Молекулярно-цитогенетическая характеристика байкальской амфиподы Gmelinoides fasciatus из разных популяций

1. Алимов А.Ф. (2004). Биологические инвазии в водных и наземных экосистемах /
А.Ф. Алимов, Н.Г. Богуцкая (ред.). – М.; СПб.: Товарищество научных изданий
КМК – 436 с
2. Базова Н.В. (2002). Байкальский бокоплав Gmelinoides fasciatus (Stebb.) в озере
Гусиное (Бурятия) и его распространение в водоемах Восточной Сибири / Н.В.
Базова // Сборник научных трудов. Экологические, физиологические и
паразитологические исследования пресноводных амфипод. – Иркутск: Иркут. Ун-т
– С. 18–26
3. Барков Д.В. (2005). Значение байкальской амфиподы G. fasciatus в структуре
микрозообентоса литорали оз. Валаам (Ладожское озеро) / Д.В. Барков, Е.А.
Курашов // Исследовано в России. – №…. – С. 820–833.
4. Барков Д.В. (2006). Экология и биология байкальского вселенца Gmelinoides
fasciatus (Stebbing 1899) и его роль в экосистеме Ладожского озера: Автореф. дис.
… канд. биол. наук. 03.00.16 / Д.В. Барков. – СПб. – 26 с
5. Бекман М.Ю. (1951). Биология и продукционные возможности некоторых
байкальских и сибирских бокоплавов / М.Ю. Бекман, А.Я. Базикалова // Тр.
Проблемных и тематических совещаний ЗИН. – Вып. 1. – С. 61–67.
6. Березина Н.А. (2003). Вселение байкальской амфиподы G. fasciatus (Amphipoda,
Crustacea) в Онежское озеро / Н.А. Березина, В.Е. Панов // Зоологический журнал.
– Т. 82. – № 6. – С. 731–734.
7. Березина, Н. А. (2005). Сезонная динамика структуры и плодовитость популяции
байкальского бокоплава (Gmelinoidesfasciatus, Amphipoda, Crustacea) в зарослевой
зоне Невской губы. Зоологический журнал, 84(4), 411-419.
8. Бобров И.П., Лычева Н.А., Крючкова Н.Г., Лепилов А.В., Шахматов И.И., Долгатов
А.Ю., Осипова А.В., Красова А.А. (2018). Морфофункциональная характеристика
ядрышковых организаторов клеток печени при экстремальном холодовом стрессе и
в постгипотермическом периоде // Современные проблемы науки и образования –
№ 1. DOI 10.17513/spno.27366
9. Бородин Н. Д. (1979). Байкальский бокоплав Gmelinoides fasciatus в Куйбышевском
водохранилище.— Зоол. журн., 58, 6.
10. Вербицкий В.Б., Березина Н.А. (2001). Возможности распространения байкальской
амфиподы Gmelinoides fasciatus (Stebb.) в связи с особенностями ее температурной
и соленостной толерантности. Тез. докл. VIII съезда ГБО РАН. – Калининград, – Т.
II. – С. 72.42
11. Визер А.М. (1981). Результаты вселения байкальских гаммарид в Новосибирское
водохранилище // Рыбное хоз-во. – № 4. – С. 47–48
12. Визер А.М. (2006). Акклиматизация байкальских гаммарид и дальневосточных
мизид в Новосибирском водохранилище: Автореф. дис. … канд. биол. наук / А.М.
Визер. – Томск. – 21 с
13. Гоманенко Г.В. (2005). Популяционная структура байкальского бокоплава
Gmelinoides fasciatus (Stebbing) // Генетика. – Т. 41. – № 7. – С. 1–6.]
14. Грезе В.Н. (1951). Байкальские элементы фауны как акклиматизационный фонд /
В.Н. Грезе // Труды Всесоюзного гидробиологического общества. – Т. 3. – С. 221–
226
15. Даев Е. В., Барабанова Л. В., Бондаренко Л. В., Си-моненко В. Д. (2002).
Ракообразные отряда Isopoda как тест-объект для оценки экологического состояния
водной среды. Вестн. Санкт-Петербурского госуниверситета, Сер.3. Вып. 4 (№ 27).
С. 60-64.
Даев Е. В., Дукельская А. В., Казарова В. Э. (2009). Подход к оценке
мутагенности загрязненной воды цитогенетическими методами с использованием
биоиндикаторного вида Asellus acuaticus (Isopoda). Экологическая генетика. Т. VII
(3): С. 10-16.
16. Даев, Е. В., Дукельская, А. В., Барабанова, Л. В. (2014). Цитогенетические методы
индикации экологической напряженности в водных и наземных
биосистемах. Ecological genetics, 12(2).
