ВВЕДЕНИЕ 4
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 7
1.1 Система фибринолиза. Плазминоген, плазмин 7
1.2 Структура плазминогена 9
1.3 Крингл-домены плазминогена 11
1.4 Активаторы плазминогена 15
1.4 Фибриновая сеть, система свёртывания крови 17
1.5 Окислительный стресс 25
1.6 Методы выявления модификаций в белковых молекулах 30
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ 36
2.1 Материалы исследования 36
2.2 Методы исследования 36
2.2.1 Выделение плазминогена 36
2.2.2 Выделение фибриногена 37
2.2.3 Оценка гомогенности полученных препаратов белка 38
2.2.4 Проверка амидолитической активности 38
2.2.5 Проверка ферментативной активности плазмина 38
2.2.6 Окисление плазминогена гипохлоритом (HOCl) 38
2.2.7 Хромато-масс-спектрометрический анализ (ВЭЖХ-МС/МС) 40
2.2.8 Инфракрасная спектроскопия 42
ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ... 43
3.1 Результаты проверки активности плазминогена (электрофорез) 43
3.2 Результаты проверки методом электрофореза эффекта HOCl/OCl-на
плазминоген 44
3.3 Результаты проверки кинетическим анализом активности плазмина
при увеличении количества HOCl/OCl- 46
3.4 Результаты проверки методом ИК-спектроскопии влияния на
вторичную структуру белка окисление плазминогена 47
3.5 Результаты проверки методом масс-спектрометрии возникновения
модификаций при окислении плазминогена гипохлоритом 52
ЗАКЛЮЧЕНИЕ 59
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ 61
Актуальность работы. Плазминоген играет значительную физиологическую и патологическую роль в ряде жизненно-важных процессов. Данный белок - предшественник плазмина, сериновой протеазы, основная функция которой - это осуществление внутрисосудистого тромболизиса, является недостаточно изученным белком плазмы крови в отношении его посттрансляционных окислительных модификаций и, как следствие, структурных нарушений.
Плазминоген является ключевым белком фибринолитической системы крови - важного защитного механизма предупреждения возникновения тромбозов. В основе деятельности фибринолитической системы находится реакция превращения плазминогена в активный фермент плазмин. Нарушение активации плазминогена приводит к угнетению фибринолиза и может привести к тромбозам, и как следствие к различным заболеваниям. Тромбоз — опасное состояние, которое может встречаться в том числе, как осложнение различных заболеваний [35].
В течение своей жизни организмы постоянно подвергаются воздействию систем, генерирующих активные формы кислорода, которые могут вызвать повреждения белков, нуклеиновых кислот и липидов. К ним относятся ряд факторов окружающей среды, таких как облучение (рентгеновские лучи, у-лучи, ультрафиолетовый свет), загрязняющие вещества в атмосфере (озон, N 2O 2 , NO 2, сигаретный дым); однако многие являются простыми побочными продуктами нормальных метаболических процессов, таких как автоокисление восстановленных форм электронных носителей (NAD (P) H, восстановленные флавины, цитохром P450s), воспалительные реакции, синтез оксида азота, катализируемые оксидазой реакции, реакции перекисного окисления липидов и реакции, катализируемые металлами (в том числе система Фентона). Окисление аминокислотного остатка, которое происходит в результате взаимодействия молекулы с АФК, может служить диагностическим признаком различных заболеваний, сопровождающимися повышенной генерацией свободных радикалов в организме.
Плазменные белки, которые защищены антиоксидантными ферментами в несопоставимо меньшей степени по сравнению с внутриклеточными белками, непрерывно подвергаются окислительным атакам со стороны нейтрофилов. Активация нейтрофилов как in vitro,так и in vivoпри определенных заболеваниях (например, при воспалительных процессах, атеросклерозе и др.) вызывает генерацию высоко реактивных АФК, таких как O2- и H2O2, и высвобождение фермента миелопероксидазы. Реакция последней с H2O2в присутствии физиологических концентраций Cl-приводит к образованию продукта HOCl/OCl-, который рассматривается одним из главных окислителей в плазме крови.
Целью работы является исследование особенности индуцированного гипохлоритом окисления молекулы плазминогена, влияние окисления на функцию фермента (плазмина) , проанализировать полученную информацию об обнаруженных окислительных модификациях и сопоставить их с функциональными нарушениями молекулы.
