Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Мутации генов субъединиц гиразы и топоизомеразы IV у изолятов Mycoplasma hominis,выделенных на территории Санкт-Петербурга

Работа №134699

Тип работы

Бакалаврская работа

Предмет

биология

Объем работы52
Год сдачи2018
Стоимость4370 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
12
Не подходит работа?

Узнай цену на написание



Введение
1. Обзор литературы.
1.1 Систематическое положение и биология Mycoplasma hominis
1.1.1 Геном M. hominis
1.1.2 Морфология M. hominis
1.1.3 Метаболизм M. hominis
1.1.3.1 Системы транспорта питательных веществ и минеральных солей
1.2 Особенности M. hominis, связанные с её патогенностью
1.2.1 Адгезия M. hominis к клеткам хозяина
1.2.2 Взаимодействие M. hominis с иммунной системой и антигенная изменчивость....... 14
1.2.3 Адаптация M. hominis к получению питательных веществ в организме хозяина ..... 15
1.2.4 Развитие внутриклеточной инфекции M. hominis
1.2.5 Внутривидовые различия патогенных свойств M. hominis
1.3 Устойчивость M. hominis к противомикробным препаратам
1.4 Структура фторхинолонов и особенности развития резистентности к ним у
патогенных для человека микоплазм
1.4.1 Мишени фторхинолонов
1.4.2 Факторы устойчивости бактерий к фторхинолонам
1.4.3 Особенности развития устойчивости к фторхинолонам у представителей вида M.
hominis
2. Материалы и методы
2.1 Объект исследования
2.2 Культивирование M. hominis
2.3 Определение минимальных подавляющих концентраций
2.4 Выделение ДНК
2.5 Полимеразная цепная реакция
2.6 Выделение ДНК из геля
2.7 Секвенирование ДНК
2.8 Обработка данных секвенирования
2.9 U-критерий Уилкоксона – Манна – Уитни
3. Результаты
3.1 Культивирование изолятов M. hominis и определение минимальной подавляющей
концентрации (МПК)
3.2 Оптимизация ПЦР и очистка ампликонов
3.3 Анализ результатов секвенирования
3.4 Оценка связи выявленных мутаций с устойчивостью к фторхинолонам
4. Обсуждение
Выводы
Список литературы
Приложение 1.

