Введение
1.1 Металлизация ДНК
1.2 Электрофизические свойства металлизированных ДНК структур
1.3 1,10 Фенантролин и его производные
Методы
2.1 Низкоградиентная вискозиметрия
2.2 Сканирующая электронная микроскопия
2.3 Спектроскопия поглощения
2.4 Круговой дихроизм
2.5 Сканирующая атомно-силовая микроскопия
2.6 Оптическая микроскопия
2.7 Исследование электрофизических свойств образцов
2.8 Используемое программное обеспечение
Материалы
Экспериментальные результаты
3.1 Исследование вязкости растворов ДНК с изучаемыми соединениями
3.2 Данные, полученные методом КД
3.3 Температурно-индуцированные спектральные изменения
3.3.1 Температурно-индуцированные спектральные изменения растворов свободного
фенантролина
3.3.2 Температурно-индуцированные спектральные изменения растворов свободного AgPhen
3.3.3 Температурно-индуцированные спектральные изменения раствора ДНК
3.3.4 Температурно-индуцированные спектральные изменения растворов ДНК c Phen ...... 42
3.3.5 Температурно-индуцированные спектральные изменения растворов ДНК c AgNO3 .. 46
3.3.6 Температурно-индуцированные спектральные изменения растворов ДНК c Ag-Phen 503
3.3.7 Сравнение температурно-индуцированных спектральных изменений растворов ДНК c
различными соединениями
3.4 Самоорганизующиеся в растворе структуры
3.4.1 Морфология структур, образующихся в растворе без восстановителя.
3.4.2 Морфология структур, образующихся в растворе с восстановителем
3.4.3 Влияние pH на формирование надмолекулярных структур
3.4.4 Влияние изменения концентрации компонент в растворах
3.4.5 Образцы, полученные при взаимодействии ДНК с фенантролином
3.4.6 Структуры, образованные Ag-Phen без ДНК
Выводы из микроскопии
3.5 Исследование электрофизических свойств образцов
Выводы
Список литературы
В течение последних 30 лет активно ведется разработка методик и технологий создания разнообразных объектов и устройств нано- и микроскопических размеров с использованием молекулы
ДНК1-4. Диаметр равный 2 нанометрам и 3.4 нанометровый шаг витка двойной спирали, соответствующий нативной B форме макромолекулы, безусловно, делают ее чрезвычайно интересной с
точки зрения создания подобных нанообъектов. Кроме того, длинные макромолекулы ДНК, а
также короткие одно- и двуцепочечные олигонуклеотидные последовательности предлагают широкий спектр технологических возможностей в силу сайт-специфического связывания одноцепочечных нуклеотидных последовательностей по принципу комплементарности с образованием водородных связей между нуклеотидами. Это свойство позволяет применять ДНК для создания
двух и трехмерных структур и адресного размещения на них различных объектов, что дает возможность получить новые функциональные свойства этих объектов в силу упорядоченного расположения. С этой целью на основу, созданную из ДНК, были контролируемо размещены такие
объекты как белки5,6, пептиды7, углеродные нанотрубки8 и наночастицы9-14 различных металлов.
Упорядоченное размещение наночастиц металлов представляет интерес с точки зрения создания
наноразмерных проводящих структур. В большинстве работ по созданию подобных нанопроводов с использованием ДНК макромолекула или иные полинуклеотидные агрегаты используются
в качестве основы, с которой связываются готовые наночастицы9,10,13,14 или затравки (этап активации ДНК), на которых впоследствии наночастицы агрегируют из раствора15,16. Электрофизические свойства и линейные размеры получаемых объектов зависят от множества факторов, влияющих на формирование данных структур на каждом этапе. В конечном счете, их можно свести
к таким параметрам как равномерность расположения металлических наночастиц, их размер и
характерные расстояния между ними. Для улучшения проводимости образующихся нанопроводов требуется разработка методов наиболее равномерного распределения металлических наночастиц, что позволит минимизировать их размер без ущерба для электрофизических характеристик всей структуры и, следовательно, уменьшить толщину самих нанопроводов. В данной работе исследуется один из путей решения этой задачи, а именно использование ДНК связывающего лиганда, содержащего ион серебра, в качестве активирующего агента.
