Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Участие пролиферации в росте тела зародышей Daniorerio в период сомитогенеза

Работа №143334

Тип работы

Бакалаврская работа

Предмет

биология

Объем работы52
Год сдачи2019
Стоимость4225 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
27
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


Оглавление 2
1 Введение 3
2 Обзор литературы 5
2.1 Формы роста 5
2.1.1 Клеточная пролиферация 5
2.1.2 Методы численной оценки пролиферации клеток 7
2.1.3 Клеточный рост 8
2.1.4 Клеточная гибель 10
2.1.5 Увеличение межклеточного вещества 12
2.1.6 Клеточная миграция 13
2.2 Daniorerio 17
2.2.1 Общие сведения о Daniorerio 17
2.2.2 Эмбриональное развитие Daniorerio 19
2.3 Удлинение тела Daniorerio 26
2.3.1 Удлинение тела согласно Киммелу 26
2.3.2 Оригинальная методика измерения длины эмбриона 27
2.3.3 Результаты оценки удлинения тела зародыша Danio rerio в период сомитогенеза 31
2.4 Роль разных форм роста в процессах роста Daniorerio 33
2.4.1 Роль клеточной пролиферации в процессах роста Daniorerio 33
2.4.2 Роль гипертрофии клеток в процессах роста Daniorerio 38
2.4.3 Роль клеточной гибели в процессах роста Daniorerio 41
2.4.4 Роль накопления межклеточного вещества в процессах роста Daniorerio 42
2.4.5 Роль миграции клеток в процессах роста Daniorerio 42
2.5 Обсуждение 44
2.6 Заключение 45
3 Выводы 46
Список литературы 48


Рост как увеличение размеров тела или частей тела многоклеточного организма был и остается одной из наиболее интригующих проблем биологии развития, а эмбриональный рост (в особенности у костистых рыб) – это, как ни странно, недостаточно изученная область эмбриологии. В значительной степени это связано с техническими трудностями в исследовании клеточного размножения в эмбриогенезе костистых рыб. Для осознания многоплановости проблемы роста достаточно сказать, что он является не только количественной характеристикой развития, обусловливая увеличение размеров развивающегося организма, но и участвует в формообразовании: в значительной степени благодаря росту определяются форма, размеры и пропорции тела организма. Однако, следует отметить, что в разные периоды развития морфогенетическая роль роста может существенно различаться. Так, дробление происходит в условиях отсутствия клеточного роста[98]. Увеличение одних частей тела часто происходит за счет уменьшения других. Например, увеличение площади поверхности зародыша при гаструляции сопровождается утончением его наружного клеточного слоя [98].
Рост - количественная характеристика развития -представляет собой увеличение массы или линейных размеров отдельных органов или тела в целом.
На начальных стадиях развития, например, в период дробления, рост, как изменение размерностей в организме, отсутствует. Изменение количественных характеристик (рост) организма не свойственно начальным стадиям развития: дробление происходит в отсутствии роста, то есть фаза роста выпадает из клеточного цикла. Перед дроблением оплодотворённая яйцеклетка (зигота) представляет собой гипертрофированную клетку, содержащую желток, размер которой многократно увеличен относительно клеток взрослого организма; затем начинается палинтомический процесс дробления: бластомеры делятся последовательно и быстро, не растут, не специализируются и не накапливают веществ, в результате чего уменьшаются в размерах и массе в каждом раунде деления дробления[97]. Рост у эмбрионов может начаться не раньше, чем палинтомический процесс заменится на монотомический, иначе говоря, по завершению дробления. Завершение дробления происходит с установлением нормального ядерно-плазменного отношения, то есть характерного для соматических клеток.
Согласно морфофизиологической теории роста Шмальгаузена[100], увеличение размеров и массы тела и органов (их рост) в эмбриональный период происходит за счет изменения числа клеток, то есть за счет клеточного деления, а не за счет изменения величины клеток. Важно отметить, что делятся в основном недифференцированные клетки, после дифференциации клетки теряют способность к пролиферации (разумеется, есть исключения: например, Т-клетки иммунитета могут возвращаться в клеточный цикл). Согласно данной теории, снижение темпов роста объясняется переходом клеток в специализированное состояние, и, следовательно, уменьшением количества недифференцированных, способных к делению клеток. Таким образом, скорость роста организма или органа и процесс дифференциации обратно пропорционально зависимы. Данная теория объясняет закономерности роста всех позвоночных животных. Однако, у теории Шмальгаузена есть противники. Основной аргумент противников теории можно кратко сформулировать следующим образом: рост не может происходить только за счет размножения клеток, он происходит и в результате увеличения их размеров, а также вследствие накопления межклеточного вещества [98].
В настоящей работе рассмотрены возможные формы роста, вносящие свой вклад в удлинение тела животных. В первую очередь внимание уделяется росту костистой рыбы Daniorerio, выполнена попытка ответить на вопрос, какие именно механизмы лежат в основе изменения размеров и формы тела этого животного. Возможные формы роста это пролиферация клеток, или прямое увеличение количества клеток, перестройка клеточного материала в результате миграции клеток, увеличение размеров самих клеток или межклеточного вещества. Также в росте и морфогенезе участвует программируемая клеточная гибель, антагонист пролиферации. Данная работа включает в себя обзор данных литературы о развитииDaniorerio, обзор механизмов удлинения тела, а так же анализ их роли в скачке роста эмбрионовDaniorerio в периоде сомитогенеза.
Целью настоящей работы является оценка степени и формы участия пролиферации клеток в процессах роста эмбрионов костистых рыб на примере Daniorerio.
Для достижения поставленной цели предстояло решить следующие задачи:
1. Дать общий обзор форм роста длины тела и факторов, участвующих в его коррекции;
2. Количественно охарактеризовать удлинение тела Daniorerioв период сомитогенеза;
3. Сопоставить участие рассмотренных форм роста в удлинении тела и его частей у Daniorerio в период сомитогенеза;
4. Представить аргументированное заключение о роли клеточной репродукции в процессах роста у Daniorerio в период сомитогенеза.


