2. Введение 5
3. Обзор литературы 7
3.1. Эукариотические факторы терминации трансляции 7
3.2. Эффективность терминации трансляции и влияющие на нее факторы 8
3.3. Система деградации нонсенс-содержащих мРНК (NMD) 9
3.4. Белок Upfl и его взаимодействие с факторами терминации трансляции 13
3.4.1. Структура белка Upfl 13
3.4.2. Взаимодействие Upf1 с факторами терминации трансляции 14
4. Материалы и методы 18
4.1. Штаммы 18
4.2. Плазмиды 19
4.3. Праймеры 22
4.4. Среды и условия культивирования 24
4.4.1. Среды и условия культивирования бактерий 24
4.4.2. Среды и условия культивирования дрожжей 24
4.5. Генетические и микробиологические методы 25
4.5.1. Бактериальная трансформация компетентных клеток 25
4.5.2. Трансформация дрожжей 25
4.5.3. Дрожжевой двугибридный анализ 25
4.6. Методы работы с ДНК 26
4.6.1. Выделение плазмидной ДНК 26
4.6.2. Рестрикция 27
4.6.3. Выделение дрожжевой ДНК 27
4.6.4. Очистка дрожжевой ДНК фенолом и хлороформом 27
4.6.5. ПЦР и электрофорез ДНК в агарозном геле 28
4.6.6. Секвенирование 29
4.6.7. Программое обеспечение 29
5. Результаты и обсуждение 30
5.1. Оценка жизнеспособности дрожжевых штаммов с нонсенс-мутациями в гене SUP45 на фоне делеции гена UPF1 по сравнению со штаммом без делеции 30
5.2. Анализ взаимодействия белков Sup35 и Sup45 c различными доменами белка
Upf1 32
5.3. Получение плазмид, содержащих точковые мутации гена UPF1, приводящих к
аминокислотным заменам продукта гена: C72S, C84S, C125S, K436E, RR793AA 36
5.4. Получение штаммов U-1A-D1628-uk.1 и U-14-D1690-uk.3 с мутациями гена
UPF1 на хромосоме 38
5.5. Оценка жизнеспособности штаммов, содержащих точковые мутации по гену
UPF1 на фоне нонсенс-мутации sup45-105 43
6. Обсуждение 46
7. Выводы 48
8. Список литературы 49
9. Благодарности 55
Терминация трансляции является заключительным этапом биосинтеза белка и в этом процессе основную роль у эукариот играют факторы eRF1 и eRF3, которые кодируются у дрожжей генами SUP45 и SUP35. eRF1 распознает стоп-кодон на мРНК, а eRF3, обладая ГТФ-азной активностью, участвует в освобождении полипептидной цепи от тРНК на рибосоме. Взаимодействие между eRF1 и eRF3 играет ключевую роль в эффективной терминации трансляции и последующем рибосомном рециклинге для подготовки к новому раунду синтеза белка (см. Hellen 2018).
Нонсенс-мутация — это тип мутации, при которой в результате изменения одного нуклеотида в гене возникает преждевременный стоп-кодон (PTC - premature termination codon), что приводит к досрочному прекращению синтеза белка во время трансляции. Это приводит к образованию неполноценного, укороченного белка, который может быть токсичен для клетки что может оказать влияние на функционирование организма и привести к различным генетическим заболеваниям человека. Показано, что 11% из всех мутаций, которые вызывают генетические заболевания у человека, являются нонсенс мутациями (Mort et al. 2008). Например, нонсенс-мутации могут быть причиной ряда наследственных заболеваний, таких как кистозный фиброз, мускулярная дистрофия и другие (Hirawat et al. 2007; Huang et al. 2019; Nagel-Wolfrum et al. 2016; Welch et al. 2007; Liu et al. 2020).
Однако существует явление нонсенс-супрессии — при которой преждевременный стоп-кодон в мРНК прочитывается как значащий, что позволяет клетке синтезировать полноразмерный белок, несмотря на нонсенс-мутацию в гене (Jeffrey H. Miller and A. Albertini, 1983). Нонсенс-супрессия возникает за счет нескольких механизмов, одним из которых является наличие мутаций в генах факторов терминации трансляции eRF1 и eRF3. Такие мутации приводят к снижению эффективности терминации трансляции и прочтению стоп-кодона как значащего за счет присутствия в клетке естественных супрессорных тРНК.