В соответствии с целью были поставлены следующие задачи:
1. Выделить плазминоген и оценить его гомогенность и функции;
2. Провести картирование молекул исследуемых белков методом масс-спектрометрии высокого разрешения для определения окислительно модифицированных аминокислотных остатков;
3. Сопоставить локализации окислительных модификаций в аминокислотных остатках исследуемого белка с возможными функциональными и структурными нарушениями;
4. Оценить влияние физиологического окислителя - гипохлорита на молекулу плазминогена.
Выпускная квалификационная работа написана на 66 листах, содержит 20 рисунков, 2 таблицы и список литературы на русском и английском языках из 72 источников.
В ходе выполнения бакалаврской работы было исследовано индуцированное гипохлоритом окисление плазминогена.
По результатам исследования можно сделать следующие выводы:
1. Выделен плазминоген и оценены его гомогенность и функции. Снижение протеолитической активности плазмина, полученного из окисленного плазминогена, подтверждается результатами фотометрии и электрофореза.
2. Произведено картирование молекул исследуемых белков методом масс-спектрометрии высокого разрешения и определенно окислительно модифицированные аминокислотные остатки. Показано, что 50 мкМ окислителя вовлекало в процесс окисления только крингл-домены KR-2, KR-4и сериновый, протеазный домен SP,в то время как при количестве окислителя 150 мкМ все структурные области плазминогена были окислены. Основная доля модифицированных остатков в плазминогене приходится на остатки метионинов и триптофанов.
3. Сопоставлены локализации окислительных модификаций в аминокислотных остатках исследуемого белка с возможными функциональными и структурными нарушениями. Данные ИК спектроскопии показывают, что под действием окислителя на Glu- плазминоген его вторичная структура подверглась перестройкам, отражающимся в снижении содержания а- и 310-helices, 0- turns, random coils на фоне существенного увеличения 0-sheets.
4. Показанно влияние физиологического окислителя - гипохлорита на молекулу плазминогена. Достаточно высокая толерантность плазминогена к окислению обусловлена как его закрытой конформацией, так и способностью некоторых из остатков метионинов служить ловушками АФК.
Совокупность полученных результатов позволяет сделать вывод о том, что молекула плазминогена проявляет достаточно высокую толерантность к действию окислителя, что может быть обусловлено как его закрытой конформацией, делающей недоступными для окисления ключевые в функциональном отношении аминокислотные остатки, так и способностью некоторых из остатков метионинов служить ловушками АФК.
1. Айсина Р. Б., Мухаметова Л. И. структура и функции системы плазминоген/плазмин // Биоорганическая химия. 2014. C. 642-657.
2. Арцукевич А.Н., Мальцев А.Н., Зинчук В.В. // Биохимические аспекты жизнедеятельности биологических систем. Сбор. науч. трудов съезда биохимиков Беларуссии. Гродно. 2000. С. 19-23.
3. Болдырев А.Л., Юнева М.О. Сорокина Е.В. Антиоксидантные системы в тканях мышей с ускоренным темпом старения // Биохимия. 2006. С. 1157-1163.
4. Гриценко Т. В., Деградация стрептокиназы и каталитические свойства комплекса плазмин-стрептокиназа // Биохимия. 2002. С. 50-57.
5. Дубинина Е. Е., Гавровская С.В, Кузьмич Е.В. Окислительная модификация белков: окисление триптофана и образование битирозина в очищенных белках с использованием системы Фентона // Биохимия. 2002. С. 413-421.
6. Кузник Б. И. Система гемостаза // Физиология человека М.: Медицина. 2000. С. 313-325.
7. Ласточка Л.Ю. Влияние ионизирующего излучения на белки, группы RCO, расщепление пептидной связи, инактивацию, окисление -SH // Радиационная химия органических соединений. 2000. С. 211-224.
8. Матсука И.В. Локализация и структурная характеристика лизинсвязывающих участков молекулы плазминогена // Украинский биохимический журнал. 1990. С. 83-86.
9. Розенфальд М.А., Юрина Л.В, Васильева А.Д. Свободно-радикальное окисление фрагментов d и e фибриногена // Доклады академии наук. 2014. С. 106-120.
10. Фархутдинова Л.М. Окислительный стресс, история вопроса // Вестник академии наук. 2015. C. 123-125.
11. Юсова Е.И. Низкомолекулярная стрептокиназа и эффект фибрина, Институт биохимии им. А. В. Палладина НАН Украины, Киев: 2013. С. 20.
12. Aebersold, R., M. Mann. Mass spectrometry-based proteomics // Nature. 2003. P. 198-207.
13. Annesley T, Rockwood A.L. Mass Spectrometry - Of Clinical Chemistry and Molecular Diagnostics. USA: 2006. - Chapter 7. P. 165-190.
