Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Оценка интенсивности защитных реакций в растениях ячменя с разной устойчивостью к корневой гнили, вызываемой грибом Fusarium culmorum

Работа №147933

Тип работы

Магистерская диссертация

Предмет

география

Объем работы63
Год сдачи2023
Стоимость4830 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
33
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


Список сокращений
Введение
ГЛАВА 1. Обзор литературы
1.1 Фитопатогенные грибы – опасные возбудители болезней…
1.1.1 Биотрофные и некротрофные фитопатогенные грибы
1.1.2 Фитопатогенные грибы из рода Fusarium и ущерб, наносимый ими сельскохозяйственным растениям
1.1.3 Методы качественного и количественного определения грибов из рода Fusarium в растениях
1.1.4 Фитопатогенный грибFusarium culmorum и продуцируемые им токсины
1.2 Виды и механизмы растительного иммунитета…………………………………........14
1.2.1 Локальная приобретённая устойчивость……………………………………........15
1.2.2 Системная приобретённая устойчивость……………………………………........16
1.2.3 Индуцированная системная устойчивость……………………………….............18
1.2.4 Интерференция салицилатного и жасмонатного сигнальных путей иммунитета растений
1.2.5 Роль регуляторных белков NPR1 и WRKY в развитии иммунного ответа на поражение растений фитопатогенами
1.2.6 Генотипы растений с различной устойчивостью к фузариозу колоса и фузариозной корневой гнили
ГЛАВА 2. Материалы и методы исследования
ГЛАВА 3. Результаты исследования
ГЛАВА 4. Обсуждение результатов
Выводы
Список литературы……


Fusariumculmorum (W. G. Sm.)Sacc. – опасный почвообитающий фитопатогенный гриб, который является возбудителем корневой, стеблевой гнилей и фузариозаколоса зерновых культур (Wagacha, Muthomi, 2007; Beccarietal., 2011). Фузариозы зерновых, вызванные этим фитопатогенным грибом, приводят к недобору урожая, а также к ухудшению качества зерна и его загрязнению микотоксинами (Clear, Patrick, 2006).
Использование средств химической защиты растений является небезопасным для окружающей среды. Кроме того, неоднократное использование фунгицидов приводит к селекции устойчивых рас фитопатогенных грибов. В настоящее время в связи с ухудшающейся экологической ситуацией перспективной альтернативой фунгицидам является создание или отбор устойчивых к болезням, в том числе фузариозной корневой гнили, вызываемой грибом F. culmorum, сортов и генотипов зерновых сельскохозяйственных растений. Для селекции сельскохозяйственных культур с таким полезным признаком необходимо знать, связана ли их различная устойчивость с различиями в интенсивности синтеза сигнальных молекул, защитных и регуляторных белков, то есть с различиями в относительном уровне экспрессии соответствующих генов, кодирующих белковые продукты, и если связана, то каким образом. Устойчивость может быть обеспечена индукцией экспрессии одних и подавлением экспрессии других генов.
Механизмы растительного иммунитета в настоящий момент активно изучаются, однако иммунитет ячменя пока что слабо изучен. Известны две основные сигнальные системы – салицилатная, активирующаяся в основном при заражении растения биотрофными патогенами, и жасмонатная, более свойственная поражению некротрофными патогенами (Фундаментальная фитопатология, 2012; Berens etal., 2017). Изучаемый нами гриб имеет смешанный тип питания, то есть сначала этот патоген ведёт себя в растении как биотроф, растёт в межклеточном пространстве, а потом переходит к некротрофному развитию (Струнникова с соавт., 2013; Motallebietal., 2017a), поэтому можно предположить, что при заражении будут активированы обе сигнальные системы.