Более десятка видов микоплазм могут обитать в организме человека. Среди них
есть патогенные виды, Mycoplasma pneumoniae и M. genitalium, а также условнопатогенные микоплазмы: M. fermentans, M. penetrans, M. spermatophilum и M. hominis. В
организме человека микоплазмы преимущественно колонизируют органы мочеполовой и
дыхательной систем.
M. hominis является условно-патогенной бактерией и в здоровом организме обитает
в урогенитальном тракте в качестве комменсала. Главным образом, она ассоциирована с
развитием различных болезней мочеполовой системы, например, таких как
бактериальный вагиноз, воспалительные заболевания органов малого таза, бесплодие. В
редких случаях M. hominis может распространяться в организме, заселяя другие ткани и
органы, в результате чего спектр вызываемых заболеваний расширяется до септицемии,
артрита и других болезней. При этом M. hominis представляет собой серьёзную угрозу для
беременных женщин и плода, поскольку она может вызвать ряд тяжёлых нарушений,
включая задержку развития плода и мертворождение. У новорождённых детей она
является причиной развития менингита, пневмонии, хронической болезни лёгких и
различных абсцессов. Наиболее остро проявляются патогенные свойства M. hominis у
людей с ослабленным иммунитетом.
Несмотря на то, что M. hominis участвует в развитии довольно широкого круга
заболеваний, причины, по которым она превращается из комменсала в патогена, до сих
пор до конца не изучены. M. hominis характеризуется генетической гетерогенностью, и
геномы её изолятов могут довольно сильно различаться между собой. За счёт антигенной
вариабельности M. hominis уклоняется от иммунитета хозяина и занимает новые ниши в
организме. Всё это приводит к затруднению оценки её патогенного потенциала.
Высокая частота мутаций, характерная для M. hominis, вносит существенный вклад
в развитие устойчивости к антибиотикам и противомикробным соединениям, которые
применяются для лечения микоплазмозов. Выбор препаратов для борьбы с микоплазмами
ограничен особенностями их цитологии и физиологии, например, на них не действуют
соединения, относящиеся к бета-лактамам и сульфаниламидам. Для лечения заболеваний
человека, вызванных микоплазмами, в основном применяют макролиды, фторхинолоны и
тетрациклины, но в последнее время наблюдается значительное снижение их
эффективности. Применение макролидов в качестве препаратов первой линии6
определяется их низкой токсичностью, благодаря которой их можно назначать в детском
возрасте и при беременности. В качестве препаратов второй линии обычно рассматривают
фторхинолоны и тетрациклины.
Такие противомикробные соединения, как фторхинолоны не только оказывают
неблагоприятное воздействие на организм пациента, но и длительно сохраняются в воде и
почве после выведения из него. Присутствие фторхинолонов во внешней среде
способствует накоплению мультирезистентных бактерий, и, кроме того, они могут
обладать генотоксическим эффектом, поэтому их рассматривают в качестве загрязнителей
окружающей среды (Khadra A. et al., 2012).
Одной из причин увеличения числа штаммов, резистентных ко многим
противомикробным препаратам, считают появление мутаций в генах, кодирующих
мишени данных соединений. В случае фторхинолонов мишенями являются
топоизомеразы второго порядка: гираза и топоизомераза IV. В ходе изучения генов,
которые кодируют данные ферменты, в них были выявлены области, мутации в которых
приводят к развитию устойчивости к этим препаратам. Эти участки были названы
областями, определяющими резистентность к фторхинолонам, или quinolone resistance
determining region (QRDR). В работах, посвящённых исследованию устойчивости M.
hominis к фторхинолонам, координаты QRDR были определены для каждого гена. В гене
gyrA эта область расположена на участке между 346 и 738 нуклеотидами, в гене gyrB -
между 1270 и 1493 нуклеотидами (Bebear C.M. et al., 1997), в гене parC - между 139 и 573
нуклеотидами, в гене parE - между 1207 и 1503 нуклеотидами (Bebear C.M. et al., 1998).
Целью данного исследования является выявление изолятов M. hominis, выделенных
на территории Санкт-Петербурга, являющихся носителями мутаций в генах субъединиц
гиразы и топоизомеразы IV, и оценка их восприимчивости к фторхинолонам. В рамках
поставленной цели решаются следующие задачи:
1. Выявление устойчивых к фторхинолонам штаммов M. hominis, выделенных
в лаборатории иммунохимических технологий НИИ ЭМ им. Пастера.
2. Амплификация и секвенирование геномных последовательностей M.
hominis, мутации в которых ассоциированы с устойчивостью к фторхинолонам.
3. Оценка вклада выявленных мутаций в развитие устойчивости у штаммов с
различными показателями резистентности к фторхинолонам.7
Работа выполнена в лаборатории молекулярно-биологических технологий отдела
новых технологий, НИИ ЭМ им. Пастера.

Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


1. В развитие устойчивости M. hominis к фторхинолонам помимо мутаций генов
gyrA/gyrB и parC/parE вносят вклад иные факторы.
2. У M. hominis наиболее подвержен изменениям участок, отвечающий за
устойчивость к фторхинолонам, в составе гена parC.
3. На территории Санкт-Петербурга распространены устойчивые варианты M.
hominis, которые не несут мутаций в области QRDR.


