Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Генотипические и фенотипические характеристики штаммов Streptococcus agalactiae,выделенных у беременных женщин и новорожденных детей

Работа №136941

Тип работы

Бакалаврская работа

Предмет

биология

Объем работы44
Год сдачи2019
Стоимость4300 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
19
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


Список сокращений 3
Введение 4
Глава 1. Обзор литературы 5
1.1. Систематическое положение и биологические свойства Streptococcus agalactiae. 5
1.2. Факторы вирулентности СГВ 8
1.3. Серотипы, сиквенс-типы и клональные комплексы СГВ 11
1.4. Клиническая значимость СГВ-инфекций 13
1.5. Профилактика СГВ-инфекции 15
Глава 2. Материалы и методы 18
2.1. Штаммы S. agalactiaeи условия их культивирования 18
2.2. Подготовка культуры для определения чувствительности к антибиотикам 20
2.3. Определение чувствительности к антибиотикам 20
2.4. Выделение ДНК 21
2.5. Полимеразная цепная реакция (ПЦР) 22
2.6. Линейный электрофорез в агарозном геле 25
2.7. Статистическая обработка данных 25
Глава 3. Результаты и обсуждение 26
3.1. Резистентность к антибиотикам 26
3.2. Распределение генных локусов, кодирующих фимбрии СГВ 30
3.3. Распределение типов капсульных полисахаридов 34
3.4. Комбинации факторов вирулентности 36
Выводы 38
Список литературы 39

Streptococcus agalactiae(стрептококки группы В, СГВ) являются основной причиной неонатального сепсиса и менингита, а также вызывают инфекции у беременных женщин, новорожденных детей, пожилых людей и людей с ослабленным иммунитетом [1, 2]. В качестве профилактики неонатальной инфекции, вызванной стрептококками группы B, с 1990-х годов и по сегодняшний день используют интранатальное внутривенное введение антибиотиков инфицированным женщинам [3]. Несмотря на то, что этот метод профилактики показал свою эффективность, со временем его использование перестало приводить к снижению заболеваемости [4]. Кроме того, если СГВ остается полностью чувствительным к пенициллину и ампициллину (препараты первой линии для антибиотикопрофилактики), то антибиотикорезистентность к некоторым альтернативным препаратам, используемым при аллергии на пенициллин (макролидам и клиндамицину), неуклонно растет. Для получения более эффективного метода профилактики начались разработки профилактических вакцин на основе капсульного полисахарида (capsular polysaccharide, CPS), белков фимбрий и других факторов вирулентности СГВ [5]. Эту задачу осложняет широкое разнообразие каждого типа мишени для вакцины, а также то, что распределение разных типов факторов вирулентности СГВ отличается в разных странах и может изменяться со временем.
Трудности разработки эффективных мер профилактики СГВ-инфекций связаны как с гетерогенностью и динамичностью генетического состава популяций СГВ, так и с отсутствием актуальных эпидемиологических данных для многих стран/регионов мира, включая Российскую Федерацию. Целью данного исследования стало изучение клинически значимых характеристик штаммов S. agalactiae,выделенных от беременных женщин и новорожденных детей в Санкт-Петербурге. Для достижения этой цели были поставлены задачи:
1) Выявление резистентности к антибиотикам, применяемым при СГВ-инфекциях (пенициллин, клиндамицин, эритромицин и ванкомицин);
2) Оценка распределения генов факторов вирулентности (фимбрий и капсульного полисахарида) среди клинических изолятов S. agalactiae;
3) Оценка изменчивости этих показателей в течение последних 8 лет посредством сравнения штаммов СГВ, выделенных в периоды 2010-2011 и 2017-2018 гг.


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


1) Чувствительность всех изученных штаммов S. agalactiaeк пенициллину и ванкомицину позволяет применять европейские рекомендации антибиотикопрофилактики СГВ-инфекций в Санкт-Петербурге.
2) Увеличение доли резистентных к клиндамицину штаммов среди стрептококков, изолированных в 2017-2018 годах, требует проверки клинических изолятов на устойчивость к этому антибиотику перед его применением.
3) Отсутствие смены доминирующих PI-генотипов S. agalactiaeсвидетельствует о перспективности белков фимбрий как мишени для создания вакцин.
4) Подавляющее большинство изученных штаммов S. agalactiaeотносились к пяти вакцинным CPS-генотипам.