В этой связи представляется интересным проследить за изменением уровня экспрессии генов PAL,PR1,PR4,LOX, NPR1, WRKY33 и WRKY34при развитии фузариозной корневой гнили. Ген PAL кодирует фенилаланин-аммоний-лиазу, участвующую в синтезе салициловой кислоты, и индукция его экспрессии свидетельствует об активации синтеза данного фитогормона, накопление которого приводит к индукции экспрессии PR-генов, кодирующих соответствующие белки. К таким генам относятся PR1 и PR4, активация их экспрессии происходит в основном при запуске салицилатной сигнальной системы (Beccari etal., 2011). Ген LOX кодирует липоксигеназу, участвующую в синтезе жасмоновой кислоты, и активизации её синтеза должно предшествовать усиление экспрессии данного гена(Berensetal., 2017). Белок NPR1 и транскрипционные факторы WRKY33 и WRKY34 являются важными регуляторами взаимодействия салицилатнойи жасмонатной сигнальных систем(Gaoetal., 2018). Известно, что между салицилатным и жасмонатным путями существует интерференция, в результате которой может наблюдаться как синергетический, так и антагонистический эффект.
При этом для нас так же важно было проследить за динамикой экспрессии гена TRI13, участвующего в синтезе трихотеценового микотоксина F. culmorum – дизоксиниваленола, так как сравнение скорости и интенсивности экспрессии генов хозяйской защиты с количеством продуцируемых F. culmorum микотоксинов может прояснить вопрос о роли трихотеценов в индукции защитных реакций растений. Таким образом, оценив уровень экспрессии генов, имеющих отношение к двум системам иммунитета, в корнях ячменя после его инфицирования F. culmorum, мы планировали прояснить следующий вопрос: каковы различия в активации двух видов иммунитета у сильно и слабо поражаемого ячменя?
Цель работы – выяснить, связана ли различная устойчивость двух генотипов ячменя к корневой гнили, вызываемой F. culmorum, с различиями в интенсивности синтеза сигнальных молекул, защитных и регуляторных белков.
Задачи.
1. Изучить влияние колонизации корней грибомF. culmorum на биометрические показатели ячменя двух разных генотипов на ранних этапах их развития.
2. Проследить за динамикой колонизации корней ячменя двух разных генотипов грибом F. culmorum и оценить интенсивность проявления корневой гнили у растений ячменя двух разных генотипов.
3. Выяснить, как влияет колонизация корней ячменя двух разных генотипов грибом F. culmorum на экспрессию в их клетках генов хозяйской защиты ячменяLOX,PAL,PR1,PR4, а также регуляторных геновNPR1, WRKY33 и WRKY34.
4. Проследить за экспрессией гена TRI13, участвующего в синтезе трихотеценовых токсинов F. сulmorum, в корнях ячменя двух разных генотипов.
5. На основании полученных данных сделать выводы о различии в механизме иммунного ответа у двух разных генотипов ячменя, отличающихся восприимчивостью к фузариозной корневой гнили.


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


1. Инокуляция корней ячменя двух генотипов грибом F. culmorum привела к увеличению массы побегов как устойчивого, так и восприимчивого генотипа ячменя. Инокуляция корней растений восприимчивого генотипа ячменя грибом F. culmorum привела к снижению массы корней, в то время как инокуляция корней растений устойчивого генотипа ячменя – к увеличению массы корней.
2. F. culmorum активнее заселял корни растений восприимчивого генотипа ячменя, по сравнению с корнями растений устойчивого генотипа ячменя, на ранних этапах колонизации (1-е и 5-е сутки). Более высокая интенсивность корневой гнили была отмечена на 12-е сутки после инокуляции у растений восприимчивого генотипа по сравнению с растениями устойчивого генотипа.
3. Более активная экспрессия наблюдалась в инокулированных грибомF. culmorum корнях устойчивого генотипа ячменя, по сравнению с инокулированными тем же грибом корнями восприимчивого генотипа ячменя, для генов хозяйской защиты ячменя LOX (1-е и 5-е сутки), PAL(5-е и 12-е сутки), PR1 (1-е сутки),PR4 (1-е, 5-е, 12-е сутки), NPR1(1-е, 5-е, 7-е, 12-есутки), WRKY33(5-е, 12-е сутки) и WRKY34(5-е и 12-е сутки).
4. Ген TRI13, участвующий в синтезе трихотеценовых токсинов, экспрессировался в клетках гриба F. сulmorum, колонизировавшего корни восприимчивого генотипа ячменя,более активно, чем в клетках гриба, колонизировавшего корни устойчивого генотипа ячменя.