С другой стороны, в клетке существует несколько систем контроля качества мРНК, одной из которых является система NMD (nonsense-mediated mRNA decay - Нонсенс-опосредованный распад мРНК) — это механизм, который обеспечивает распад дефектных мРНК, содержащих преждевременные стоп-кодоны. В процессе NMD, мРНК с преждевременными стоп-кодонами распознаются и разрушаются, что предотвращает синтез дефектных белков. Этот механизм важен для поддержания качества трансляции и предотвращения накопления дефектных белков в клетке. Существуют разные модели, описывающие механизм этой системы деградации главную роль в этом процессе, играет комплекс белков Upf1-3.
Мутации в гене UPF1, которые приводят к нарушению функции продукта этого гена, усиливают нонсенс-супрессию, (Weng et al. 1996). Такие мутации, в частности, приводят к заменам в цистеин-гистидин-богатом домене белка Upf1 (CH-домен), который в свою очередь является РНК-связывающим доменом; и в геликазном домене.
В нашей лаборатории получены нонсенс-мутанты по генам SUP35 и SUP45 у дрожжей Saccharomyces cerevisiae. Такие мутации приводят к снижению жизнеспособности штамма, однако не являются летальными поскольку в таких клетках, несмотря на наличие нонсенс-мутации в одном из генов факторов терминации трансляции, присутствует небольшое количество полноразмерного белка Sup35 или Sup45 (те. очевидно, происходит нонсенс-супрессия таких мутаций). При этом у многих нонсенс мутантов по гену SUP45 и SUP35 наблюдается амплификация гена с нонсенс-мутацией, дисомия района хромосомы, содержащей sup35-n или sup45- n, что в итоге приводит к повышению частоты транскрипции этого гена. Вероятно, такие изменения являются адаптацией, помогающей клеткам синтезировать небольшое количество полноразмерных белков Sup35 и Sup45 за счет супрессии нонсенс-мутации (Maksiutenko et al., 2021). Однако окончательно механизмы, обеспечивающие жизнеспособность мутантов по генам sup45-n, sup35-n не ясны.
Ранее в нашей лаборатории было показано, что делеция гена UPF1 приводит к повышению жизнеспособности нонсенс- и миссенс-мутантов по гену SUP35 или SUP45 (Журавлева и Грызина, 2012). Однако, не известен механизм повышения жизнеспособности таких мутантов при нарушении работы системы NMD. В работе Weng с соавторами показано, что делеция любого участка гена UPF1 приводит к потере функциональности его продукта (Weng et al. 1996). В нашей работе мы использовали мутационный анализ для выявления участков белка Upf1, связанных с жизнеспособностью нонсенс мутантов гена SUP35 и SUP45.
Выводы
1. Показано повышение жизнеспособности мутантов sup45-n на фоне делеции гена UPF1 по сравнению со штаммами, содержащими ген UPF1 дикого типа.
2. С помощью двугибридной дрожжевой системы не удалось показать взаимодействие белковых фрагментов гена UPF1 и белков Sup35 или Sup45.
3. Сконструированы плазмиды, содержащие ген UPF1 c мутациями C72S, C84S, C125S, K436E, RR793AA. Получены дрожжевые штаммы U-1A-D1628-uk.1, содержащие мутации в хромосомной копии гена UPF1, приводящие к аминокислотным заменам K436E и RR793AA.
4. Показано, что полученные мутации, приводящие к аминокислотным заменам K436E и RR793AA повышают жизнеспособность штаммов, содержащих нонсенс- мутацию sup45-105.
1. А. Г. Матвеенко, А.С. Михайличенко, Г. А. Журавлева. Создание векторов для редактирования генома дрожжей-сахаромицетов на основе системы CRISPR-Cas9. 2024. Микробиология. Принята в печать.
2. Г. А. Журавлева& В.А, Грызина. (2012). Влияние генов Upf на проявление мутаций в гене Sup45. Молекулярная биология. 46. 285.
3. Alkalaeva, Elena Z., et al. "In vitro reconstitution of eukaryotic translation reveals cooperativity between release factors eRF1 and eRF3." Cell 125.6 (2006): 1125-1136.
