Список используемых сокращений 4
ВВЕДЕНИЕ 6
1 ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР 8
1.1 Метод капиллярного электрофореза 8
1.2 Покрытия стенок кварцевого капилляра 12
1.2.1 Покрытия капилляров на основе наночастиц золота 14
1.2.2 Формирование многослойных покрытий на основе наночастиц золота... 19
1.3 Полимеры и наночастицы в качестве покрытий для хирального разделения в условиях капиллярного электрофореза 23
1.3.1 Покрытия стенок капилляра на основе полимеров для хирального разделения в КЭ 23
1.3.2 Применение альбумина в качестве хирального модификатора стенок капилляра 29
1.3.3 Покрытия капилляров на основе наночастиц для хирального разделения 32
1.3.4 Применение наночастиц золота как компонента покрытий для хирального разделения 34
1.4 Характеристика исследуемых в работе наночастиц и полимеров 39
1.5 Характеристика исследуемых в работе аналитов 42
1.5.1 Аминокислоты 42
1.5.2 fi-блокаторы 43
2 ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ 46
2.1 Аппаратурное оформление 46
2.2 Реактивы и материалы 47
2.3 Синтез, концентрирование и очистка наночастиц золота 48
2.3.1 Цитрат-стабилизированные наночастицы золота (цНЧЗ) 48
2.3.2 Наночастицы золота, модифицированные бычьим сывороточным альбумином (цНЧЗ-БСА) 49
2.4 Приготовление стандартных растворов аналитов 49
2.5 Приготовление буферных растворов для проведения электрофоретических экспериментов 50
2.6 Приготовление рабочих растворов модификаторов 51
2.7 Условия подготовки и модификации внутренней поверхности кварцевого капилляра 51
3 ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ 54
3.1 Синтез и характеристика наночастиц золота 56
3.1.1 Получение и характеристика цНЧЗ 56
3.1.2 Получение и характеристика цНЧЗ-БСА 58
3.2. Формирование многослойных покрытий на основе ПДАДМАХ, цНЧЗ и БСА .. 59
3.2.1 Оптимизация условий формирования первого слоя покрытия на основе ПДАДМАХ и его характеристика 60
3.2.2 Получение и применение хиральных двухслойных покрытий на основе ПДАДМАХ и цНЧЗ-БСА 63
3.2.3 Получение и применение полислойных покрытий, полученных путем послойного нанесения ПДАДМАХ и цНЧЗ с последующей постфункционализацией альбумином 65
3.2.3.1 Трехслойные покрытия ПДАДМАХ-цНЧЗ-БСА 65
3.2.3.2 Пятислойные покрытия на основе ПДАДМАХ, цНЧЗ и БСА 72
3.3 Формирование пятислойных покрытий на основе ПЛЛ, цНЧЗ и БСА 77
ВЫВОДЫ 82
Благодарности 84
Список используемой литературы 85
В настоящее время большинство лекарственных препаратов реализуется в виде рацематов, хотя зачастую только один энантиомер обладает требуемым терапевтическим действием. Неактивная форма может оказывать избыточную нагрузку на организм и приводить к нежелательным побочным эффектам, вплоть до летальных исходов.
Это делает актуальным создание и развитие методик разделения и определения индивидуальных энантиомеров оптически активных соединений в биологических жидкостях. Количественное определение отдельных энантиомеров возможно методами газовой, высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) и капиллярного электрофореза (КЭ).
Капиллярный электрофорез выгодно отличается от других методов разделения высокой эффективностью, простотой пробоподготовки и отсутствием необходимости использования дорогостоящего оборудования и сорбентов. Для осуществления энантиоселективного разделения в КЭ требуется применение хиральных селекторов в качестве модификаторов внутренней поверхности капилляра или фонового электролита (ФЭ): циклодекстринов (ЦД), полимерных ПАВ, ионных жидкостей, белков и т.д.