5. Экспрессия генов хозяйской защиты ячменя в ответ на инокуляцию грибомF. culmorum носила волнообразный характер. В корнях устойчивого генотипа ячменя, по сравнению с корнями восприимчивого генотипа ячменя, активизация экспрессии генов хозяйской защиты в ответ на инокуляцию грибомF. culmorum отмечалась раньше и в ряде сроков была значительно интенсивнее.



1. Билай В.И.Фузарии. Киев: Наукова думка, 1977, 443 с.
2. Гаврилова О.П., Гагкаева Т.Ю.Влияние температуры и тебуконазола на рост и токсинообразование штаммов Fusariumlangsethiaeразличного географического происхождения // Агрохимия, 2015. № 12. С. 76–82.
3. Гагкаева Т.Ю., Гаврилова О.П., Левитин М.М., Новожилов К.В. Фузариоз зерновых культур // Защита и карантин растений, 2011. № 5. С. 69–120
4. Гагкаева Т.Ю., Гаврилова О.П., Орина А.С., Казарцев И.А., Ганнибал Ф.Б.Сравнение методов выявления токсинпродуцирующих грибов рода Fusarium // Микология и фитопатология, 2017. Т. 51. Вып. 5. С. 292–298.
5. Голиков Н.Н. Клещевина, устойчивая к фуза¬риозу // Защита и карантин расте¬ний, 2003. № 3. С. 44.
6. Дьяков Ю. Т. Фундаментальная фитопатология. М.: КРАСАНД, 2012, 512 с.
7. Дьяков Ю. Т., Еланский С.Н.Общая фитопатология. М.: Издательство Юрайт, 2017, 230 с.
8. Кононенко Г. П., Буркин А. А., Соболева Н. А. Потенциал токсинообразования основных возбудителей фузариоза колоса // Материалы Всеросс. конгр. по медицинской микологии, 2004. Т. 3. С. 266–269
9. Левитин М.М. Фитопатогенные грибы и болезни человека // Защита и карантин растений, 2009. №9. С. 24–25
10. Леппянен И.В., Шахназарова В.Ю., Вишневская Н.А, Долгих Е.А., Струнникова О.К. Изучениемеханизмов взаимоотношений гороха Pisumsativum и двух штаммовFusariumculmorum разной агрессивности // Микология и фитопатология, 2017. Т. 51. Вып. 5. С. 241–248
11. Максимов И. В., Сорокань А. В., Черепанова Е. А., Сурина О. Б.,
Трошина Н. Б., Яруллина Л. Г. Влияние салициловой и жасмоновой кислот на компоненты про-/антиоксидантной системы в растениях картофеля при фитофторозе // Физиология растений, 2011. Т. 58. № 2. С. 243–251
12. Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генной инженерии. Молекулярное клонирование. М.: Мир, 1984, 480 с.
13. Медведев С.С. Физиология растений. СПб.: БХВ-Петербург, 2012, 512 с.
14. Санникова В. Ю. Генная инженерия как способ получения декоративных растений с изменённой окраской цветков // Биотехнология и селекция растений, 2020. Т. 3. № 1. С. 40–45.
15. Соколова Л.М. Анализ видового разнообразия грибов из рода Fusarium// Аграрная наука, 2019. № 1. С. 118–122.
16. Струнникова О.К., Шахназарова В.Ю., Вишневская Н.А., Муромцев Г.С. Применение мембранных фильтров и иммунофлуоресцентного окрашивания для наблюдения за развитием почвообитающих микромицетов // Микология и фитопатология, 1998. Т. 32. № 2. С.65–72.
17. Струнникова О.К., Шахназарова В.Ю., Вишневская Н.А., Чеботарь В.К., Тихонович И.А. Развитие и взаимоотношения PseudomonasfluorescensиFusariumculmorumв почве // Микробиология, 2007. Т. 76. № 5. С. 675–681.
18. Струнникова О.К., Вишневская Н.А., Бородина Е.В., Тихонович И.А. Влияние целлюлозы на развитие Fusariumculmorum в ризосфере и в ризоплане ячменя и интенсивность проявления корневой гнили // Микология и фитопатология, 2008. Т. 42. Вып. 6. С. 572–579.