1. Baker C.J. The spectrum of perinatal group B streptococcal disease // Vaccine. Elsevier Ltd, 2013. Vol. 31, № S4. P. D3-D6.
2. Phares C.R. et al. Epidemiology of invasive group B streptococcal disease in the United States, 1999-2005. // J. Am. Med. Assoc. 2008. Vol. 299, № 17. P. 2056-2065.
3. Renzo G.C. Di et al. Intrapartum GBS screening and antibiotic prophylaxis : a European consensus conference // J Matern Fetal Neonatal Med. 2014. Vol. 27. P. 1-17.
4. Edmond K.M. et al. Group B streptococcal disease in infants aged younger than 3 months: Systematic review and meta-analysis // Lancet. Elsevier Ltd, 2012. Vol. 379, № 9815. P. 547-556.
5. Chen V.L., Avci F.Y., Kasper D.L. A Maternal Vaccine against Group B Streptococcus: Past, Present, ans Future. 2013. Vol. 28, № 31(04).
6. Whiley R.A. et al. Rosenbach 1884, 22. 2015.
7. Shottmuller H. Die Artunterscheidung der fur den menschen Pathogen Streptokokken durch Blutagar. // Munch. Med. Wochenschr. 1903. № 50. P. 849-853.
8. Brown J.H. The use of blood agar for the study of streptococci. Monograph 9. The Rockefeller Institute for Medical Research. New York, N.Y., 1919.
9. Lancefield B.R.C. A SEROLOGICAL D I F F E R E N T I A T I O N OF HUMAN AND ( From the Hospital of The Rockefeller Institute for Medical Research ). 1932. Vol. 1919, № 1. P. 571-595.
10. Sherman J.M. The streptococci // Bacteriol. Rev. 1937. Vol. 1, № 1. P. 3-97.
11. Elliott J.A., Facklam R.R., Richter C.B. Nonhemolytic Group B,. 1990. Vol. 28, № 3. P. 628-630.
12. Christie R., Atkins N.E., Munch-Peterson E. A note on a lytic phenomenon shown by group B streptococci // Aust. J. Exp. Biol. Med. Sci. 1944. Vol. 22. P. 197-200.
13. Smith, JP Durfee, KK Marymont J.J. A review of laboratory methods for identification of group B streptococci (Streptococcus agalactiae). // Am. J. Med. Technol. 1979. Vol. 45, № 3. P. 199-204.
14. Тотолян А.А., Суворов А.Н., Дмитриев А.В. Стрептококки группы В в патологии человека. “Человек,” 2009.
15. Fischetti V.A., Pancholi V., Schneewind O. Conservation of a hexapeptide sequence in the anchor region of surface proteins from Gram-positive cocci // Mol. Microbiol. 1990. Vol. 4, № 9. P. 1603-1605.
16. Glaser P. et al. Genome sequence of Streptococcus agalactiae , a pathogen causing invasive neonatal disease. 2002. Vol. 45. P. 1499-1513.
17. Tettelin H. et al. Complete Genome Sequence of a Virulent Isolate of Streptococcus
pneumoniae. 2014. Vol. 498, № 2001.
18. Shabayek S., Spellerberg B. Group B streptococcal colonization, molecular characteristics, and epidemiology // Front. Microbiol. 2018. Vol. 9, № MAR. P. 1-14.
19. Nizet V., Rubens C.E. Pathogenic mechanisms and virulence fac- tors of group B streptococci // Gram-Positive Pathog. 2006. P. 152-168.
20. Slotved H.C. et al. Serotype IX, a proposed new Streptococcus agalactiae serotype // J. Clin. Microbiol. 2007. Vol. 45, № 9. P. 2929-2936.
21. Cieslewicz M.J. et al. Structural and Genetic Diversity of Group B Streptococcus Capsular Polysaccharides. 2005. Vol. 73, № 5. P. 3096-3103.
22. Jiang S. et al. Regulation and Function of Pilus Island 1 in Group B Streptococcus. 2012. P. 2479-2490.
23. Lauer P. et al. Genome analysis reveals pili in Group B Streptococcus. 2005. № July. P. 95420.
24. Rosini R. et al. Identification of novel genomic islands coding for antigenic pilus-like structures in Streptococcus agalactiae // Mol. Microbiol. 2006. Vol. 61, № 1. P. 126-141.
25. Teatero S. et al. Genetic evidence for a novel variant of the pilus Island 1 backbone protein in group B Streptococcus // J. Med. Microbiol. 2017. Vol. 66, № 10. P. 1409-1415.