14. Armstrong R.C. Pulsed and gamma radiolysis of aqueous solutions of tryptophan // Radiation Research. 2009. P. 563-579.
15. Binder B.R. Fibrinolysis // The journal of immunology. 1995. P. 3-8.
16. Burcham P.C., Kuhan Y.T. The introduction of carbonyl groups in the products of lipid peroxidation of malonic dialdehyde // Biochemical and Biophysical Research. 2006. P. 220.
17. Castellino F.J., Ploplis V.A. Structure and function of the plasminogen/plasmin system // Thrombosis and Haemostasis 2005. P. 647-654.
18. Cederholm-Williams S.A., Ponting C.P. Kinetics of the reactions between streptokinase, plasmin, alpha 2-antiplasmin // Biochemistry. 1979. P. 125-132.
19. Chuenstein Е., Esterbauer Н. Formation and properties of reactive aldehydes // CIBA Found Symp. 2010. P. 225-244
20. Closer B.M., Kalebic T. Developmental of the Vascular System // BMC Part of Springer nature. 2008. P. 150-162.
21. Collen D., Lijnen H. R. The fibrinolytic system in man // Critical reviews in oncology. 2006. P. 249-301.
22. Collen D., Lijnen H. R. Tissue-type plasminogen activator, mechanism of action and thrombolytic properties // Blood. 2003. P. 25-32.
23. Crawley J.T., Zanardelli S. The central role of thrombin in hemostasis // Thrombosis and Haemostasis. 2007. P. 95-101.
24. Deutsch, D. G., Mertz E. J. // Science. 1970. V. 170. P. 1095-1096.
25. Fenn J.B. Electrospray ionization for mass spectrometry of large biomolecules // Science. 1989. P. 64-71.
26. Friguet B, Stadman E.R. Modification of glucose-6-phosphate
dehydrogenase 4-hydroxy-2-nonenal // Biological Chemistry. 2007. P. 639-643.
27. Furie B.C. Mechanisms of thrombus formation // Journal of Medicine. 2008.
P. 938-949.
28. Fuss C., Palmaz J.C. Fibrinogen: structure, function, and surface interactions// Vascular Interventional Radiology. 2001. P. 677-682.
29. Galetskiy, D., Lohscheider, J. N., Kononikhin, A. S., Popov, I. A., Nikolaev, E. N., Adamska I. // Rapid Commun. Mass Spectrom. 2011. V. 25. P. 184-190.
30. Garrison W.M. Reaction mechanisms during radiolysis of peptides, polypeptides and proteins // Chemical Reviews. 2004. P 381-398.
31. Garrison W.M., Bennett W. Radiation induced protein oxidation in aqueous solution // Radiation Researh. 2011. P. 483-502.
32. Gugliucci A.//Clinial Chemistry Lab. Med. 2008. V. 46. P. 1403-1409.
33. Guptasarma Р, Matsugo S. Hydroxyl radical mediated - protein derivatives with a special focus on crystalline properties // Biochemistry. 1992. P. 296-302.
34. Handin R.I. Bleeding and thrombosis // Harrison's Principles of Internal Medicine. 2005. P. 110-115.
35. Herbst K.D., Rapaport S.I. Syndrome of an acquired inhibitor to factor VIII responsive to cyclophosphamide and prednisone // Annals of Internal Medicine.
1998. P. 575-578.
36. Jensen, O.N. Modification-specific proteomics: characterization of post- translational modifications by mass spectrometry //Current Opinion inChemical Biology. 2004. P. 33-41.
37. John F. K. Kearney J. Oxidative Stress and Vascular Disease. - USA: 2000. P. 80-90.
38. Karas, M., Hillenkamp F. Laser desorption ionization of proteins with molecular masses exceeding 10,000 daltons // Analytical Chemistry. 1988. P. 2299-2301.
39. Kristal B.S. Synergistic Induction of Aging by Free Radicals and Reactions // Gerontology. 1992. P. 104-107.
40. Lehrer M. Mass Spectrometry: Theory and Practice in Clinical Chemistry: Theory, Analysis and Correlation. - USA: 2003. P. 171-86.
41. Lijnen H.R., Collen D. // Biological Chemistry. - USA: 2005. P. 214-222.
42. Mann, M., O.N. Jensen. Proteomic analysis of post-translational modifications // Nature Biotechnology. 2003. P. 255-261.
43. Marx V. Making sure PTMs are not lost after translation // Nature Methods. 2013. P. 201-204.
44. Meisenhelder J., Phosphopeptide mapping and identification of phosphorylation sites. Current Protocols in Protein Science. 2001. P. 21-25.