19. Струнникова О. К., Шахназарова В. Ю., Вишневская Н. А., Ручий А.С., Чижевская Е.П.Особенности колонизации растений ячменя почвообитающим грибомFusariumculmorum // Микология и фитопатология, 2013. Т.47. Вып.3. С. 196–203.
20. Тютерев С.Л. Экологически безопасные индукторы устойчивости растений к болезням и физиологическим стрессам // Вестник защиты растений, 2015. № 83. С. 3–13.
21. Чикин Ю.А. Общая фитопатология. Томск: Томский госуниверситет, 2001, 170 с.
22. Шапошников А.И., Вишневская Н.А., Шахназарова В.Ю., Бородина Е.В., Лебединский М.И., Сырова Д.С., Ковалева О.Н., Струнникова О.К.Влияние фитопатогенного гриба Fusarium culmorum на корневую экссудацию и фитогормональный баланс растений ячменя // Актуальная биотехнология, 2022. №1. С. 357.
23. Шахназарова В.Ю., Струнникова О.К., Вишневская Н.А. Развитие интродуцированной популяции Fusariumculmorumв почве: формирование и лизис грибных структур // Микология и фитопатология, 2004. Т. 38. Вып. 1. С. 61–70.
24. Шахназарова В.Ю., Феоктистова А.С., Чижевская Е.П., Вишневская Н.А., Струнникова О.К. Оптимизация способа выделения ДНК для идентификации и количественного определения Fusariumculmorumв корнях ячменя и пшеницы методом ПЦР // Микология и фитопатология, 2012. Т. 46. Вып. 4. С. 287–292.
25. Штырлина О. В., Мартынова Т. А. Видовой состав грибов рода Fusarium в ризосфере сельскохозяйственных культур полевых севооборотов // Иммунопатология, Аллергология, Инфектология, 2010. № 1. С. 140–141.
26. Экологический мониторинг и методы совершенствования защиты зерновых культур от вредителей, болезней и сорняков. СПб: ВИЗР, 2002, 31 с.
27. Arunachalam C., Doohan F.M. Trichothecene toxicity in eukaryotes: Cellular and molecular mechanisms in plants and animals// Toxicol. Lett., 2013.V. 217.P. 149–158.
28. Bakshi M., Oelmüller R. WRKY transcription factors: Jack of many trades in plants// Plant Signal Behav., 2014. Vol. 9(2):e27700 (doi: 10.4161/psb.27700).
29. Bateman G.L., Murray G., Gutteridge R.J. and Coskun H. Effects of method of straw disposal and depth of cultivation on populations of Fusarium spp. in soil and on brown foot rot in continuous winter wheat//Ann. Appl. Biol.,1998. V. 132. P. 35–47.
30. Beccari G., Covarelli L., Nicholson P. Infection processes and soft wheat response to root rot and crown rot caused by Fusarium culmorum// Plant Pathol., 2011. Vol. 60. P. 671–684.
31. Berens M.L., Berry H.M., Mine A., Argueso C.T., Tsuda K. Evolution of hormone signaling networks in plant defense //Annu. Rev. Phytopathol., 2017.V. 55. P. 401–425.
32. Bertini L., Leonardi L., Caporale C., Tucci M., Cascone N., Berardino I. D., Buonocore V., Caruso C.. Pathogen-responsive wheat PR4 genes are induced by activators of systemic acquired resistance and wounding// Plant Science, 2003. V. 164, P. 1067–1078
33. Birkenbihl R.P., Diezel C., Somssich I.E. Arabidopsis WRKY33 is a key transcriptional regulator of hormonal and metabolic responses toward Botrytis cinerea infection// Plant Physiol., 2012.V. 159(1). P. 266–285.
34. Blaya J., Lloret E., Santísima-Trinidad A.B., Ros M., Pascual J.A. Molecular methods (digital PCR and real-time PCR) for the quantification of low copy DNA of Phytophthora nicotianae in environmental samples// Pest Manag. Sci., 2016. V. 72. P. 747–753.