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


Целью данной работы является оценка роли клеточной пролиферации в росте тела зародышей Daniorerio в период сомитогенеза. Вначале дается детальный обзор основных механизмов, способных влиять на рост организма: клеточная пролиферация, гипертрофия клеток, гибель клеток, миграция клеток, а так же накопление межклеточного вещества. Показано, что, хотя клеточные деления являются основными в определении размеров взрослых организмов, во время эмбриогенеза остальные механизмы также могут играть значительную роль на определенных этапах развития. Далее дается описание морфогенеза Daniorerio с фокусом на период сомитогенеза. Данный период прежде всего характеризуется формообразованием туловищного и хвостового отделов. Используя доступные в литературе данные, показано, что в рассматриваемом временном интервале скорость удлинения эмбриона максимальна в начале периода сомитогенеза и затем экспоненциально снижается с константой 8.8 часа. При этом, высокая скорость удлинения в интервале от 10 и до 14-16 часов после оплодотворения определяется развитием туловищного отдела, а после - развитием хвостового отдела. Совокупный анализ показывает, что накопление межклеточного вещества и гибель клеток не несут вклада в удлинение тела зародышей Daniorerioв период сомитогенеза. При этом, наращивание клеточного объема, сопутствующее росту эмбриона, может осуществляться либо путем увеличения числа клеток через пролиферацию при нормальном эмбриогенезе, либо путем гипертрофии клеток при недостатке числа клеток после блокирования пролиферации. Примечательно, что данные два варианта приводят к почти равнозначному удлинению зародышей в период сомитогенеза. Это может свидетельствовать о том, что для формообразования телаDaniorerioв период сомитогенеза важно приращение суммарного клеточного объема, а не количества клеток. Более того, это суждение можно распространить и на более ранние стадии. Так, при блокировании пролиферации от стадии зародышевого щитка, приводящем к примерно 70-80% дефициту клеточной численности ко стадии 12 пар сомитов, формируются основные морфообразующие структуры тела, а общая длина эмбриона уменьшается лишь на 22% к 30 часам после оплодотворения [94]. С другой стороны, в данной работе акцентируется внимание на существенной роли скоординированных клеточных перемещений (миграции) в снабжении развивающегося тела клеточным материалом с поверхности желточного синцития, а также непосредственно внутри формирующихся различных структур организма. В частности, формирование хвоста у Daniorerio является ярким примером того, как совокупность своевременных клеточных перестроений приводит к формированию вытянутой и функциональной структуры. Нарушение же сигнальных путей, управляющих клеточными потоками, приводит к значительным дефектам эмбрионального морфогенеза [47, 75].


