Введение
1. Обзор литературы
1.1 Роль липидных рафтов в миграции клеток
1.2 Структура липидных рафтов
1.2.1 Основные компоненты и функции липидных рафтов
10
1.2.2 Модели липидных рафтов
11
1.2.3 Значимость липидных рафтов
13
1.2.4 Разрушение липидных рафтов с помощью
14
метил-бета-циклодекстрина (МбЦД)
14
1.3 Что такое метил-бета-циклодекстрин?
16
1.3.1 МбЦД используется для удаления холестерина из клеточных мембран
17
1.3.2 Влияние МбЦД на распределение холестерина между различными клеточными
мембранами
17
1.3.3 Извлечение холестерина из липидных рафтов
18
2. Материалы и методы
20
2.1 Клеточные культуры.
20
2.2. Измерение подвижности клеток методом зарастания экспериментальной раны
20
2.3. Определение скорости клеточного движения методом измерения миграции одиночных
21
клеток
2.4. Микроскопия
21
2.5. Обработка изображений
22
2.6. Статистическая обработка данных
23
Э. Результаты и обсуждение
24
3.1. Проверка автоматического метода работы программного обеспечения TScratch для измерения площади зарастания экспериментальной раны
24
3.2 Измерение подвижности клеток методом зарастания экспериментальной раны
3.3 Определение скорости клеточного движения методом измерения миграции одиночных
28
клеток
4.Выводы
30
5.Список литературы
Миграция клеток на субстрате представляет собой сумму нескольких временных
и пространственно-координированных процессов, которые включают в себя
формирование псевдоподий на лидирующем активном крае, адгезию лидирующего
края к субстрату, перемещение тела клетки и разборку адгезий (контактов) в хвостовой
части клетки. Актиновый цитоскелет лежит в основе клеточного передвижения, его
реорганизация обеспечивает движущую силу для продвижения вперед мембраны на
лидирующем крае и тянущую силу для перемещения тела клетки (Wang et al., 2013).
Формирование фокальных контактов на переднем крае клетки и их разборка на
хвостовом участке также необходимы для перемещения клеток (Webb et al., 2002; Webb
et al., 2004; Broussard, 2008). Факторы, влияющие на реорганизацию актинового
цитоскелета, являются потенциальными регуляторами динамики фокальных контактов
(Wang et al., 2013). Одними из таких вероятных факторов являются липидные рафты.
Липидные рафты являются особыми мембранными микродоменами, которые
состоят из холестерина, сфинголипидов, включая сфингомиелин и ганглиозиды, а
также некоторых типов белков. В структуру липидных рафтов входит Src-семейство
киназ, регулирующих работу киназ фокальных адгезий (FAK). FAK влияют на
миграцию клеток, регулируя активность малых ГТФаз Rho, белков, активирующих
ГТФазу, фактор обмена гуанинового нуклеотида (GEF) (Schlaepfer et al, 2004; Mitra et
al., 2005). Липидные рафты регулируют разборку фокальных контактов и играют
важную роль при миграции опухолевых клеток, подчеркивая потенциал агентов,
воздействующих на рафты, в качестве эффективных противораковых лекарственных
средств. Одним из агентов, вызывающим разрушение липидных рафтов вследствие
частичного извлечения мембранного холестерина, является метил-бета-циклодекстрин
(МбЦД) (Wang et al., 2013).
МбЦД представляет собой циклический олигосахарид, состоящий из α-(1-4) -
связанных звеньев D-глюкопиранозы, которые являются продуктами первичной
деградации крахмала (Davis, Brewster, 2004; Uekama, 2004). Это соединение давно
признано в качестве мощного носителя гидрофобных лекарственных средств,
поскольку оно, хотя и растворимо в воде, содержит гидрофобную полость, которая
может инкапсулировать различные гидрофобные молекулы. Относительно высокие
(≥10 мМ) концентрации МбЦД и относительно длительные (≥ 30 мин) воздействия
приводят к истощению холестерина из всех мембранных фракций. Однако холестерин
из липидных рафтов под действием циклодекстринов удаляется более эффективно, чем
из других мембранных фракций (Gaus et al., 2004; Rouquette-Jazdanian et al., 2006)
Была проведена проверка работы автоматического метода программы TScratch.
Данный метод позволяет определять площадь зарастания экспериментальной раны с
небольшой погрешность измерения.
2. Частичная экстракция мембранного холестерина при воздействии 5 мМ МбЦД на
клетки линии 3T3B-SV40 приводит к уменьшению скорости зарастания
экспериментальной раны.
3. Клетки демонстрируют снижение скорости движения в эксперименте по миграции
одиночных клеток вследствие воздействия на них 5 мМ МбЦД.
4. Результаты оценки скорости клеточного движения, полученные на моделях
зарастания экспериментальной раны и при исследовании подвижности одиночных
клеток подтверждают, что разрушение липидных рафтов при действии 5 мМ МбЦД
снижает скорость клеточной миграции клеток 3Т3B-SV40.
Чубинский-Надеждин В.И. Роль мембранного холестерола в регуляции
механочувствительных ионных каналов и актинового цитоскелета. Автореферат дис.
… канд. биол. наук. Институт цитологии Российской академии наук, СанктПетербург, 2012.