35. Bollina V., Kushalappa A.C. Identification of metabolites related to mechanisms of resistance in barley against Fusarium graminearum, based on mass spectrometry// Plant Mol. Biol.,2011. V.77.P. 355–370.
36. Boutigny A.L., Richard-Forget F., Barreau C. Natural mechanisms for cereals resistance to the accumulation of Fusarium trichothecenes// Eur. J. Plant Pathol.,2008. V. 121. P. 411–423
37. Bradley D.J., Kjellbom P., Lamb C.J. Elicitor and wound-induced oxidative cross-linking of a proline-rich plant cell wall protein: A novel, rapid defense response // Cell., 1992. V.70. P. 21–30
38. Brandfass C., Karlovsky P. Upscaled CTAB-Based DNA Extraction and Real-Time PCR Assays for Fusarium culmorum and Fusarium graminearum DNA in Plant Material with Reduced Sampling Error // Int. J. Mol. Sci., 2008. Vol. 9. P. 2306–2321.
39. Brett C., Waldron K. Physiology and biochemistry of plant cell walls. London: Chapman and Hall, 1996, 255 р.
40. Bushnell W.R., Hazen B.E. and Pritsch C. Histology and physiology of Fusarium Head Blight// Fusarium Head Blight of Wheat and Barley (APS Press), 2003. P. 44–83.
41. Caarls L., Pieterse C.M.J., Van Wees S.C.M. How salicylic acid takes transcriptional control over jasmonic acid signaling // Front Plant Sci., 2015. V. 6. P. 1–11.
42. Caruso C., Bertini L., Tucci M., Caporale C., Nobile M., Leonardi L., Buonocore V. Recombinant wheat antifungal PR4 proteins expressed in Escherichia coli // Protein Expression and Purification, 2001. V. 23.P. 380–388.
43. Chechetkin I. R., Osipova E. V., Antsygina L. L., Gogolev Y. V., Grechkin A. N. Oxidation of glycerolipids by maize 9-lipoxygenase and its A562G mutant // Chem. Physics Lipids, 2011. V. 164, №3. P. 216220.
44. Clear R., Patrick S. Fusarium head blight in western Canada // Can. Grain Comm., 2006 (http://grainscanada.gc.caS).
45. Desmond O. J., Edgar C. I., Manners J. M., Maclean D. J., Schenk P. M., Kazan K. Methyl jasmonate induced gene expression in wheat delays symptom development by the crown rot pathogen Fusarium pseudograminearum // Physiol. Mol. Plant Pathol.,2006. V. 67(3-5). P. 171-179.
46. Devendra K. C., Prakash A., Johri B. N. Induced systemic resistance (ISR) in plants: mechanism of action // Indian J Microbiol., 2007. V. 47. P. 289–297.
47. De Vleesschauwer D., Höfte M. Rhizobacteria-induced systemic resistance // Adv. Bot. Res., 2009. V. 51. P. 223281.
48. Dexter J.E., Marchylo B.A., Clear R.M., Clarke J.M. Effect of Fusarium head blight on semolina milling and pasta-making quality of durum wheat // Cereal Chem., 1997. V. 74. P.519–525.
49. Dey S., Wenig M., Langen G., Sharma S., Kugler K. G., Knappe C.,Hause B., Bichlmeier M., Babaeizad V., Imani J., Janzik I., Stempfl T.,Hückelhoven R., Kogel K., Mayer K. F.X., Vlot A. C.Bacteria-triggered systemic immunity in barley is associated with WRKY and ETHYLENE RESPONSIVE FACTORs but not with salicylic acid // Plant Physiology, 2014. Vol. 166. P. 2133–2151.
50. Ding, L., Xu, H., Yi, H., Yang, L., Kong, Z., Zhang, L., Xue, S., Jia, H., Ma, Z. Resistance to hemi-biotrophic F. graminearum infection is associated with coordinated and ordered expression of diverse defense signaling pathways//PLOS One, 2011. Vol. 6:e19008 (doi: 10.1371/journal.pone.0019008).