Показано, что в растворе соединение взаимодействует с молекулой ДНК. При этом формируются комплексы, в которых серебро координируется к атомам азота оснований ДНК,
а фенантролин, связанный с серебром, упорядоченно располагается на поверхности спирали. Фенантролиновый лиганд, выходящий в раствор, вступает во взаимодействие с макромолекулой, интеркалируя между основаниями.
При больших концентрациях Ag-Phen или фенантролина в растворе ДНК образуются фибриллы. Наличие иона серебра в составе исследуемого соединения необходимо для образования более устойчивых, крупных и однородных структур.
Добавление восстановителя изменяет свойства поверхности фибрилл и делает их более
стабильными по отношению к таким воздействиям, как понижение pH.
Восстановленные структуры имеют лучшую проводимость, чем любые компоненты данной системы в различных сочетаниях. Увеличение количества серебра в составе структур
увеличивает их проводимость. Увеличение концентрации восстановителя или времени
восстановления напротив, сказываются на ней негативно. Во всех системах проводимость
осуществляется за счет связанных молекул воды и при помещении образца в вакуум падает до уровня шума.
1. A.V. Pinheiro, D. Han, W.M. Shih and H. Yan. Challenges and Opportunities for Structural DNA
Nanotechnology. Nat. Nanotechnol. (2011) 6: 763 − 72.
2. N.C. Seeman. Nanomaterials Based on DNA. Annu. Rev. Biochem. (2010) 79: 65 – 87.
3. C. Lin, Y. Liu, H. Yan. Designer DNA Nanoarchitectures. Biochemistry (2009) 48: 1663 – 1674.
4. E. Stulz, G.H. Clever, K. Yamana, A. Erbe, J.K. Barton, A.L. Furst, M.A. Grodick, J. Choi and
T. Majima. DNA in Supramolecular Chemistry and Nanotechnology. (2015).
5. H. Yan et al. DNA-Templated Self-Assembly of Protein Arrays and Highly Conductive Nanowires. Science (2003) 301: 1882 – 1884.
6. B. Saccà et al. Orthogonal Protein Decoration of DNA Origami. Angew. Chem. Int. Ed. (2010)
49: 9378 – 9383.
7. B.A.R Williams et al. Self-Assembled Peptide Nanoarrays: an Approach to Studying ProteinProtein Interactions. Angew. Chem. Int. Ed. (2007) 46: 3051 – 3054.
8. H.T. Maune et al. Self-Assembly of Carbon Nanotubes into Two-Dimensional Geometries Using
DNA Origami Templates. Nature Nanotech. (2010) 5: 61 – 66.
9. C.A. Mirkin, R.L. Letsinger, R.C. Mucic and J.J. Storhoff. A DNA-Based Method for Rationally
Assembling Nanoparticles into Macroscopic Materials. Nature (1996) 382: 607.
10. J. Zhang, Y. Liu, J. Ke and H. Yan. Periodic Square-like Gold Nanoparticle Arrays Templated
by Self-Assembled 2D DNA Nanogrids on a Surface. Nano Lett. (2006) 6: 248 – 251.
11. C. Brun, C. Tidiane-Diagne, C. Carmignani, S. Torrengo, P.H. Elchinger, P. Reynaud, A. Thuaire, S. Cheramy, D. Gasparutto, R. Tiron, A. Filoramo and X. Baillin. Development of a Statistical Approach for DNA-Based Nanowires Electrical Study. Microelectronics Packaging Conference (2015).
12. J. Pate. Fabrication and Characterisation of DNA-Templated Copper Nanowires. Newcastle University (2013).
13. A. Ongaro, F. Griffin, P. Beecher, L. Nagle, D. Iacopino, A. Quinn, G. Redmond and D. Fitzmaurice. DNA-Templated Assembly of Conducting Gold Nanowires between Gold Electrodes
on a Silicon Oxide Substrate. Chem. Mater. (2005) 17: 1959 – 1964.
14. O. Harnack, W.E. Ford, A. Yasuda and J.M. Wessels. Tris(hydroxymethyl)phosphine-Capped
Gold Particles Templated by DNA as Nanowire Precursors. Nanoletters (2002) 2(9): 919 – 923.
15. E. Braun, Y. Eichen, U. Sivan and G. Ben-Yoseph. DNA Templated Assembly and Electrode
Attachment of a Conducting Silver Wire. Nature (1998) 391: 775.
