Гемофилия А (HA, hemophilia A) – наиболее распространённый дефект свёртывания крови (Bi et al., 1995), вызванный мутациями в находящемся на Х-хромосоме гене фактора свёртываемости крови VIII (FVIII). HA встречается преимущественно у мужчин (1 из 5 000-10 000 во всех популяциях), но может проявляться и у женщин-носительниц в результате различной инактивации Х-хромосом. . До 70% пациентов с HA демонстрируют угрожающий жизни фенотип, имея меньше чем 1% от нормального уровня активности FVIII в плазме крови (Porada et al., 2014), и страдают от частых спонтанных кровотечений, приводящих к гематомам, хроническим болезненным заболеваниям суставов и потенциально угрожающему жизни внутреннему кровотечению. Современное лечение - регулярное профилактическое внутривенное вливание рекомбинантного или полученного из донорской плазмы фактора крови FVIII, является дорогостоящей процедурой и не может обеспечить долговременного эффекта.
Перспективной методикой лечения НА представляется генная терапия с использованием искусственной хромосомы человека (ИХЧ) в качестве вектора, несущего нормальной копии гена FVIII в клетки пациента. В качестве клеток-носителей для доставки ИХЧ в организм пациента могут выступить индуцированные плюрипотентные стволовые (иПС) клетки, полученные из соматических клеток самого пациента путем форсированной экспрессии генов, кодирующих факторы репрограммирования Oct4, Sox2, Klf4 и c-Myc (OSKM) (Okita and Yamanaka, 2011). Использование иПС клеток снимает проблему поиска подходящего донора и возможного отторжения трансплантата.
Целью данной работы является получение индуцированных стволовых клеток (иПС) из фибробластов мыши, мутантной по гену фактора VIII свёртываемости крови для геннотерапевтической модели лечения гемофилии А с помощью искусственных хромосом.
В соответствии с поставленной целью сформулированы следующие задачи:
1. Наработать лентивирусные векторы с индуцируемой экспрессией репрограммирующих факторов – Oct4, Sox2, Klf4, c-Myc (OSKM).
2. Получить первичные фибробласты мыши, мутантные по гену фактора VIII свёртываемости крови, и провести их репрограммирование с помощью лентивирусной системы экспрессии OSKM.
3. Провести отбор индивидуальных иПС клонов и подтвердить экспрессию эндогенного плюрипотентного маркера Oct4.
4. Подтвердить плюрипотентность полученных иПС клеток с помощью анализа на формирование тератом и наличию в них производных трёх зародышевых листков.
ВЫВОДЫ:
1. Получены индуцированные плюрипотентные стволовые клетки мыши, дефектные по гену, кодирующему фактор VIII свёртываемости крови.
2. Полученные индуцированные плюрипотентные стволовые клетки экспрессируют эндогенный фактор Oct4, и способны развиваться в ткани всех зародышевых листков, что свидетельствует о их полном репрограммировании и плюрипотентности.
1. Томилин А.Н. 2009. Роль и механизм действия транскрипционного фактора Oct4 в поддержании плюрипотентности стволовых клеток млекопитающих. Докторская диссертация. Санкт-Петербург. ИНЦ РАН. 111 с.
2. Akkina R.K., Walton R.M., Chen M.L., Li Q.X., Planelles V. and Chen I.S. 1996. High-efficiency gene transfer into CD34+ cells with a human immunodeficiency virus type 1-based retroviral vector pseudotyped with vesicular stomatitis virus envelope glycoprotein G. J. Virol. 70 : 2581–2585.
3. Apostolou E., Hochedlinger K. 2013. Chromatin dynamics during cellular reprogramming. Nature. 502 : 462–471.
4. Bi L., Lawler A.M., Antonarakis S.E., High K.A., Gearhart J.D., Kazazian H.H. Jr. 1995. Targeted disruption of the mouse factor VIII gene produces a model of haemophilia A. Nat Genet. 10(1) : 119-121.
5. Binder M.D., Hirokawa N., Windhorst U. 2009. Encyclopedia of Neuroscience. Berlin: Springer.
6. Bontempo F.A., Lewis J.H., Gorenc T.J., Spero J.A., Ragni M.V., Scott J.P., Starzl T.E. 1987. Liver Transplantation in Hemophilia A. Blood. 69(6) : 1721–1724.
7. Botquin V., Hess H., Fuhrmann G., Anastassiadis C., Gross M.K., Vriend G., Schöler H.R. 1998. New POU dimer configuration mediates antagonistic control of an osteopontin preimplantation enhancer by Oct-4 and Sox-2. Genes Dev. 12 : 2073–2090.
8. Carey B.W., Markoulaki S., Hanna J., Saha K., Gao Q., Mitalipova M., Jaenisch R. Reprogramming of murine and human somatic cells using a single polycistronic vector. 2009. Proc Natl Acad Sci. 106 : 157-162.
9. Chen J., Liu J., Yang J., Chen Y., Chen J., Ni S., Song H., Zeng L., Ding K., Pei D. 2011. BMPs functionally replace Klf4 and support efficient reprogramming of mouse fibroblasts by Oct4 alone. Cell Res. 21 : 205-212.
10. Chen M., Zhang H., Wu J., Xu L., Xu D., Sun J., He Y., Zhou X., Wang Z., Wu L., Xu S., Wang J., Jiang S., Zhou X., Hoffman A.R., Hu X., Hu J., Li T. 2012. Promotion of the induction of cell pluripotency through metabolic remodeling by thyroid hormone triiodothyronine-activated PI3K/AKT signal pathway. Biomaterials. 33 : 5514-5523.
11. Cowan C.A., Atienza J., Melton D.A. & Eggan K. 2005. Nuclear reprogramming of somatic cells after fusion with human embryonic stem cells. Science. 309 : 1369–1373.
12. David L., Polo J.M. 2014. Phases of reprogramming. Stem Cell Res. 12 : 754-761.
13. Di Stefano B., Sardina J.L., van Oevelen C., Collombet S., Kallin E.M., Vicent G.P., Lu J., Thieffry D., Beato M., Graf T. 2014. C/EBPα poises B cells for rapid reprogramming into induced pluripotent stem cells. Nature. 506 : 235-239.
14. Dos Santos R.L., Tosti L., Radzisheuskaya A., Caballero I., Kaji K., Hendrich B., Silva J. 2014. MBD3/NuRD Facilitates Induction of Pluripotency in a Context-Dependent Manner. Cell Stem Cell. 15 : 1-9.
15. Evans M.J., Kaufman M.H. 1981. Establishment in culture of pluripotential cells from mouse embryos. Nature. 292 : 154-156.
...