1. Abercrombie M. Contact inhibition in tissue culture // In Vitro. 1970.
2. Abercrombie M., Heaysman J.E.M. Observations on the social behaviour of cells in tissue culture. II. «Monolayering» of fibroblasts // Experimental Cell Research. 1954.
3. Amatruda J.F., Zon L.I. Dissecting hematopoiesis and disease using the zebrafish // Developmental Biology. 1999.
4. Angelini T.E. [идр.]. Cell Migration Driven by Cooperative Substrate Deformation Patterns // Phys. Rev. Lett. 2010. (104). C. 168104.
5. Araujo A.R. [идр.]. Positive Feedback Keeps Duration of Mitosis Temporally Insulated from Upstream Cell-Cycle Events // Molecular Cell. 2016.
6. Ardouin O. [идр.]. Characterization of the two zebrafish orthologues of the KAL-1 gene underlying X chromosome-linked Kallmann syndrome // Mechanisms of Development. 2000.
7. Baehrecke E.H. How death shapes life during development // Nature reviews. Molecular cell biology. 2002. (3). C. 779–787.
8. Baserga R. The Biology of Cell Reproduction / R. Baserga, Cambridge: Harvard University Press, 1985. 251 c.
9. Berghmans S. [идр.]. Making waves in cancer research: New models in the zebrafish // BioTechniques. 2005.
10. Biggers J.D. Metabolism of mouse embryos. // Journal of reproduction and fertility. 1971. № 0449-3087. C. 41–54.
11. Boucaut J.C. [идр.]. Fibronectin-rich fibrillar extracellular matrix controls cell migration during amphibian gastrulation // International Journal of Developmental Biology. 1990.
12. Bouldin C.M. [идр.]. Restricted expression of cdc25a in the tailbud is essential for formation of the zebrafish posterior body // Genes and Development. 2014.
13. Braun T., Gautel M. Transcriptional mechanisms regulating skeletal muscle differentiation, growth and homeostasis // Nature Reviews Molecular Cell Biology. 2011.
14. Budirahardja Y., Gonczy P. Coupling the cell cycle to development // Development. 2009.
15. Buss R.R., Sun W., Oppenheim R.W. Adaptive roles of programmed cell death during nervous system development // Annual Review of Neuroscience. 2006. (29). C. 1–35.
16. Carmona-Fontaine C. [идр.]. Contact inhibition of locomotion in vivo controls neural crest directional migration // Nature. 2008.
17. Carmona-Fontaine C. [идр.]. Complement Fragment C3a Controls Mutual Cell Attraction during Collective Cell Migration // Developmental Cell. 2011.
18. Cole L.K., Ross L.S. Apoptosis in the developing zebrafish embryo // Developmental Biology. 2001.
19. Conlon I., Raff M. Size control in animal development // Cell. 1999.
20. Dalle Nogare D.E., Pauerstein P.T., Lane M.E. G2 acquisition by transcription-independent mechanism at the zebrafish midblastula transition // Developmental Biology. 2009.
21. Dickinson R.B., Guido S., Tranquillo R.T. Biased cell migration of fibroblasts exhibiting contact guidance in oriented collagen gels // Annals of Biomedical Engineering. 1994.
22. Drummond I.A. The zebrafish pronephros: A genetic system for studies of kidney development // Pediatric Nephrology. 2000.
23. Duronio R.J., Xiong Y. Signaling pathways that control cell proliferation // Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 2013.
24. Edgar B.A. How flies get their size: Genetics meets physiology // Nature Reviews Genetics. 2006.
25. Fankhauser G., Humphrey R.R. THE RARE OCCURRENCE OF MITOSIS WITHOUT SPINDLE APPARA TUS («COLCHICINE MITOSIS») PRODUCING ENDOPOLYPLOIDY IN EMBRYOS OF THE AXOLOTL // Zoology. 1952. C. 1073-082.