Активно использующийся хиральный модификатор - альбумин, представляет собой глобулярный, стабильный, водорастворимый белок, в структуре которого имеется 2 сайта связывания лекарств. Опубликованы данные о применении альбумина для формирования динамических покрытий путем добавления модификатора в фоновый электролит для разделения энантиомеров эфедрина, норэфедрина и 1),1,-триптофана. Главный недостаток таких покрытий - необходимость присутствия хирального селектора в ФЭ из-за недостаточного количества активных центров на поверхности капилляра.
Решение данной проблемы применения альбумина для энантиоселективного разделения в КЭ возможно путем увеличение удельной поверхности капилляра, модифицируемой альбумином. Для этого используют наночастицы (НЧ), среди которых наиболее востребованы наночастицы золота (НЧЗ), характеризующиеся способностью к специфическим взаимодействиям с аналитами. Кроме того, они могут быть легко модифицированы, что позволяет придавать им хиральные свойства. Пришивка хирального селектора может проводиться путем замены лиганда на поверхности НЧЗ. Например, цитрат-стабилизированные наночастицы золота (цНЧЗ) могут использоваться как прекурсоры для дальнейшей модификации.
Таким образом, в данной работе предлагается объединить свойства НЧЗ и альбумина при создании хиральных стационарных фаз в капиллярной электрохроматографии. Это могло бы обеспечить высокую энантиоселективность покрытий стенок кварцевого капилляра за счет развитой поверхности и увеличения концентрации хирального селектора.
В работе предложены варианты формирования многослойных покрытий на основе цНЧЗ и альбумин-модифицированных наночастиц золота (цНЧЗ-БСА) с использованием поли(диаллилдиметиламмоний хлорида) (ПДАДМАХ) в качестве связующего слоя, получаемых физической адсорбцией модификаторов на стенках кварцевого капилляра.
Полученные покрытия продемонстрировали стабильность в широком диапазоне рН (2-10), а также были опробованы при анализе модельных смесей энантиомеров аминокислот и 0-блокаторов.
1. Синтезированы цитрат-стабилизированные наночастицы золота по методу Фримана заданного размера (13±3 нм), а также проведена их поверхностная модификация альбумином. Полученные цНЧЗ и цНЧЗ-БСА охарактеризованы методами спектрофотометрии, просвечивающей электронной микроскопии и методом динамического светорассеяния. Проведена оценка размера, концентрации суспензии и поверхностного заряда полученных наночастиц. Смещение максимума поглощения и изменение дзета-потенциала цНЧЗ-БСА по сравнению с цНЧЗ косвенно свидетельствовали о прошедшей модификации.
2. Оптимизированы условия формирования первого слоя покрытия капилляра на основе ПДАДМАХ. Показано, что полученное покрытие стабильно во всем исследуемом диапазоне рН (2-10).
3. Проведена модификация капилляра, покрытого ПДАДМАХ, с использованием БСА, цНЧЗ-БСА и цНЧЗ с последующей постфункционализацией наночастиц альбумином на поверхности капилляра. Покрытия охарактеризованы с точки зрения стабильности в различных средах, оценен рабочий диапазон рН (2-10) и получены СЭМ-снимки внутренней поверхности модифицированных капилляров.
4. Показано, что последовательное нанесение слоев модификаторов приводит к формированию более плотных покрытий, обеспечивающих возможность снижения концентрации БСА в ФЭ, необходимой для разделения энантиомеров триптофана (до 5 мкМ) и пропранолола (до 20 мкМ).
5. Оптимизированы условия внутрикапиллярной постмодификации цНЧЗ альбумином. Показано, что при проведении постмодификации 0,15 мг/мл раствором БСА в воде, образованные покрытия обеспечивают полное разделение энантиомеров пропранолола и триптофана при введении 20 мкМ добавки БСА в ФЭ.
6. Показано, что использование пятислойных покрытий ПДАДМАХ-цНЧЗ- ПДАДМАХ-цНЧЗ-БСА позволяют проводить разделение энантиомеров выбранных аналитов без введения добавки хирального селектора в ФЭ за счет формирования максимально плотных покрытий с развитой поверхностью и, следовательно, высокой концентрации хирального селектора на стенках капилляра.