1. Ваганова, А.Н. Молекулярные основы устойчивости патогенных для
человека микоплазм к фторхинолонам // Инфекция и иммунитет. 2017. Т. 7.
Вып. 3. С. 231-244.
2. Заручейнова, О.В. Методы лабораторной диагностики урогенитальных
инфекций, ассоциированных с Mycoplasma hominis и Ureaplasma spp. //
Инфекция и иммунитет. 2014. Т. 4. Вып. 4. С. 331-338.
3. Ивантер, Э.В., Коросов, А.В. Элементарная биометрия: Учеб. пособие.
Петрозаводск: Изд-во ПетрГУ, 2010. 104 с.
4. Лакин, Г.Ф. Биометрия: Учеб. пособие для биол. спец. вузов. 4-е изд.
Москва: Высшая школа, 1990. 352 с.
5. Пиневич, А.В. Микробиология. Биология прокариотов: Учебник в 3 томах.
Санкт-Петербург: Изд-во С.-Петерб. ун-та, 2009. Т. 3. 457 с.
6. Чарушин, В.Н., Носова, Э.В., Липунова, Г.Н., Чупахин, О.Н. Фторхинолоны:
синтез и применение Москва: Физматлит, 2013. 320 с.
7. Aldred, K.J., Kerns, R.J., Osheroff, N. Mechanism of quinolone action and
resistance // Biochemistry. 2014. Vol. 53. N 10. P. 1565-74.
8. Allen-Daniels, M.J., Serrano, M.G., Pflugner, L.P., Fettweis, J.M., Prestosa,
M.A., Koparde, V.N., Brooks, J.P., Strauss, J.F., 3rd, Romero, R.,
Chaiworapongsa, T., Eschenbach, D.A., Buck, G.A., Jefferson, K.K.
Identification of a gene in Mycoplasma hominis associated with preterm birth and
microbial burden in intraamniotic infection // Am J Obstet Gynecol. 2015. Vol.
212. N 6. P. 779.e1-779.e13.
9. Barile, M.F., Schimke, R.T., Riggs, D.B. Presence of the arginine dihydrolase
pathway in Mycoplasma // J Bacteriol. 1966. Vol. 91. N 1. P. 189-92.
10. Bebear, C.M., Bove, J.M., Bebear, C., Renaudin, J. Characterization of
Mycoplasma hominis mutations involved in resistance to fluoroquinolones //
Antimicrob Agents Chemother. 1997. Vol. 41. N 2. P. 269-73.
11. Bebear, C.M., Renaudin, H., Charron, A., Bove, J.M., Bebear, C., Renaudin, J.
Alterations in Topoisomerase IV and DNA Gyrase in Quinolone-Resistant
Mutants of Mycoplasma hominis Obtained In Vitro // Antimicrob Agents
Chemother. 1998. Vol. 42. N 9. P. 2304-11.
12. Bebear, C.M., Charron, A., Bove, J.M., Bebear, C., Renaudin, J. Cloning and
nucleotide sequences of the topoisomerase IV parC and parE genes of46
Mycoplasma hominis // Antimicrob Agents Chemother. 1998. Vol. 42. N 8. P.
2024-31.
13. Bebear, C.M., Renaudin, H., Charron, A., Clerc, M., Pereyre, S., Bebear, C. DNA
gyrase and topoisomerase IV mutations in clinical isolates of Ureaplasma spp.
and Mycoplasma hominis resistant to fluoroquinolones // Antimicrob Agents
Chemother. 2003. Vol. 47. N 10. P. 3323-5.
14. Bebear, C.M., Renaudin, J., Charron, A., Renaudin, H., de Barbeyrac, B.,
Schaeverbeke, T., Bebear, C. Mutations in the gyrA, parC, and parE genes
associated with fluoroquinolone resistance in clinical isolates of Mycoplasma
hominis // Antimicrob Agents Chemother. 1999. Vol. 43. N 4. P. 954-6.
15. Bisacchi, G.S., Hale, M.R. A “double-edged” scaffold: antitumor power within
the antibacterial quinolone // Curr Med Chem. 2016. Vol. 23. N 6. P. 520-577.
16. Blondeau, J.M. Fluoroquinolones: mechanism of action, classification, and
development of resistance // Surv Ophthalmol. 2004. Vol. 49 Suppl 2. P. S73-8.
17. Boesen, T., Emmersen, J., Jensen, L.T., Ladefoged, S.A., Thorsen, P., Birkelund,
S., Christiansen, G. The Mycoplasma hominis vaa gene displays a mosaic gene
structure // Mol Microbiol. 1998. Vol. 29. N 1. P. 97-110.
18. Collin, F., Karkare, S., Maxwell, A. Exploiting bacterial DNA gyrase as a drug
target: current state and perspectives // Appl Microbiol Biotechnol. 2011. Vol. 92.
N 3. P. 479-97.
19. Diaz-Garcia, F.J., Herrera-Mendoza, A.P., Giono-Cerezo, S., Guerra-Infante,