26. Franklin J.L., Johnson E.M. Control of neuronal size homeostasis by trophic factor-mediated coupling of protein degradation to protein synthesis. // The Journal of cell biology. 1998. № 0021-9525 (142).
27. Gemberling M. [идр.]. The zebrafish as a model for complex tissue regeneration // Trends in Genetics. 2013.
28. Griffith C.M., Wiley M.J., Sanders E.J. The vertebrate tail bud: three germ layers from one tissue // Anatomy and Embryology. 1992.
29. Guyon J.R. [идр.]. Modeling human muscle disease in zebrafish // Biochimica et Biophysica Acta - Molecular Basis of Disease. 2007.
30. Hamilton F. An account of the fishes found in the river Ganges and its branches. / F. Hamilton, London: Edinburg, 1822.
31. Harrington M.J., Chalasani K., Brewster R. Cellular mechanisms of posterior neural tube morphogenesis in the zebrafish // Developmental Dynamics. 2010.
32. Harris W.A., Hartenstein V. Neuronal determination without cell division in xenopus embryos // Neuron. 1991.
33. Ho R.K. Cell movements and cell fate during zebrafish gastrulation // Development. 1992. (116). C. 65–73.
34. Hollway G.E. [идр.]. Whole-Somite Rotation Generates Muscle Progenitor Cell Compartments in the Developing Zebrafish Embryo // Developmental Cell. 2007.
35. Irle T., Schierenberg E. Developmental potential of fused Caenorhabditis elegans oocytes: Generation of giant and twin embryos // Development Genes and Evolution. 2002.
36. Johnston G.C., Pringle J.R., Hartwell L.H. Coordination of growth with cell division in the yeast Saccharomyces cerevisiae // Experimental Cell Research. 1977.
37. Jorgensen P., Tyers M. How cells coordinate growth and division // Current Biology. 2004.
38. Kane D.A. Cell Cycles and Development in the Embryonic Zebrafish. // Methods in Cell Biology. 1999. (59). C. 11–26.
39. Kane D.A., Warga R.M., Kimmel C.B. Mitotic domains in the early embryo of the zebrafish // Nature. 1992.
40. Kanki J.P., Ho R.K. The development of the posterior body in zebrafish. // Development (Cambridge, England). 1997.
41. Keller P.J. [идр.]. Reconstruction of zebrafish early embryonic development by scanned light sheet microscopy // Science. 2008.
42. Kimmel C.B. [идр.]. Stages of embryonic development of the zebrafish // Developmental Dynamics. 1995. № 3 (203). C. 253–310.
43. Kimmel C.B., Warga R.M., Kane D.A. Cell cycles and clonal strings during formation of the zebrafish central nervous system // Development (Cambridge, England). 1994.
44. Kobitski A.Y. [идр.]. An ensemble-averaged, cell density-based digital model of zebrafish embryo development derived from light-sheet microscopy data with single-cell resolution // Scientific Reports. 2015.
45. Krammer P.H. CD95’s deadly mission in the immune system // Nature. 2000. (407). C. 789–795.
46. Kurosaka S., Kashina A. Cell biology of embryonic migration // Birth Defects Research (Part C). 2008. № 2 (84). C. 102–122.
47. Lawton A.K. [идр.]. Regulated tissue fluidity steers zebrafish body elongation // Development. 2013.
48. Lloyd A.C. XThe regulation of cell size // Cell. 2013.
49. Lo C.-M. [идр.]. Cell Movement Is Guided by the Rigidity of the Substrate // Biophysical Journal. 2000. № 1 (79). C. 144–152.
50. Lockshin R.A., Williams C.M. Programmed cell death-II. Endocrine potentiation of the breakdown of the intersegmental muscles of silkmoths // Journal of Insect Physiology. 1964. № 4 (10). C. 643–649.