7. Сформированы пятислойные покрытия ПЛЛ-цНЧЗ-ПЛЛ-цНЧЗ-БСА.
Проведена оценка стабильности покрытия при различных значениях рН, получены СЭМ-снимки внутренней поверхности модифицированного капилляра. Показано, что стационарные многослойные покрытия также обеспечивают разделение энантиомеров триптофана и пропранолола без введения добавки альбумина в ФЭ.
8. Проведено сравнение пятислойных покрытий, полученных с использованием ПДАДМАХ и поли-Ь-лизина в качестве связующих слоев. Первые оказываются более стабильными (до 120 аналитических циклов против 10 в случае использования ПЛЛ), вторые - обеспечивают существенно более низкие пределы обнаружения отдельных энантиомеров (до 30 мкг/мл) и большую эффективность и разрешение при разделении энантиомеров триптофана и пропранолола.
1. Л. А. Карцева, Д. В. Макеева, Е. А. Бессонова. Современное состояние метода капиллярного электрофореза // Журнал аналитической химии. 2020 75(12) 1059-1079.
2. Л.А.Карцова, Е.А. Бессонова. Методы on-line концентрирования в капиллярном электрофорезе. Учебно-методическое пособие. СПб.: Изд-во ВВМ, 2018. 68 с.
3. Shallan, A., Guijt, R. & Breadmore, M. Capillary Electrophoresis: Basic Principles. Encyclopedia of Forensic Sciences: Second Edition (Elsevier Ltd., 2013).
4. Bela Neiman, Eli Grushka and Ovadia Lev. Use of gold nanoparticles to enhance capillary electrophoresis // Anal. Chem. 2001 (73) 5220-5227.
5. Kitagawa, F., Otsuka, K. Recent applications of on-line sample preconcentration techniques in capillary electrophoresis. J. Chromatogr. A. 2014 (1335) 43-60.
6. Д.В.Макеева, К.С. Антипова, Л.А. Карцова. Электрофоретическое определение карбоновых кислот в сыворотке крови с внутрикапиллярным концентрированием // Аналитика и контроль. 2022 (26) 13-20.
7. Nehme, R. &Perrin, C. Highly charged polyelectrolyte coatings to prevent adsorption during protein and peptide analysis in capillary electrophoresis. Methods Mol. Biol. 984, 191-206 (2013).
8. L.A. Kartsova, D. V. Makeeva, V.A. Davankov. Nano-sized polymer and polymer- coated particles in electrokinetic separations // Trends in Analytical Chemistry. 2019 (120) 115656.
9. Капиллярный электрофорез / Под ред. Карцовой Л.А. / Проблемы аналитической химии. Т. 18. М.: Наука, 2014. 444 с.
10. Hu, W., Hong, T., Gao, X. & Ji, Y. Applications of nanoparticle-modified stationary phases in capillary electrochromatography // Trends in Analytical Chemistry. 2014 (61) 29-39.
11. Sykora, D. et al. Application of gold nanoparticles in separation sciences // Journal of Separation Science. 2010 (33) 372-387.
12. C.J. Yu, C.L. Su, W.L. Tseng. Separation of acidic and basic proteins by nanoparticle-filled capillary electrophoresis // Anal. Chem. 2006 (78) 8004-8010.
13. Qu, Q., Zhang, X., Shen, M., Liu, Y. Open-tubular capillary electrochromatography using a capillary coated with octadecylamine capped gold nanoparticles // Electrophoresis. 2008 (29) 901-909.
14. J. You, L. Zhao, G. Wang, H. Zhou, J. Zhou, L. Zhang, Quaternized cellulosesupported gold nanoparticles as capillary coatings to enhance protein separation by capillary electrophoresis // J. Chromatogr. A. 2014 (1343) 160-166.
15. Z. Zhang, B. Yan, K. Liu, Y. Liao, H. Liu. CE-MS analysis of heroin and its basic impurities using a charged polymer protected gold nanoparticle-coated capillary // Electrophoresis. 2009 (30) 379-387...(66)