F.M. Mycoplasma hominis attaches to and locates intracellularly in human
spermatozoa // Hum Reprod. 2006. Vol. 21. N 6. P. 1591-8.
20. Fernandes, P.B. Mode of action, and in vitro and in vivo activities of the
fluoroquinolones // J Clin Pharmacol. 1988. Vol. 28. N 2. P. 156-68.
21. Goret, J., Le Roy, C., Touati, A., Mesureur, J., Renaudin, H., Claverol, S.,
Bebear, C., Beven, L., Pereyre, S. Surface lipoproteome of Mycoplasma hominis
PG21 and differential expression after contact with human dendritic cells // Future
Microbiol. 2016. Vol. 11. N 2. P. 179-94.
22. Gruson, D., Pereyre, S., Renaudin, H., Charron, A., Bebear, C., Bebear, C.M. In
vitro development of resistance to six and four fluoroquinolones in Mycoplasma
pneumoniae and Mycoplasma hominis, respectively // Antimicrob Agents
Chemother. 2005. Vol. 49. N 3. P. 1190-3.47
23. Harasawa, R., Koshimizu, K., Kitagawa, M., Asada, K., Kato, I. Nucleotide
sequence of the arginine deiminase gene of Mycoplasma hominis // Microbiol
Immunol. 1992. Vol. 36. N 6. P. 661-5.
24. Hasegawa, Y., Nakamura, M., Takada, T., Yamana, K. Synthesis and
hybridization of oligonucleotides attached to a redox reporter via ethenyl linker at
5-position of pyrimidine base // Nucleic Acids Symp Ser (Oxf). 2009. N 53. P.
145-6.
25. Henrich, B., Hopfe, M., Kitzerow, A., Hadding, U. The adherence-associated
lipoprotein P100, encoded by an opp operon structure, functions as the
oligopeptide-binding domain OppA of a putative oligopeptide transport system in
Mycoplasma hominis // J Bacteriol. 1999. Vol. 181. N 16. P. 4873-8.
26. Hirose, K., Kawasaki, Y., Kotani, K., Abiko, K., Sato, H. Characterization of a
point mutation in the parC gene of Mycoplasma bovirhinis associated with
fluoroquinolone resistance // J Vet Med B Infect Dis Vet Public Health. 2004.
Vol. 51. N 4. P. 169-75.
27. Hooper, D.C. Mechanisms of fluoroquinolone resistance // Drug Resist Updat.
1999. Vol. 2. N 1. P. 38-55.
28. Hooper, D.C. Emerging mechanisms of fluoroquinolone resistance // Emerg
Infect Dis. 2001. Vol. 7. N 2. P. 337-41.
29. Hooper, D.C., Jacoby, G.A. Mechanisms of drug resistance: quinolone resistance
// Ann N Y Acad Sci. 2015. Vol. 1354. P. 12-31.
30. Hopfe, M., Deenen, R., Degrandi, D., Kohrer, K., Henrich, B. Host cell responses
to persistent mycoplasmas--different stages in infection of HeLa cells with
Mycoplasma hominis // PLoS One. 2013. Vol. 8. N 1. P. e54219.
31. Jacoby, G.A. Mechanisms of resistance to quinolones // Clin Infect Dis. 2005.
Vol. 41 Suppl 2. P. S120-6.
32. Kenny, G.E., Hooton, T.M., Roberts, M.C., Cartwright, F.D., Hoyt, J.
Susceptibilities of genital mycoplasmas to the newer quinolones as determined by
the agar dilution method // Antimicrob Agents Chemother. 1989. Vol. 33. N 1. P.
103-7.
33. Khadra, A., Pinelli, E., Lacroix, M.Z., Bousquet-Melou, A., Hamdi, H., Merlina,
G., Guiresse, M., Hafidi, M. Assessment of the genotoxicity of quinolone and
fluoroquinolones contaminated soil with the Vicia faba micronucleus test //
Ecotoxicol Environ Saf. 2012. Vol. 76. N 2. P. 187-92.48
34. Khan, S., Zakariah, M., Palaniappan, S. Computational prediction of Mycoplasma
hominis proteins targeting in nucleus of host cell and their implication in prostate
cancer etiology // Tumour Biol. 2016. Vol. 37. N 8. P. 10805-13.
35. Kitzerow, A., Hadding, U., Henrich, B. Cyto-adherence studies of the adhesin
P50 of Mycoplasma hominis // J Med Microbiol. 1999. Vol. 48. N 5. P. 485-93.
36. Bergey's Manual of Systematic Bacteriology / Krieg, N.R., Ludwig, W.,
