Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Изучение возможностей золотых пористых встречно-штыревых электродов в качестве сенсорной платформы для определения олигонуклеотидов

Работа №143093

Тип работы

Дипломные работы, ВКР

Предмет

химия

Объем работы121
Год сдачи2023
Стоимость4800 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
13
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


возможности золотых пористых встречно-штыревых
электродов, сенсорная платформа для определения
олигонуклеотидов, электроды, анализы для
определения ДНК, РНК и олигонуклеотидов, циклическая вольтамперометрия

Олигонуклеотиды - это короткие последовательности нуклеотидов, которые имеют множество важных биологических функций. Они играют значимую роль в генетике, иммунологии, диагностике и терапии заболеваний. В медицине количественное определение олигонуклеотидов является критически важным для диагностики и лечения многих заболеваний.
На данный момент в медицинской практике наиболее часто применяется полимерная цепная реакция (ПЦР) (англ. PCR) как основной метод определения олигонуклеотидов. Со времени создания и по сегодняшний день, меньше, чем за 50 лет, ПЦР-анализ уже внёс ощутимый вклад в массовую диагностику инфекционных, вирусных и бактериальных заболеваний, благодаря относительной быстроте и высокой специфичности. Большинство методов ПЦР основаны на термическом циклировании, вследствие которого происходит увеличение целевых фрагментов дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК) до размеров от 100 до 10000 пар оснований. По количеству амплифицированного продукта и происходит дальнейшее изучение или анализ целевого фрагмента олигонуклеотида. Основные варианты исполнения анализа методом ПЦР являются качественными методами анализа содержания олигонуклеотидов в биологической матрице. Исключением можно считать вариант исполнения количественного ПЦР (qPCR), который, в свою очередь, так же имеет большое число модификаций. Такой метод позволяет не только детектировать наличие целевой последовательности олигонуклеотидов в образце, но и измерять их количество. Кроме того, ПЦР с обратной транскрипцией (RT-PCR) отслеживает увеличение целевого фрагмента ДНК во время полимерной цепной реакции и может использоваться для полуколичественной и количественной оценки содержания целевого фрагмента олигонуклеотида. Для проведения количественного определения олигонуклеотидов методом ПЦР используются неспецифичные по отношению к целевой молекуле интеркалирующие красители и специфичные ДНК-зонды, вызывающие флуоресценцию. Вследствие использования более
дорогостоящего оборудования и реагентов для количественного определения олигонуклеотидов, стоимость анализа повышается.
Использование электрохимических методов анализа для количественного определения олигонуклеотидов является перспективным направлением развития диагностики заболеваний вследствие дешевизны приборного исполнения анализа и достаточной быстроты его выполнения. Поэтому разработка миниатюрных электрохимических сенсоров для количественного определения олигонуклеотидов является актуальной в сегодняшнее время задачей. Примером таких сенсоров являются сенсоры, основанные на комплементарном связывании олигонуклеотида-ловушки с целевым олигонуклеотидом-аналитом. Одним из способов повышения чувствительности электрохимического детектирования олигонуклеотидов является использование в качестве сенсорной платформы встречно-штыревых электродов. Ранее было описано использование встречно-штыревых электродов из гладкого золота для количественно определения олигонуклеотидов - биомаркеров заболеваний. Дальнейшее улучшение аналитических характеристик подобных сенсоров может быть достигнуто с увеличением удельной поверхности электрода, за счёт использования пористых материалов. Увеличение удельной поверхности ВШЭ в данной работе было достигнуто за счёт использования электродов из пористого золота, ранее подобные структуры с изучены не были.
Цель настоящей работы состоит в изучении электрохимического поведения золотых пористых ВШЭ в качестве сенсорной платформы для количественного определения олигонуклеотидов и оценке аналитических характеристик разработанного сенсора по отношению к модельным аналитам. Для достижения целей данной работы впервые были изготовлены золотые пористые ВШЭ методом фотолитографии в вакууме. Исследование электрохимического поведения этого нового типа электродов (новой сенсорной платформы) носит фундаментальный характер, так как на основе полученных знаний возможна разработка сенсоров для определения широкого круга аналитов.

Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


В данной работе были исследованы возможности золотых пористых встречно- штыревых электродов в качестве сенсорной платформы для количественного определения олигонуклеотидов. Результаты работы привели к следующим выводам:
1. Была проведена характеризация поверхности золотых пористых ВШЭ, специально изготовленных для целей работы: были установлены геометрические размеры штырей (7.5 мкм) и зазоров (4.5 мкм), рассчитана геометрическая площадь рабочей области электрода (7.51*10-3 см2), а также определён диапазон размеров пор (30 - 160 нм).
2. На основе золотых пористых ВШЭ были разработаны двух- и трёхэлектродные сенсоры для количественно определения олигонуклеотида - биомаркера гриппа типа А с регистрацией аналитического сигнала методом спектроскопии электрохимического импеданса.
3. Оба сенсора имеют линейный диапазон от 10-9 М до 10-15 М и предел обнаружения 10­15 М олигонуклеотида - биомаркера гриппа типа А.
4. Чувствительность двухэлектродного сенсора в три раза выше, чем чувствительность трёхэлектродного сенсора: 91.61 Ом/М против 27.07 Ом/М, соответственно.
5. Сравнение трёхэлектродного сенсора на основе пористого ВШЭ с аналогичным сенсором на основе коммерчески-доступного гладкого ВШЭ показало, что сенсор на основе пористого ВШЭ при концентрации аналита 10-9 М позволяет регистрировать в 5 раз больший аналитический сигнал.
Кроме того, следует отметить, что изученные новые электроды - золотые пористые ВШЭ, - являются универсальной сенсорной платформой и могут быть применены для количественного определения множества других биомаркеров опасных заболеваний, а также в качестве сенсорной платформы для разработки газовых сенсоров.


[1] Rahman M.T. et al. Polymerase Chain Reaction (PCR): A Short Review // Anwer Khan Mod. Med. Coll. J. 2013. Vol. 4, № 1. P. 30-36.
[2] Kwok S. et al. Identification of human immunodeficiency virus sequences by using in vitro enzymatic amplification and oligomer cleavage detection // J. Virol. 1987. Vol. 61, №
5. P. 1690-1694.
[3] Lynas C. et al. Detection of latent virus mRNA in tissues using the polymerase chain reaction // J. Pathol. 1989. Vol. 157, № 4. P. 285-289.
[4] Van Gelder R.N. Applications of the Polymerase Chain Reaction to Diagnosis of Ophthalmic Disease // Surv. Ophthalmol. 2001. Vol. 46, № 3. P. 248-258.
[5] Yamamoto Y. PCR in diagnosis of infection: Detection of bacteria in cerebrospinal fluids // Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology. 2002. Vol. 9, № 3. P. 508-514.
[6] Gupta N. et al. Point-of-Care PCR Assays for COVID-19 Detection // Biosensors. 2021. Vol. 11, № 5. P. 141.
[7] Cheng S. et al. Effective amplification of long targets from cloned inserts and human genomic DNA. // Proc. Natl. Acad. Sci. 1994. Vol. 91, № 12. P. 5695-5699.
[8] Wang L., Ji C. Advances in quantitative bioanalysis of oligonucleotide biomarkers and therapeutics // Bioanalysis. 2016. Vol. 8, № 2. P. 143-155.
[9] Vandesompele J. et al. Accurate normalization of real-time quantitative RT-PCR data by geometric averaging of multiple internal control genes // Genome Biol. 2002. Vol. 3, № 7. P 1-12.
[10] Ponchel F. et al. Real-time PCR based on SYBR-Green I fluorescence: An alternative to the TaqMan assay for a relative quantification of gene rearrangements, gene amplifications and micro gene deletions // BMC Biotechnol. 2003. Vol. 3, № 1. P. 1-13.
[11] Pierce K.E., Wangh L.J. Linear-After-The-Exponential Polymerase Chain Reaction and Allied Technologies. 2007. P. 65-85.
[12] Bartel D.P. MicroRNAs: Genomics, Biogenesis, Mechanism, and Function // Cell. 2004. Vol. 116, № 2. P. 281-297.
[13] Verma S., Eckstein F. MODIFIED OLIGONUCLEOTIDES: Synthesis and Strategy for Users // Annu. Rev. Biochem. 1998. Vol. 67, № 1. P. 99-134.
[14] Yang J. et al. Solid-Phase Synthesis of Phosphorothioate Oligonucleotides Using Sulfurization Byproducts for in Situ Capping // J. Org. Chem. 2018. Vol. 83, № 19. P. 11577­11585.
[15] Khvorova A., Watts J.K. The chemical evolution of oligonucleotide therapies of clinical utility // Nat. Biotechnol. 2017. Vol. 35, № 3. P. 238-248.
... всего 185 источников


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