26. Dramsi S. et al. Assembly and role of pili in group B streptococci // Mol. Microbiol. 2006. Vol. 60, № 6. P. 1401-1413.
27. Pansegrau W., Bagnoli F. Pilus Assembly in Gram-Positive Bacteria. 2015.
28. Martins E.R. et al. Distribution of pilus islands in Streptococcus agalactiae that cause human infections: Insights into evolution and implication for vaccine development // Clin. Vaccine Immunol. 2013. Vol. 20, № 2. P. 313-316.
29. Meehan M., Cunney R., Cafferkey M. Molecular epidemiology of group B streptococci in Ireland reveals a diverse population with evidence of capsular switching // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2014. Vol. 33, № 7. P. 1155-1162.
30. Lu B. et al. Distribution of pilus islands and alpha-like protein genes of group B Streptococcus colonized in pregnant women in Beijing, China // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2015. Vol. 34, № 6. P. 1173-1179.
31. Madzivhandila M. et al. Distribution of pilus islands of group B streptococcus associated with maternal colonization and invasive disease in South Africa // J. Med. Microbiol. 2013. Vol. 62, № PART 2. P. 249-253.
32. Russell N.J. et al. Maternal Colonization With Group B Streptococcus and Serotype Distribution Worldwide : Systematic Review and. 2017. Vol. 65, № Suppl 2.
33. Martins E.R. et al. Analysis of group B streptococcal isolates from infants and pregnant women in Portugal revealing two lineages with enhanced invasiveness // J.
Clin. Microbiol. 2007. Vol. 45, № 10. P. 3224-3229.
34. Alhhazmi A., Hurteau D., Tyrrell G.J. Epidemiology of invasive group b streptococcal disease in Alberta, Canada, from 2003 to 2013 // J. Clin. Microbiol. 2016. Vol. 54, № 7. P. 1774-1781.
35. Jones N. et al. Multilocus Sequence Typing System for Group B Streptococcus // J. Clin. Microbiol. 2003. Vol. 41, № 6. P. 2530-2536.
36. Davies H.D. et al. Multilocus Sequence Typing of Serotype III Group B Streptococcus and Correlation with Pathogenic Potential // J. Infect. Dis. 2004. Vol. 189, № 6. P. 1097-1102.
37. Bohnsack J.F. et al. Population structure of invasive and colonizing strains of Streptococcus agalactiae from neonates of six U.S. academic centers from 1995 to 1999 // J. Clin. Microbiol. 2008. Vol. 46, № 4. P. 1285-1291.
38. Luan S. et al. Multilocus Sequence Typing of Swedish Invasive Group B Streptococcus Isolates Indicates a Neonatally Associated Genetic Lineage and Capsule Switching Multilocus Sequence Typing of Swedish Invasive Group B Streptococcus Isolates Indicates a Neonatally Asso. 2005. Vol. 43, № 8. P. 3727-3733.
39. Skov Sorensen U.B. et al. Emergence and global dissemination of host-specific Streptococcus agalactiae clones // MBio. 2010. Vol. 1, № 3. P. 1-9.
40. Da Cunha V. et al. Streptococcus agalactiae clones infecting humans were selected and fixed through the extensive use of tetracycline // Nat. Commun. 2014. Vol. 5. P. 1-12.
41. Brochet M. et al. Shaping a bacterial genome by large chromosomal replacements, the evolutionary history of Streptococcus agalactiae // Proc. Natl. Acad. Sci. 2008. Vol. 105, № 41. P. 15961-15966.
42. Bellais S. et al. Capsular switching in group B streptococcus CC17 hypervirulent clone: A future challenge for polysaccharide vaccine development // J. Infect. Dis. 2012. Vol. 206, № 11. P. 1745-1752.
43. Teatero S. et al. Characterization of invasive group B Streptococcus strains from the greater Toronto area, Canada // J. Clin. Microbiol. 2014. Vol. 52, № 5. P. 1441-1447.