51. Lockshin R.A., Williams C.M. Programmed cell death-I. Cytology of degeneration in the intersegmental muscles of the Pernyi silkmoth // Journal of Insect Physiology. 1965. № 2 (11). C. 123–133.
52. MacRae C.A., Peterson R.T. Zebrafish as tools for drug discovery // Nature Reviews Drug Discovery. 2015.
53. Maghsoudi N., Zakeri Z., Lockshin R.A. Programmed cell death and apoptosis - where it came from and where it is going: from Elie Metchnikoff to the control of caspases // Exp Oncol. 2012. (34Maghsoud). C. 146–152.
54. Mayden R.L. [идр.]. Phylogenetic relationships of Danio within the order cypriniformes: A framework for comparative and evolutionary studies of a model species // Journal of Experimental Zoology Part B: Molecular and Developmental Evolution. 2007.
55. Mendieta-Serrano M.A. [идр.]. Cell Proliferation Patterns in Early Zebrafish Development // Anatomical Record. 2013.
56. Mills C.L., Bellairs R. Mitosis and cell death in the tail of the chick embryo. // Anatomy and embryology. 1989.
57. Nakatsuji N., Johnson K.E. Experimental manipulation of a contact guidance system in amphibian gastrulation by mechanical tension // Nature. 1984.
58. Nelson C.M. Vascular Endothelial-Cadherin Regulates Cytoskeletal Tension, Cell Spreading, and Focal Adhesions by Stimulating RhoA // Molecular Biology of the Cell. 2004.
59. Oppenheim R.W. Cell Death During Development of the Nervous System // Annual Review of Neuroscience. 1991. № 1 (14). C. 453–501.
60. Pézeron G. [идр.]. Live Analysis of Endodermal Layer Formation Identifies Random Walk as a Novel Gastrulation Movement // Current Biology. 2008.
61. Pourquié O. The segmentation clock: Converting embryonic time into spatial pattern // Science. 2003.
62. Raff M. Social Controls on Cell Survival and Cell Death // Nature. 1992. (356). C. 397–400.
63. Reig G., Pulgar E., Concha M.L. Cell migration: from tissue culture to embryos // Development. 2014.
64. Retnoaji B. [идр.]. Retinoic acid controls proper head-to-trunk linkage in zebrafish by regulating an anteroposterior somitogenetic rate difference // Development. 2014.
65. Rhind N., Russell P. Signaling pathways that regulate cell division // Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 2012.
66. Richards A., Shumacher B.L. ANALYSIS OF EARLY DEVELOPMENT OF FISH EMBRYOS BY MEANS OF THE MITOTIC INDEX III. THE MITOTIC INDEX OF YOUNG EMBRYOS OF COREGONUS CLUPEIFORMIS // The American Journal of Anatomy. 1935.
67. Rollins M.B., Andrews M.T. Morphogenesis and regulated gene activity are independent of DNA replication in Xenopus embryos // Development. 1991. (112). C. 559–569.
68. Rubinstein A.L. Zebrafish: from disease modeling to drug discovery. // Current opinion in drug discovery & development. 2003.
69. Sato S., Burgess S.B., McIlwain D.L. Transcription and motoneuron size. // Journal of neurochemistry. 1994.
70. Schröter C. [идр.]. Dynamics of zebrafish somitogenesis // Developmental Dynamics. 2008.
71. Simpson P. Notch signalling in development: On equivalence groups and asymmetric developmental potential // Current Opinion in Genetics and Development. 1997.
72. Soengas M.S. [идр.]. Inactivation of the apoptosis effector Apaf1 in malignant melanoma // Nature. 2001. (409). C. 207–211.
73. Spence R. [идр.]. The behaviour and ecology of the zebrafish, Danio rerio // Biological Reviews. 2008.
74. Stanger B.Z., Tanaka A.J., Melton D.A. Organ size is limited by the number of embryonic progenitor cells in the pancreas but not the liver // Nature. 2007.