45. Meng F. Detection and localization of protein modifications by high- resolution tandem mass spectrometry // Mass Spectrometry Reviews. 2005. P. 126-134.
46. Mills J.D. Ariens R.A. Altered fibrin clot structure in the healthy relatives ofpatients with premature coronary artery disease //Circulation. 2002. P. 138 - 42.
47. Monnier V. Nonenzymatic glycosylation, Maillard reaction and the aging process // Gerontol ю. 1990. P. 106-111.
48. Novohatny V.V. Biochemistry of animals and humans // Chemical Reviews. 1981. P. 31-46
49. Parrado J., Smith R. The domain organization of streptokinase: nuclear magnetic resonance, circular dichroism, and functional characterization of proteolytic fragments // Protein Science. 1996. P. 693-704.
50. Ponting C.P., Marshall J.M. Fibrinolysis // Blood. 2002. P. 605-614.
51. Praior W.A. Uppu R.M. Kinetic model of competitive reactions of ozone with amino acid residues in proteins in reverse micelles // Biological Chemistry. 2003. P. 120-126.
52. Raha S., Robinson B.H. Mitochondria, oxygen free radicals, disease and aging // Trends Biochemical Sciences. 2000. P. 502-508.
53. Ranby M., Bergsdorf N. Enzymatic properties of the one- and two-chain form of tissue plasminogen activator // Thrombosis Research 2002. P. 175-183.
54. Reddy K., Markus G. Esterase activities in the zymogen moiety of the streptokinase-plasminogen complex // Biological Chemistry. 2004. P. 851-857.
55. Sadygov, R.G. Large-scale database searching using tandem mass spectra: looking up the answer in the back of the book // Nature Methods. 2004. P. 195-202.
56. Siefring G., Castellino F. Interaction of streptokinase with plasminogen. Isolation and characterization of a streptokinase degradation product // Biological Chemistry. 2006. P. 913-920.
57. Torr S. R., Nachowiak D.A. Plasminogen steal and clot lysis // American College Cardiology. 1992. P. 1085-1090.
58. Uchida K, Stadman E.R. Covalent attachment of 4-hydroxynonenal to glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase: the possible involvement of intra- and intermolecular cross-links // Biological Chemistry. - 1993. P. 388-393.
59. Uchida К, Stadman E.R. New mechanism of oxidative damage to prolyl peptides induced by hydroxyl radicals // Biochemistry Biophysics Research Communications 1990. P. 265-271.
60. Uchida К., Stadtman Е.Р. Covalent attachment of 4-hydroxynonenal to glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase: the possible involvement of intra- and intermolecular crosslinking // Biological Chemistry 1993. P. 388-393.
61. Vasilyeva A. D., Yurina L.V. Proteins and Proteomics // BBA. 2018. P. 875-884.
62. Vlassara Н, Brownlee M. Glucose and aging // Medical Biochemistry. 1987.
P. 90-96.
63. Walker, J. B., Nesheim, M. E. The Molecular Weights, Mass Distribution, Chain Composition, and Structure of Soluble Fibrin Degradation Products Released from a Fibrin Clot Perfused with Plasmin // Biological Chemistry.
1999. P. 5201-5212.
64. Wang S., Reed G. Zymogen activation in the streptokinase-plasminogen complex. Ile1 is required for the formation of a functional active site // Biochemistry. 2000. P. 394-401.
65. Weigandt K. M., White, N., Chung, D., Ellingson, E., Wang, Y., Fu, X., Pozzo D.C. // Biophys. J. 2012. V. 103. P. 2399-2407.
66. Wells M.C., Huggins T.G. Oxidized amino acids in the protein of the lens with age // Biological Chemistry. 2003. P. 234-252.
67. Winchester R.V, Leenn K.R. Radiolysis of some tryptophan dipeptides // Radiate Biology. 2007. P. 541-549.
68. Wolf S.P., Dean R.T. Free radicals, lipid and protein breakdown // TIBS. 2009. P. 27-33.
69. Wun T. C. Plasminogen activation: biochemistry, physiology and therapeutics // Critical Reviews. Biotechnology. 1988. P. 131-148.
70. Yates, J.R. Proteomics of organelles and large cellular structures // Nature Reviews Molecular Cell Biol. 2005. P. 702-714.
71. Hang L, Fowler B.J. Plasminogen has a broad extrahepatic distribution // Thromb Haemostasis. 2002. P. 493-501.
72. Zuev Y. F. Conformational Flexibility and Self-Association of Fibrinogen in Concentrated Solutions // Physical Chemistry. 2017.P. 833-843