4. Amrani, N., Ganesan, R., Kervestin, S., Mangus, D. A., Ghosh, S., & Jacobson, A. (2004). A faux 3'-UTR promotes aberrant termination and triggers nonsense-mediated mRNA decay. Nature, 432(7013), 112-118. https://doi.org/10.1038/nature03060
5. Atkin, A L et al. “Relationship between yeast polyribosomes and Upf proteins required for nonsense mRNA decay.” The Journal of biological chemistry vol. 272,35 (1997): 22163-72. doi:10.1074/jbc.272.35.22163
6. Atkinson, Gemma C., Sandra L. Baldauf, and Vasili Hauryliuk. "Evolution of nonstop, no-go and nonsense-mediated mRNA decay and their termination factor-derived components." BMC evolutionary biology 8.1 (2008): 1-18.
7. Bertram G, Bell HA, Ritchie DW, Fullerton G, Stansfield I. Terminating eukaryote translation: domain 1 of release factor eRF1 functions in stop codon recognition. RNA. 2000 Sep;6(9):1236-47. doi: 10.1017/s1355838200000777. PMID: 10999601; PMCID: PMC1369997.
8. Boeke JD, Trueheart J, Natsoulis G, Fink GR. 5-Fluoroorotic acid as a selective agent in yeast molecular genetics. Methods Enzymol. 1987;154:164-75. doi: 10.1016/0076- 6879(87)54076-9. PMID: 3323810.
9. Brogna S, McLeod T, Petric M. The Meaning of NMD: Translate or Perish. Trends Genet. 2016 Jul;32(7):395-407. doi: 10.1016/j.tig.2016.04.007. Epub 2016 May 14. PMID: 27185236.
10. Brogna, Saverio, and Jikai Wen. “Nonsense-mediated mRNA decay (NMD) mechanisms.” Nature structural & molecular biology vol. 16,2 (2009): 107-13. doi:10.1038/nsmb.1550
11. Chabelskaya S, Gryzina V, Moskalenko S, Le Goff C, Zhouravleva G. Inactivation of NMD increases viability of sup45 nonsense mutants in Saccharomyces cerevisiae. BMC Mol Biol. 2007;8:71. Published 2007 Aug 16. doi:10.1186/1471-2199-8-71
12. Chamieh, Hala et al. “NMD factors Upf2 and Upf3 bridge Upf1 to the exon junction complex and stimulate its RNA helicase activity.” Nature structural & molecular biology vol. 15,1 (2008): 85-93. doi:10.1038/nsmb1330
13. Cheng, Zhihong, et al. "Structural insights into eRF3 and stop codon recognition by eRF1." Genes & development 23.9 (2009): 1106-1118.
14. Cosson, B., Couturier, A., Chabelskaya, S., Kiktev, D., Inge-Vechtomov, S., Philippe, M.,
& Zhouravleva, G. (2002). Poly(A)-binding protein acts in translation termination via eukaryotic release factor 3 interaction and does not influence [PSI(+)] propagation. Molecular and cellular biology, 22(10), 3301-3315.
https://doi.org/10.1128/MCB.22.10.3301-3315.2002
15. Czaplinski K, Ruiz-Echevarria MJ, Paushkin SV, et al. The surveillance complex interacts with the translation release factors to enhance termination and degrade aberrant mRNAs. Genes Dev. 1998;12(11):1665-1677. doi:10.1101/gad.12.11.1665
16. D. Hatfield et al. "Suppression of termination codons in higher eukaryotes." Trends in
Biochemical Sciences, 10 (1985): 201-204. https://doi.org/10.1016/0968-
0004(85)90192-6.
17. Daar, I., & Maquat, L. (1988). Premature translation termination mediates triosephosphate isomerase mRNA degradation. Molecular and Cellular Biology, 8, 802 - 813. https://doi.Org/10.1128/mcb.8.2.802-813.1988.
18. des Georges, Amedee, et al. "Structure of the mammalian ribosomal pre-termination complex associated with eRF1* eRF3* GDPNP." Nucleic acids research 42.5 (2014): 3409-3418.
19. Doma MK, Parker R. RNA quality control in eukaryotes. Cell. 2007 Nov 16;131(4):660-
8. doi: 10.1016/j.cell.2007.10.041. PMID: 18022
... Всего источников – 87.
Содержание бакалаврской работы - Изучение влияния мутаций в гене UPF1 на жизнеспособность дрожжей Saccharomyces cerevisiae, несущих мутации в генах SUP35 и SUP45
Выдержки из бакалаврской работы - Изучение влияния мутаций в гене UPF1 на жизнеспособность дрожжей Saccharomyces cerevisiae, несущих мутации в генах SUP35 и SUP45