75. Steventon B. [идр.]. Species-specific contribution of volumetric growth and tissue convergence to posterior body elongation in vertebrates // Development. 2016.
76. Stickney H.L., Barresi M.J.F., Devoto S.H. Somite development in Zebrafish // Developmental Dynamics. 2000.
77. Stockwell R.A. The interrelationship of cell density and cartilage thickness in mammalian articular cartilage. // Journal of Anatomy. 1971. C. 411–421.
78. Su T.T., O’Farrell P.H. Size control: Cell proliferation does not equal growth // Current Biology. 1998.
79. Sugiyama M. [идр.]. Illuminating cell-cycle progression in the developing zebrafish embryo // Proceedings of the National Academy of Sciences. 2009.
80. Talbot W.S. [идр.]. A homeobox gene essential for zebrafish notochord development // Nature. 1995.
81. Tambe D. [идр.]. Collective cell guidance by cooperative intercellular forces // Nature materials. 2011. (10). C. 469–475.
82. Tang K.L. [идр.]. Systematics of the subfamily Danioninae (Teleostei: Cypriniformes: Cyprinidae) // Mol Phylogenet Evol. 2010. C. 189–214.
83. Teixeira A.I. Epithelial contact guidance on well-defined micro- and nanostructured substrates // Journal of Cell Science. 2003.
84. Thompson C.B. Apoptosis in the Pathogenesis and Treatment of Disease // Science. 1995. (267). C. 1456–1462.
85. Tumaneng K., Russell R.C., Guan K.L. Organ size control by Hippo and TOR pathways // Current Biology. 2012.
86. Watanabe N., Ishihara T., Ohshima Y. Mutants carrying two sma mutations are super small in the nematode C. elegans // Genes to Cells. 2007.
87. White K. [идр.]. Genetic control of programmed cell death in Drosophila // Science. 1994. № 5159 (264). C. 677–683.
88. Woo S. [идр.]. Nodal signaling regulates endodermal cell motility and actin dynamics via Rac1 and Prex1 // Journal of Cell Biology. 2012.
89. Wood A., Thorogood P. An analysis of in vivo cell migration during teleost fin morphogenesis // Journal of cell science. 1984.
90. Yamaguchi Y., Miura M. Programmed Cell Death in Neurodevelopment // Developmental Cell. 2015. № 4 (32). C. 478–490.
91. Yuan J., Yanker B.A. Apoptosis in the nervous system // Nature. 2000. (407). C. 802–809.
92. Zakeri Z., Lockshin R.A. Cell death during development // Journal of Immunological Methods. 2002. № 1 (265). C. 3–20.
93. Zamir E., Kam Z., Yarden a Transcription-dependent induction of G1 phase during the zebra fish midblastula transition. // Mol Cell Biol. 1997.
94. Zhang L. [идр.]. Cell cycle progression is required for zebrafish somite morphogenesis but not segmentation clock function // Development. 2008.
95. Быков В.Л. Цитология и общая гистология / В.Л. Быков, Санкт-Петербург: СОТИС, 2002.
96. Дондуа А.К. Биология развития / А.К. Дондуа, Санкт-Петербург: Издательство Санкт-Петербургского университета, 2018. 812 c.
97. Иванова-Казас О.М. Эволюционная эмбриология животных / О.М. Иванова-Казас, Санкт-Петербург: Наука, 1995. 565 c.
98. Кауфман З.С. Эмбриология рыб / З.С. Кауфман, Москва: Агропромиздат, 1990. 272 c.
99. Козикова Л.В., Полтева Е.А., Лохматова С.А. Зебрафиш (Danio rerio) — модельный объект для изучения биологии развития и тест–система экологических рисков 2016.
100. Шмальгаузен И.И. Рост и дифференцировка / И.И. Шмальгаузен, Киев: Наукова думка, 1984.
101. Жизнь животных Том 4. Часть 1/Под редакцией Т. С. Расса Москва: Просвещение, 1971. 655 с.



Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