51. D’Mello J., Placinta C., Macdonald A. Fusarium mycotoxins: a review of global implications for animal health, welfare and productivity // Anim. Feed Sci. Tech., 1999. V. 80. P. 183–205
52. Duan M.R., Nan J., Liang Y.H., Mao P., Lu L., Li L., Wei C., Lai L., Li Y., Su X.D. DNA binding mechanism revealed by high resolution crystal structure of Arabidopsis thaliana WRKY1 protein// Nucleic Acids Res., 2007.V. 35. P. 1145–1154
53. Felton G.W., Korth K.L., Bi J.L., Wesley S.V., Huhman D.V., Mathews M.C., Murphy J.B., Lamb C., Dixon R.A.Inverse relationship between systemic resistance of plants to microorganisms and to insect herbivory //Curr. Biol., 1999. Vol. 9. P. 317–320.
54. Fu Z. Q., Yan S., Saleh A., Wang W., Ruble J., Oka N., Mohan R., Spoel S. H., Tada Y., Zheng N., Dong X. NPR3 and NPR4 are receptors for the immune signal salicylic acid in plants//Nature, 2012. Vol. 486, 228–232.
55. Fu Z. Q., Dong X. Systemic acquired resistance: Turning local infection into global defense//Annual Review of Plant Biology, 2013. Vol. 64, P. 839–863.
56. Gagkaeva T.Yu., Gavrilova O.P., Yli-Mattila T., Loskutov I.G. Sources of resistance to Fusarium headblight in VIR oat collection //Euphytica, 2013. Vol. 191. P. 355–364
57. Gamir J., Darwiche R., Van’T Hof P., Choudhary V., Stumpe M., Schneiter R., Mauch F. The sterol-binding activity of PATHOGENESIS-RELATED PROTEIN 1 reveals the mode of action of an antimicrobial protein//The Plant Journal, 2017. V. 89.P. 502–509.
58. Gao J., Bi W., Li H., Wu J., Yu X., Liu D., Wang X. WRKY transcription factors associated with NPR1-mediated acquired resistance in barley are potential resources to improve wheat resistance to Puccinia triticina//Front. Plant Sci.,2018. V. 9. Art. 1486 (doi: 10.3389/fpls.2018.01486)
59. Gao L., Wang S., Li X. Y., Wei X. J., Zhang Y. J., Wang H. Y., Liu D. Q. Expression and functional analysis of a pathogenesis-related protein 1 gene, TcLr19PR1, involved in wheat resistance against leaf rust fungus//Plant Molecular Biology Reporter, 2015. V. 33.P. 797–805.
60. Goswami R.S., Kistler H.C. Pathogenicity and in planta mycotoxin accumulation among members of the Fusarium graminearum species complex on wheat and rice // Phytopathology, 2005. Vol. 95. P. 1397–1404.
61. Hildebrand D.F. Lipoxygenases // Physiol. Plant, 1989. V. 76. P. 249–253.
62. Homdork S., Fehrmann H., Beck R. Influence of different storage conditions on the mycotoxin production and quality of Fusarium-infected wheat grain//J. Phytopathol.,2000. V. 148.P. 7–15.
63. Hwang B.K., Heitefuss R. Induced resistance of spring barley to Erysiphe graminis f. sp. hordei// Phytopathol., 1982. V. 103. P. 41–47.
64. Inoue Y., Vy T. T. P., Yoshida K., Asano H., Mitsuoka C., Asuke S., Anh V.L., Cumagun C.J.R., Chuma I., Terauchi R., Kato K., Mitchell T., Valent B., Farman M., Tosa Y.Evolution of the wheat blast fungus through functional losses in a host specificity determinant// Science,2017. V. 357.P. 80–83.
65. Jaroszuk-Ściseł J., Kurek E., Trytek M. Efficiency of indoleacetic acid, gibberellic acid and ethylene synthesized in vitro by Fusarium culmorum strains with different effects on cereal growth // Biologia, 2014. V.69. P. 281–292
66. Kang Z., Buchenauer H. Immunocytochemical localization of Fusarium toxins in infected wheat spikes by Fusarium culmorum// Physiol. Mol. Plant Pathol., 1999. Vol. 55. P. 275–288.
67. Kang Z., Buchenauer H. Studies on the infection process of Fusarium culmorum in wheat spikes: degradation of host cell wall components and localization of trichothecene toxins in infected tissue// Eur. J. Plant Pathol.,2002. Vol. 108.P. 653–660.