Whitman, W., Hedlund, B.P., Paster, B.J., Staley, J.T., Ward, N., Brown, D.,
Parte, A., eds. 2nd ed.: Springer, 2010. Vol. 4: The Bacteroidetes, Spirochaetes,
Tenericutes (Mollicutes), Acidobacteria, Fibrobacteres, Fusobacteria,
Dictyoglomi, Gemmatimonadetes, Lentisphaerae, Verrucomicrobia, Chlamydiae,
and Planctomycetes. 966 p.
37. Kulkova, N., Babalova, M., Brnova, J., Krcmery, V. Transferable fluoroquinolone
resistance in Enterobacteriaceae and Pseudomonas aeruginosa isolated from
hemocultures // Cent Eur J Public Health. 2014. Vol. 22. N 1. P. 60-3.
38. Li, X.Z. Quinolone resistance in bacteria: emphasis on plasmid-mediated
mechanisms // Int J Antimicrob Agents. 2005. Vol. 25. N 6. P. 453-63.
39. Li, X.Z., Nikaido, H. Efflux-mediated drug resistance in bacteria: an update //
Drugs. 2009. Vol. 69. N 12. P. 1555-623.
40. Lupala, C.S., Gomez-Gutierrez, P., Perez, J.J. Molecular determinants of the
bacterial resistance to fluoroquinolones: a computational study // Curr Comput
Aided Drug Des. 2013. Vol. 9. N 2. P. 281-8.
41. Mayer, C., Takiff, H. The Molecular Genetics of Fluoroquinolone Resistance in
Mycobacterium tuberculosis // Microbiol Spectr. 2014. Vol. 2. N 4. P. Mgm2-
0009-2013.
42. Mustaev, A., Malik, M., Zhao, X., Kurepina, N., Luan, G., Oppegard, L.M.,
Hiasa, H., Marks, K.R., Kerns, R.J., Berger, J.M., Drlica, K. Fluoroquinolonegyrase-DNA complexes: two modes of drug binding // J Biol Chem. 2014. Vol.
289. N 18. P. 12300-12.
43. Naeem, A., Badshah, S.L., Muska, M., Ahmad, N., Khan, K. The Current Case of
Quinolones: Synthetic Approaches and Antibacterial Activity // Molecules. 2016.
Vol. 21. N 4. P. 268.
44. Pagedar, A., Singh, J., Batish, V.K. Efflux mediated adaptive and cross resistance
to ciprofloxacin and benzalkonium chloride in Pseudomonas aeruginosa of dairy
origin // J Basic Microbiol. 2011. Vol. 51. N 3. P. 289-95.49
45. Parvege, M.M., Rahman, M., Hossain, M.S. Genome-wide Analysis of
Mycoplasma hominis for the Identification of Putative Therapeutic Targets //
Drug Target Insights. 2014. Vol. 8. P. 51-62.
46. Pereyre, S., Sirand-Pugnet, P., Beven, L., Charron, A., Renaudin, H., Barre, A.,
Avenaud, P., Jacob, D., Couloux, A., Barbe, V., de Daruvar, A., Blanchard, A.,
Bebear, C. Life on arginine for Mycoplasma hominis: clues from its minimal
genome and comparison with other human urogenital mycoplasmas // PLoS
Genet. 2009. Vol. 5. N 10. e1000677.
47. Pommier, Y., Leo, E., Zhang, H., Marchand, C. DNA topoisomerases and their
poisoning by anticancer and antibacterial drugs // Chem Biol. 2010. Vol. 17. N 5.
P. 421-33.
48. Raherison, S., Gonzalez, P., Renaudin, H., Charron, A., Bebear, C., Bebear, C.M.
Evidence of active efflux in resistance to ciprofloxacin and to ethidium bromide
by Mycoplasma hominis // Antimicrob Agents Chemother. 2002. Vol. 46. N 3. P.
672-9.
49. Raherison, S., Gonzalez, P., Renaudin, H., Charron, A., Bebear, C., Bebear, C.M.
Increased expression of two multidrug transporter-like genes is associated with
ethidium bromide and ciprofloxacin resistance in Mycoplasma hominis //
Antimicrob Agents Chemother. 2005. Vol. 49. N 1. P. 421-4.
50. Molecular Biology and Pathogenicity of Mycoplasmas / Razin, S., Herrmann, R.,
eds. New York: Kluwer Academic/Plenum Publishers, 2002. 588 p.
51. Redgrave, L.S., Sutton, S.B., Webber, M.A., Piddock, L.J. Fluoroquinolone
resistance: mechanisms, impact on bacteria, and role in evolutionary success //
Trends Microbiol. 2014. Vol. 22. N 8. P. 438-45.
52. Rice, L.B. Mechanisms of resistance and clinical relevance of resistance to betalactams, glycopeptides, and fluoroquinolones // Mayo Clin Proc. 2012. Vol. 87. N