2. Aaronson SA., Todaro GJ. 1968. Development of 3T3-like lines from Balb-c mouse embryo
cultures: transformation susceptibility to SV40. J. Cell Physiol. 72(2):141-148.
3. Almeida P.F.F., Pokorny A., Hinderliter A. 2005. Thermodynamics of membrane domains.
Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Biomembranes.1720:1
4. Ananthakrishnan R., Ehrlicher A. 2007. The Forces Behind Cell Movement. Int. J. Biol. Sci.
3(5):303-317.
5. Apajalahti A., Niemela P., Govindan P.N., Miettinen M.S., Salonen E., Marrink S-J., et al.
2010. Concerted diffusion of lipids in raft-like membranes. Faraday Disc.144:411–430
6. Brian P. Head, Hemal H. Patel, Paul A. Insel. 2013. Biochim. Biophys. Acta. 1838(2):532-
545
7. Broussard J.A., Webb D.J., Kaverina I. 2008. Asymmetric focal adhesion disassembly in
motile cells. Curr. Opin. Cell Biol. 20: 85–90.
8. Davis M.E., Brewster M.E. 2004. Cyclodextrin-based pharmaceutics: past, present and
future. Nat. Rev. Drug Discov. 3:1023–1035.
9. Dreja K., Voldstedlund M., Vinten J., Tranum-Jensen J., Hellstrand P., Sward K. 2002.
Cholesterol depletion disrupts caveolae and differentially impairs agonist-induced arterial
contraction. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 22:1267–1272.
10. Gaus K., Kritharides L., Schmitz G., Boettcher A., Drobnik W., Langmann T., Quinn C.M.,
Death A., Dean R.T., Jessup W. 2004. Apolipoprotein A-1 interaction with plasma
membrane lipid rafts controls cholesterol export from macrophages. FASEB J.03-0486
11. Gebäck T., Schulz M.M., Koumoutsakos P., Detmar M. 2009. TScratch: a novel and simple
software tool for automated analysis of monolayer wound healing assays. Biotechniques.
46(4):265-274.
12. Hao M., Lin S.X., Karylowski O.J., Wustner D., McGraw T.E., Maxfield F.R.
2002.Vesicular and non-vesicular sterol transport in living cells. The endocytic recycling
compartment is a major sterol storage organelle. J. Biol. Chem. 277:609–617.
13. Harder T., Scheiffele P., Verkade P., Simons K. 1998. Lipid domain structure of the plasma
membrane revealed by patching of membrane components. Journal of Cell Biology. 141 (4):
929–942.
14. Hynes R.O. 2002. Integrins: Bidirectional, allosteric signalling machines. Cell. 110:673–68732
15. Jeon J.H., Kim S.K., Kim H.J., Chang J., Ahn C.M., Chang Y.S. 2010. Lipid raft
modulation inhibits NSCLC cell migration through delocalization of the focal adhesion
complex. Lung Cancer. 69(2):165-171.
16. Kaverina I., Krylyshkina O., Small J.V. 2002 Regulation of substrate adhesion dynamics
during cell motility. Int. J. Biochem. Cell Biol. 34: 746–761.
17. Kilsdonk E.P., Yancey P.G., Stoudt G.W., Bangerter F.W., Johnson W.J., Phillips M.C.,
Rothblat G.H. 1995. Cellular cholesterol efflux mediated by cyclodextrins. J Biol Chem.
270:17250–17256
18. Kulkarni G. V., McCulloch C. A. G. 1994. Serum deprivation induces apoptotic cell death
in a subset of Balb/c 3T3 fibroblasts. Journal of Cell Science. 107: 1169-1179.
19. Leclercq L. 2016. Interactions between cyclodextrins and cellular components: Towards
greener medical applications? Beilstein J. Org. Chem. 12:2644-2662.
20. Levitan I, Christian A.E., Tulenko T.N., Rothblat G.H. 2000. Membrane cholesterol content
modulates activation of volume-regulated anion current (VRAC) in bovine endothelial cells.
Journal of General Physiology. 115:405–416.
21. Liang C.C, Park A.Y., Guan J.L. 2007. In vitro scratch assay: a convenient and inexpensive
method for analysis of cell migration in vitro. Nat. Protoc. 2(2):329-333.
22. López C.A., de Vries A.H., Marrink S.J. 2011. Molecular mechanism of cyclodextrin
mediated cholesterol extraction. PLoS Comput. Biol. 7(3):e1002020.
23. Manneville S.E., Hall A. 2002. Rho GTPases in cell biology. Nature. 420:629–635.
24. Masuzzo P., Van Troys M., Ampe C., Martens L. 2016. Taking Aim at Moving Targets in
Computational Cell Migration. Trends Cell Biol. 26(2):88-110.
25. Messner M., Kurkov S.V., Jansook P., Loftsson T. 2010. Self-assembled cyclodextrin
aggregates and nanoparticles. Int. J. Pharm. 387: 199–208.
26. Mitra S.K., Hanson D.A., Schlaepfer D. 2005 Focal adhesion kinase: in command and
control of cell motility. Nature Reviews: Molecular Cell Biology. 6:56–68.
27. Murai, T. 2011. The role of lipid rafts in cancer cell adhesion and migration. International
Journal of Cell Biology. 2012:763283