68. Karlovsky P. Biological detoxification of the mycotoxin deoxynivalenol and its use in genetically engineered crops and feed additives// Appl. Microbiol. Biotechnol.,2011. Vol. 91.P. 491–504
69. Kim D.S., Hwang B.K. An important role of the pepper phenylalanine ammonia-lyase gene (PAL1) in salicylic acid-dependent signalling of the defence response to microbial pathogens // J. Exp. Bot.,2014. V. 65.P. 2295–2306
70. Kim K.C., Lai Z., Fan B., Chen Z. Arabidopsis WRKY38 and WRKY62 transcription factors interact with histone deacetylase 19 in basal defense // Plant Cell, 2008.V. 20. P. 2357–2371
71. Kogel K.H., Beckhove U., Dreschers J., Münch S., Rommé Y. Acquired resistancein barley: the resistance mechanism induced by 2,6-dichloroisonicotinicacid is a phenocopy of a genetically based mechanism governing race-specific powdery mildew resistance // Plant Physiol., 1994. V. 106. P. 1269–1277.
72. Köhl J., de Haas B. H., Kastelein P., Burgers S.L.G.E., Waalwijk C. Population dynamics of Fusarium spp. and Microdochium nivale in crops and crop residuesof winter wheat // Phytopathology, 2007. Vol. 97. P. 971–978.
73. Kumar N., Galli M., Dempsey D., Imani J., Moebus A., Kogel K.H.. NPR1 is required for root colonization and the establishment of a mutualistic symbiosis between the beneficial bacterium Rhizobium radiobacter and barley//Environ.Microbiol., 2021.Vol. 23(4). P. 2102–2115.
74. Lamour R., Marchant R. The induction of conidiation in Fusarium culmorum grown in continuous culture//J. Gen. Microbiol.,1977. Vol. 99.P. 49–58.
75. Lee T., Han Y.K., Kim K.H., Yun S.H., Lee Y.W. Tri13 and Tri7 determine deoxynivalenol- and nivalenol-producing chemotypes of Gibberella zeae//Appl. Environ.Microbiol., 2002.Vol. 68(5). P. 2148–2154.
76. Li J., Brader G., Palva E.T. The WRKY70 transcription factor: a node of convergence for jasmonate-mediated and salicylate-mediated signals in plant defense//Plant Cell, 2004.Vol. 16. P. 319–331
77. Li S., Zhou X., Chen L., Huang W., Yu D. Functional characterization of Arabidopsis thaliana WRKY39 in heat stress//Mol. Cells, 2010.Vol. 29. P. 475–483
78. Llorens A., Mateo R., Hinojo M.J., Valle-Algarra F.M., Jimenez M. Influence of environmental factors on the biosynthesis of type B trichothecenes by isolates of Fusarium spp. from Spanish crops//Int. J. Food Microbiol.,2004. Vol. 94.P. 43–54
79. Magan J., Hope R., Aldred D. Ecophysiology of Fusarium culmorum and mycotoxin production//Adv. Food Mycol.,2006. Vol. 571, P. 123–136
80. Maheshwari R., Shailini C., Veluthambi K., Mahadevan S. Interaction of gibberellic acid and indole-3-acetic acid in the growth of excised Cuscuta shoot tips in vitro // Plant Physiol., 1980. Vol. 65, № 2. P. 186–192.
81. Makandar R., Essig J.S., Schapaugh M.A., Trick H.N., Shah J. Genetically engineered resistance to Fusarium head blight in wheat by expression of ArabidopsisNPR1// Mol. Plant Microbe Interact., 2006. Vol. 19. P. 123–129.
82. McCartney H.A., Foster S.J., Fraaije B.A., Ward E.Molecular diagnostics for fungal plant pathogens // PestManag. Sci., 2003. V. 59. P. 129–142
83. Mellon J.E., Zelaya C.A., Dowd M.K., Beltz S.B., Klich M.A. Inhibitory effects of gossypol, gossypolone, and apogossypolone on a collection of economically important filamentous fungi//J. Agric. Food Chem.,2012. V. 60.P. 2740–2745.