16. J. Richter. Metallization of DNA. Physica E (2003) 16: 157 – 173.108
17. Q. Gu, C. Cheng, R. Gonela, S. Suryanarayanan, S. Anabathula, K. Dai and D.T. Haynie. DNA
Nanowire Fabrication. Nanotechnology (2006) 17: R14 – R25.
18. J. Lu, L. Yang, A. Xie and Y. Shen. DNA-Templated Photo-Induced Silver Nanowires: Fabrication and Use in Detection of Relative Humidity. Biophysical Chemistry (2009) 145: 91 – 97.
19. B. Uprety, E.P. Gates, Y. Geng, A.T. Woolley and J.N. Harb. Site-Specific Metallization of Multiple Metals on a Single DNA Origami Template. Langmuir (2014) 30: 1134 – 1141.
20. T. Scheibel, R. Parthasarathy, G. Sawicki, X.M. Lin, H. Jaeger and S.L. Lindquist. Conducting
Nanowires Built by Controlled Self-Assembly of Amyloid Fibers and Selective Metal Deposition. PNAS (2003) 100(8): 4527 – 4532.
21. S. Roy, H. Vedala, A.D. Roy, D. Kim, M. Doud, K. Mathee, H. Shin, N. Shimamoto, V. Prasad
and W. Choi. Direct Electrical Measurements on Single-Molecule Genomic DNA Using
Single-Walled Carbon Nanotubes. Nano Letters (2008) 2(1): 26 – 30.
22. R.K. Narla, Y. Dong, O.J. D’Cruz, C. Navara and F.M. Uckun. Bis(4,7-dimethyl-1,10-phenanthroline) Sulfatooxovanadium(IV) as a Novel Apoptosis-Inducing Anticancer Agent. Clinical
Cancer Research (2000) 6: 1546 – 1556.
23. S. Roy, K.D. Hagen, P.U. Maheswari, M. Lutz, A.L. Spek, J. Reedijk and G.P. van Wezel.
Phenanthroline Derivatives with Improved Selectivity as DNA-Targeting Anticancer or
Antimicrobial Drugs. ChemMedChem (2008) 3: 1427 – 1434.
24. P. Thapa and E.S. Lee. 2,4-Diaryl-5,6-dihydro-1,10-phenanthrolines with Furyl or Thienyl
Moiety at 4-Position: Synthesis, Topoisomerase I and II Inhibitory Activity, and Cytotoxicity.
Bull. Korean Chem. Soc. (2012) 33(5): 1769 (N).
25. W.H. Mahmoud, G.G. Mohamed and M.M.I. El-Dessouky. Synthesis, Characterization and in
vitro Biological Activity of Mixed Transition Metal Complexes of Lornoxicam with 1,10-
phenanthroline. Int. J. Electrochem. Sci. (2014) 9: 1415 – 1438.
26. A. Bencinia and V. Lippolis. 1,10-Phenanthroline: A Versatile Building Block for the
Construction of Ligands for Various Purposes. Coordination Chemistry Reviews (2010)
254(17–18): 2096 – 2180.
27. M. Grzelczak, N. Kulisic, M. Prato and A. Mateo-Alonso. Multimode Assembly of Phenanthroline Nanowires Decorated with Gold Nanoparticles. Chem. Commun. (2010) 46: 9122 – 9124.
28. M. Grzelczak, N. Kulisic, M. Prato and A. Mateo-Alonso. The Influence of Molecular Structure
on the Self-Assembly of Phenanthroline Derivatives into Crystalline Nanowires. Part. Part. Syst.
Charact. (2014) 31: 121 – 125.109
29. И. Сердюк, Н. Заккаи и Дж. Заккаи. Методы в Молекулярной Биофизике. (2009) 1, 2.
30. Теоретические Основы Сканирующей Электронной Микроскопии для Пользователей
МРЦ-НТ.
31. А.С. Спирин. Биохимия (1958) 23: 656 – 662.
32. A.S. Spirin. Spectrophotometry Determination of Total Amount of Nucleic Acids. Biokhimiya
(1958) 23(4): 656 – 662.
33. P.A. Sokolov, N.V. Bazlov, A.O. Puchkova, O.F. Vyvenko and N.A. Kasyanenko. DNA Immobilization on n-type Silicon Surface and Electrophysical Properties of Au-DNA-(n-Si) Structures. Prot. Met. Phys. Chem. Surf. (2011) 47: 566, doi:10.1134/S2070205111050170.