2. P. 198-208.
53. Sahm, D.F., Thornsberry, C., Jones, M.E., Karlowsky, J.A. Factors influencing
fluoroquinolone resistance // Emerg Infect Dis. 2003. Vol. 9. N 12. P. 1651-4.
54. Sato, T., Yokota, S., Okubo, T., Ishihara, K., Ueno, H., Muramatsu, Y., Fujii, N.,
Tamura, Y. Contribution of the AcrAB-TolC efflux pump to high-level
fluoroquinolone resistance in Escherichia coli isolated from dogs and humans // J
Vet Med Sci. 2013. Vol. 75. N 4. P. 407-14.50
55. Schimke, R.T., Berlin, C.M., Sweeney, E.W., Carroll, W.R. The generation of
energy by the arginine dihydrolase pathway in Mycoplasma hominis 07 // J Biol
Chem. 1966. Vol. 241. N 10. P. 2228-36.
56. Smith, J.L., Fratamico, P.M. Fluoroquinolone resistance in campylobacter // J
Food Prot. 2010. Vol. 73. N 6. P. 1141-52.
57. Solomon, M., Henkel, R. Semen culture and the assessment of genitourinary tract
infections // Indian J Urol. 2017. Vol. 33. N 3. P. 188-193.
58. Su, H.C., Ramkissoon, K., Doolittle, J., Clark, M., Khatun, J., Secrest, A.,
Wolfgang, M.C., Giddings, M.C. The development of ciprofloxacin resistance in
Pseudomonas aeruginosa involves multiple response stages and multiple proteins
// Antimicrob Agents Chemother. 2010. Vol. 54. N 11. P. 4626-35.
59. Tagg, K.A., Jeoffreys, N.J., Couldwell, D.L., Donald, J.A., Gilbert, G.L.
Fluoroquinolone and macrolide resistance-associated mutations in Mycoplasma
genitalium // J Clin Microbiol. 2013. Vol. 51. N 7. P. 2245-9.
60. Vancini, R.G., Benchimol, M. Entry and intracellular location of Mycoplasma
hominis in Trichomonas vaginalis // Arch Microbiol. 2008. Vol. 189. N 1. P. 7-
18.
61. Waites, K.B., Schelonka, R.L., Xiao, L., Grigsby, P.L., Novy, M.J. Congenital
and opportunistic infections: Ureaplasma species and Mycoplasma hominis //
Semin Fetal Neonatal Med. 2009. Vol. 14. N 4. P. 190-9.
62. Wohlkonig, A., Chan, P.F., Fosberry, A.P., Homes, P., Huang, J., Kranz, M.,
Leydon, V.R., Miles, T.J., Pearson, N.D., Perera, R.L., Shillings, A.J., Gwynn,
M.N., Bax, B.D. Structural basis of quinolone inhibition of type IIA
topoisomerases and target-mediated resistance // Nat Struct Mol Biol. 2010. Vol.
17. N 9. P. 1152-3.
63. Yanat, B., Rodriguez-Martinez, J.M., Touati, A. Plasmid-mediated quinolone
resistance in Enterobacteriaceae: a systematic review with a focus on
Mediterranean countries // Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2017. Vol. 36. N 3. P.
421-435.
64. Yang, S., Clayton, S.R., Zechiedrich, E.L. Relative contributions of the AcrAB,
MdfA and NorE efflux pumps to quinolone resistance in Escherichia coli // J
Antimicrob Chemother. 2003. Vol. 51. N 3. P. 545-56.51
65. Zhang, Q., Wise, K.S. Localized reversible frameshift mutation in an adhesin
gene confers a phase-variable adherence phenotype in mycoplasma // Mol
Microbiol. 1997. Vol. 25. N 5. P. 859-69.
66. Zhang, Q., Wise, K.S. Coupled phase-variable expression and epitope masking of
selective surface lipoproteins increase surface phenotypic diversity in
Mycoplasma hominis // Infect Immun. 2001. Vol. 69. N 8. P. 5177-81.
67. EMBL-EBI.[Электронный ресурс]. URL:
https://www.ebi.ac.uk/Tools/msa/clustalo/.
68. U.S. National Library of Medicine. National Center for Biotechnology
Information. [Электронный ресурс]. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov.
69. Марапов, Д.И., Закиров, И.К., Искандаров, И.Р. "Медицинская статистика",
2013.[Электронный ресурс]. URL:
http://www.medstatistic.ru/theory/mann.html.

Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