84. Mishraa P.K., Foxa R.T., Culhama A. Restriction analysis of PCR amplified nrDNA regions revealed intraspecific variation within populations of Fusarium culmorum // Microbiol. Lett., 2002. Vol. 215. P. 291–296.
85. Mosblech A., Feussner I., Heilmann I. Oxylipins: Structurally diverse metabolites from fatty acid oxidation // Plant Physiol. Biochem., 2009. V. 47, №6. P. 511517.
86. Motallebi P., Niknam V., Ebrahimzadeh H., Hashemi M., Pisi A., Prodi A., Tonti S., Nipoti P. Methyl jasmonate strengthens wheat plants against root and crown rot pathogen Fusarium culmorum infection//J. of Plant Growth Regulation,2015. V. 34. P. 624–636.
87. Motallebi P., Niknam V, Ebrahimzadeh H., Hashemi M., Tahmasebi Enferadi S. Exogenous methyl jasmonate treatment induces defense response against Fusarium culmorum in wheat seedlings // Journal of Plant Growth Regulation, 2017a. V. 36. P. 71–82.
88. Motallebi P., Tonti S., Niknam V., Ebrahimzadeh H., Pisi A., Nipoti P., Hashemi M., Prodi A. Induction of basal resistance by methyl jasmonate against Fusarium culmorum in bread wheat // Cereal Research Communications, 2017b.V. 45(2) P. 248–259.
89. Mou Z., Fan W., Dong X. Inducers of plant systemic acquired resistance regulate NPR1 function through redox changes // Cell,2003. V. 113.P. 935–944.
90. Nakayama A., Fukushima S., Goto S., Matsushita A., Shimono M., Sugano S., et al. Genome-wide identification of WRKY45-regulated genes that mediate benzothiadiazole-induced defense responses in rice // BMC Plant Biol.,2013. V. 13. Art. 150 (doi: 10.1186/1471-2229-13-150)
91. Nowicki M., Lichocka M., Nowakowska M., Kłosińska U., Kozik E.U. A simple dual stain for detailed investigations of plant-fungal pathogen interactions // Vegetable Crops Research Bulletin, 2012. V. 77. P. 61–74.
92. Patrick J. W., Johnstone G. F., Wareing P.F. Mobilizing ability of gibberellic acid and kinetin applied to mature, decapitated stems of Phaseolus vulgaris L.// Ann. Bot., 1979. Vol. 44. № 4. P. 517–519.
93. Per T.S. Khanb M.I.R., Anjuma N.A., Masooda A., Hussaina S.J., Khana N.A. Jasmonates in plants under abiotic stresses: crosstalk with other phytohormones matters // Environ. Exp.Bot., 2018. Vol. 145. P. 104–120.
94. Pieterse C.M.J., Leon-Reyes A., Van der Ent S., Van Wees S.C.M. Networking by small-molecule hormones in plant immunity // Nature Chem. Biol.,2009. Vol. 5. P. 308–316.
95. Ponts N., Pinson-Gadais L., Verdal-Bonnin M.N., Barreau C., Richard-Forget F. Accumulation of deoxynivalenol and its 15-acetylated form is significantly modulated by oxidative stress in liquid cultures of Fusarium graminearum // FEMS Microbiol. Lett.,2006. Vol. 258.P. 102–107.
96. Proctor R.H., Hao G., Kim H-S., Whitaker B.K., Laraba I., Vaughan M.M., McCormick S.P. A novel trichothecene toxin phenotype associated with horizontal gene transfer and a change in gene function in Fusarium // Toxins, 2023. 15(1). 12.
97. Schilling A.G., Moller E.M., Geiger H.H. Polymerasechain reaction-based assays for species-specific detectionof Fusarium culmorum, F. graminearum, and F. avenaceum // Phytopathology, 1996. V. 86. P. 515–522
98. Schmidt-Heydt M., Parra R., Geisen R., Magan N. Modelling the relationship between environmental factors, transcriptional genes and deoxynivalenol mycotoxin production by strains of two Fusarium species// J. R. Soc. Interface,2011. V. 8, P. 117–126


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2024 Cервис помощи студентам в выполнении работ