдением законодательства Российской Федерации об авторском праве и принципов академической добросовестности.
Авторские права на исходные материалы принадлежат их законным правообладателям. В случае возникновения вопросов, связанных с размещённым материалом, просим направить обращение через форму обратной связи.
ℹ️Настоящий учебно-методический информационный материал размещён в ознакомительных и исследовательских целях и представляет собой пример учебного исследования. Не является готовым научным трудом и требует самостоятельной переработки.
ВВЕДЕНИЕ 4
1 ОСНОВНАЯ ЧАСТЬ 6
1.1 Лейкозы 6
1.2 Острый миелоидный лейкоз 7
1.2.1 Генетическая основа развития острого миелоидного лейкоза 8
1.2.2 Мутации гена FLT3 10
1.2.3 Стратификация ОМЛ по группам прогноза 12
1.3 Миелопролиферативные неоплазмы 15
1.3.1 Строение сигнального пути JAK/STAT 15
1.3.2 Мутации генов сигнальных путей 18
1.3.3 Соматические мутации в гене кальретикулина (CALR) 20
1.4 Методы выявления мутаций в гене FLT3 22
1.5 Методы выявления мутаций в гене CALR 23
1.6 High Resolution Melt 24
2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ 28
2.1 Объект исследования 28
2.2 Выделение ДНК из клинического материала с использованием реагента
«ДНК-сорб-B» 28
2.3 Измерение концентрации ДНК 30
2.4 Проведение ПЦР-HRM с использованием комплекта реагентов Precision
Melt Supermix (Bio-Rad, США) 31
ЗАКЛЮЧЕНИЕ 35
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ 36
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ 37
📖 Введение
Лейкозы представляют собой широкую группу гемопоэтических злокачественных новообразований. В норме в костном мозге располагаются стволовые клетки крови, которые обладают способностью к дифференцировке и выполнению специализированных функций в организме. Из этих стволовых клеток развиваются все разновидности форменных элементов крови. При лейкозах кровяные клетки способны размножаться на более поздних стадиях гемопоэза, чем в норме, что приводит к замещению нормальных клеток костного мозга опухолевыми клетками.
Весь комплекс кроветворения можно разделить на два направления (ростка): лимфопоэз (образование лимфоцитов) и миелопоэз (образование остальных типов клеток крови). В зависимости от того, какой росток кроветворения поражен, лейкозы делятся на лимфоидные (лимфобластные) и миелоидные (миелобластные). По клиническому течению лейкозы делятся на острые и хронические [1,2].
Ассоциированные с лейкозами соматические мутации очень разнообразны, встречаются с разной частотой и разным уровнем аллельной нагрузки. Поэтому на начальном этапе выполнения молекулярно-генетических диагностических процедур по выявлению мутаций желательно иметь возможность проведения в лаборатории скрининговых методов. Это особенно важно, когда проводится анализ редких и разнообразных мутаций, например, мутаций в гене FLT3 и CALR.
HRM-анализ позиционируется как быстрый, надежный и высокочувствительный метод для скрининга как однонуклеотидных замен, так и инсерций и делеций. Кроме того, он не требует больших временных затрат.
Исходя из вышесказанного, целью данной работы является скрининг соматических мутаций в генах FLT3 и CALR методом HRM-анализа при использовании амплификатора «CFX96» и программы «Precision Melt Analysis» (Bio-Rad, США) для пациентов с диагнозом ОМЛ и Ph-МПН.
Для достижения поставленной цели были сформулированы следующие задачи:
4. Разработать тест-системы для выявления соматических мутаций в генах FLT3 и CALR на основе HRM-анализа.
5. Апробировать разработанные тест-системы на образцах ДНК от пациентов с диагнозом ОМЛ и Ph-МПН и ранее выявленными мутациями в генах FLT3 и CALR соответственно.
6. Сравнить полученные результаты с данными, полученными при использовании других молекулярно-генетических технологий
✅ Заключение
1. Разработаны тест-системы для выявления соматических мутаций в генах FLT3 и CALR на основе HRM-анализа.
2. Во всех проанализированных методом HRM-анализа образцах ДНК от пациентов с диагнозом ОМЛ и Ph-МПН выявлены соответствующие мутации в генах FLT3 и CALR.
3. Тип выявленных методом HRM-анализа мутаций во всех образцах совпал с мутациями, выявленными при использовании других молекулярно-генетических технологий.