44. Chaffin D.O. et al. The Serotype of Type Ia and III Group B Streptococci Is Determined by the Polymerase Gene within the Polycistronic Capsule Operon The Serotype of Type Ia and III Group B Streptococci Is Determined by the Polymerase Gene within the Polycistronic Capsule Op // J. Bacteriol. 2000. Vol. 182, № 16. P. 4466-4477.
45. Teatero S. et al. Serotype distribution, population structure, and antimicrobial resistance of group b streptococcus strains recovered from colonized pregnant women // J. Clin. Microbiol. 2017. Vol. 55, № 2. P. 412-422.
46. Lancefield B.Y.R.C., Hare R. THE SEROLOGICAL DIFFERENTIATION OF PATHOGENIC AND NON-PATHOGENIC STRAINS OF HEMOLYTIC STREPTOCOCCI FROM PARTURIENT WOMEN * ( From the Hospital of The Rockefeller Institute for Medical Research , New York , and the Bernhard Baron Memorial Research Laborato. 1934.
47. Fry R.M. Fatal Infections by Haemolytic Streptococcus Group B. // Lancet. 1938. Vol.
1. P. 199-201.
48. Schuchat a. Epidemiology of group B streptococcal disease in the United States: shifting paradigms. // Clin. Microbiol. Rev. 1998. Vol. 11, № 3. P. 497-513.
49. Schuchat a. Group B streptococcus. // Lancet. 1999. Vol. 353, № 9146. P. 51-56.
50. Schrag S.J. et al. Group B Streptococcal Disease in the Era of Intrapartum Antibiotic Prophylaxis // N. Engl. J. Med. 2000. Vol. 342, № 1. P. 15-20.
51. Centers for Disease Control and Prevention. Prevention of Perinatal Group B Streptococcal Disease // Mmwr. 2010. Vol. 59, № No. RR-10. P. 1-32.
52. Russell N.J. et al. Risk of Early-Onset Neonatal Group B Streptococcal Disease with Maternal Colonization Worldwide: Systematic Review and Meta-analyses // Clin. Infect. Dis. 2017. Vol. 65, № Suppl 2. P. S152-S159.
53. Boyer K.M., Gotoff S.P. Strategies for chemoprophylaxis of GBS early-onset infections // Antibiot Chemother. 1985. Vol. 35. P. 267-280.
54. Boyer K.M., Gotoff S.P. Prevention of early-onest neonatal group B streptococcal disease with selective intrapartum chemoprophylaxis // N Engl J Med. 1986. Vol. 314. P.1665-1669.
55. Bloom S.L. et al. Ampicillin for neonatal group B streptococcal prophylaxis: how rapidly can bactericidal concentrations be achieved? // Am J Obs. Gynecol. 1996. Vol. 175. P. 974-976.
56. Weisblum B. Erythromycin Resistance by Ribosome Modification. 1995. Vol. 39, № 3. P. 577-585.
57. Zhong P. et al. Methylation in MLS-Resistant Streptococcus pneumoniae by Macrolides and Ketolides Induction of Ribosome. 1999. Vol. 5, № 3.
58. Giersing B.K. et al. Report from the World Health Organization’s Product Development for Vaccines Advisory Committee (PDVAC) meeting, Geneva, 7-9th Sep 2015 // Vaccine. 2016. Vol. 34, № 26. P. 2865-2869.
59. Madhi S.A. et al. Antibody Kinetics and Response to Routine Vaccinations in Infants Born to Women Who Received an Investigational Trivalent Group B Streptococcus Polysaccharide CRM197-Conjugate Vaccine during Pregnancy // Clin. Infect. Dis. 2017. Vol. 65, № 11. P. 1897-1904.
60. Kobayashi M. et al. Group B Streptococcus vaccine development: present status and future considerations , with emphasis on perspectives for low and middle income countries [ version 1; referees : 2 approved ] Referee Status : 2016. № 0.
61. Kobayashi M. et al. WHO consultation on group B Streptococcus vaccine development: Report from a meeting held on 27 - 28 April 2016 // Vaccine. The Author(s), 2016. № April.
62. Fabbrini M. et al. The Protective Value of Maternal Group B Streptococcus Antibodies: Quantitative and Functional Analysis of Naturally Acquired Responses to Capsular Polysaccharides and Pilus Proteins in European Maternal Sera // Clin. Infect. Dis. 2016. Vol. 63, № 6. P. 746-753.
63. Margarit I. et al. Preventing Bacterial Infections with Pilus-Based Vaccines: the Group B Streptococcus Paradigm // J. Infect. Dis. 2009. Vol. 199, № 1. P. 108-115.
64. Nuccitelli A. et al. Structure-based approach to rationally design a chimeric protein for an effective vaccine against Group B Streptococcus infections. // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 2011. Vol. 108, № 25. P. 10278-10283.
65. Lin S.M. et al. Vaccination with a latch peptide provides serotypeindependent protection against group B streptococcus infection in mice // J. Infect. Dis. 2018. Vol. 217, № 1. P. 93-102.
66. Santillan D.A., Andracki M.E., Hunter S.K. Protective immunization in mice against group B streptococci using encapsulated C5a peptidase // Am. J. Obstet. Gynecol. 2008. Vol. 198, № 1. P. 1-6.
67. Суворов, А. Н. Грабовская, К. Б. Леонтьева, Г. Ф. Мерингова, Л. Ф. Королева, И. Н. Дуплик, Н. В. Тотолян А.А. Рекомбинантные фрагменты консервативных белков стрептококков группы В как основа специфической вакцины // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2010. № 2. P. 44-50.
68. Santillan D.A. et al. Efficacy of polymeric encapsulated C5a peptidasebased group B streptococcus vaccines in a murine model // Am. J. Obstet. Gynecol. Elsevier Inc., 2011. Vol. 205, № 3. P. 249.e1-249.e8.
69. Lamy M.C. et al. Rapid detection of the “highly virulent” group B streptococcus ST-17 clone // Microbes Infect. 2006. Vol. 8, № 7. P. 1714-1722.
70. Margues, M. B. Kasper, D. L. Shroff A. et al. Functional activity of antibodies to the group B polysaccharide of group B streptococci elicited by a polysaccharide-protein conjugate vaccine . Functional Activity of Antibodies to the Group B Polysaccharide of Group B Streptococci Elicited by Polysaccha. 1994. Vol. 62, № 5. P. 1593-1599.
71. Kim S. et al. Cost-effectiveness of a potential group B streptococcal vaccine for pregnant women in the United States // Vaccine. Elsevier Ltd, 2017. P. 1-10.
72. Martins E.R., Melo-Cristino J., Ramirez M. Evidence for rare capsular switching in Streptococcus agalactiae // J. Bacteriol. 2010. Vol. 192, № 5. P. 1361-1369.
73. Brochet M., Couve E., Glaser P. Integrative Conjugative Elements and Related Elements Are Major Contributors to the Genome Diversity of Streptococcus agalactiae □ §. 2008. Vol. 190, № 20. P. 6913-6917.
74. Teatero S. et al. Clonal Complex 17 Group B Streptococcus strains causing invasive disease in neonates and adults originate from the same genetic pool. 2016. № December 2015. P. 1-9.
75. Springman A.C. et al. Pilus distribution among lineages of Group B Streptococcus: An evolutionary and clinical perspective // BMC Microbiol. 2014. Vol. 14, № 1. P. 1-11.
76. Yao K. et al. Capsular gene typing of streptococcus agalactiae compared to serotyping by latex agglutination // J. Clin. Microbiol. 2013. Vol. 51, № 2. P. 503-507.
77. Poyart C. et al. Multiplex PCR assay for rapid and accurate capsular typing of group B streptococci // J. Clin. Microbiol. 2007. Vol. 45, № 6. P. 1985-1988.
78. Imperi M. et al. A multiplex PCR assay for the direct identification of the capsular type (Ia to IX) of Streptococcus agalactiae // J. Microbiol. Methods. 2010. Vol. 80, №
2. P. 212-214.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.



Подобные работы


©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