17. Ербаева Э.А. (1991). Распространение байкальской эндемичной фауны в
водохранилищах Ангарского каскада // Тез. докл. VI съезда ВГБО. – Мурманск – Т.
2. – С. 164–165.
18. Задоенко И.Н. (1985). Результаты и перспективы акклиматизации байкальских
гаммарид в водоемах СССР / И.Н. Задоенко, О.А. Лейс, В.Ф. Григорьев // Сб. науч.
трудов ГосНИОРХ. – Т. 232. – С. 30–34.
19. Задоенко И. Н. (1995). Результаты и перспективы акклиматизации беспозвоночных
в водоемах бывшего СССР. Результаты работ по акклиматизации водных
организмов. СПб, 146-154.
20. Захаров И.А.(1999). Бактерии управляют половым размножением насекомых,
ПРИРОДА №5 стр 28-34.43
21. Иоффе Ц.И. (1968). Биология некоторых ракообразных, перспективных для
акклиматизации в водохранилищах / Ц.И. , Л.П. Максимова // Изв.
ГосНИОРХ. – Т. 67. – С. 81–104.
22. Иоффе Ц.И. (1968). Обзор выполненных работ по акклиматизации кормовых
беспозвоночных для рыб в водохранилищах / Ц.И. Иоффе // Известия – Т. 67. – С. 7
23. Иоффе Ц.И. (1974). Обогащение кормовой базы для рыб в водохранилищах СССР
путем акклиматизации беспозвоночных / Ц.И. Иоффе // Изв. ГосНИОРХ. – Т. 100. –
С. 3–206.
24. Камалтынов Р.М. (2001). Аннотированный список фауны озера Байкал и его
водосборного бассейна. Озеро Байкал / Р.М. Камалтынов. – Новосибирск: Наука –
Т. 1, кн. 1. – С. 572 – 831.
25. Карпевич, А. Ф., & Горелов, В. К. (1995). Некоторые теоретические аспекты и
результаты акклиматизации гидробионтов. In Результаты работ по
акклиматизации водных организмов. СПб (p. 5).
26. Мац В.Д. (2011). Позднемеловая кайнозойская история Байкальской впадины и
формирование уникального биоразнообразия Байкала / В.Д. Мац, Д.Ю. 124
Щербаков, И.М. Ефимова // Стратиграфия. Геологическая корреляция. – Т. 19. – №
4. – С. 40–61
27. Мельник, М. М., Михайлов, А. Е. (2001). Особенности биологии бокоплава
Gmelinoides fasciatus (Stebb.) в Псковско-Чудском озере. In VIII съезд
Гидробиологического общества РАН. Т. II: Тез. докл. Калининград: КГГУ (p. 85).
28. Механикова И.В. (2000). Морфо-экологические адаптации байкальского бокоплава
Gmelinoides fasciatus к условиям существования в водоемах различного типа //
Труды Биолого-почвенного факультета ИГУ – Вып. 3. – С. 104–114.
29. Огарков О.Б. (1997). Анализ филогенетических взаимоотношений байкальских
эндемичных амфипод (Crustacea, Amphipoda) на основании сравнения
нуклеотидных последовательностей участка митохондриального гена III
субъединицы цитохромоксидазы // Молекулярная биология – Т. 31. – № 1. – С. 32–
37.
30. Огарков О.Б. (1999). Молекулярно-биологическое исследование эволюции
байкальских амфипод (Crustacea, Amphipoda): автореф. дис. … канд. биол. Наук /
О.Б. Огарков. – Новосибирск: ИЦиГ. – 16 с.
31. Панов В.Е. (1994). Байкальская эндемичная амфипода Gmelinoides fasciatus Stebb. В
Ладожском озере Доклады академии наук, том 336, № 2, c. 279-282.44
32. Панов В.Е. (2001). Последствия намеренных интродукций водных организмов в
водоемы европейской части России (на примере байкальской амфиподы
Gmelinoides fasciatus (Stebb.) / В.Е. Панов, Н.А. Березина // Тез. докл. VIII съезда
ГБО РАН. – Калининград. – Т. II. – С. 90.
33. Петунина Ж. В. (2008). Сравнительный анализ генетического разнообразия
байкальских амфипод gmelinoides fasciatus и их паразитов, микроспоридий, в
озере Байкал // Диссертация. Лимнологический Институт Со РАН.
34. Рожкова Н.А. (2001). Зообентос Иркутского водохранилища / Н.А. Рожкова, И.В.
Механикова // Исследования фауны водоемов Восточной Сибири: Сб. науч. тр. –
Иркутск: Иркут. ун-т. – С. 147–159
35. Северцов А.С. (1990). Внутривидовое разнообразие как причина эволюционной
стабильности / А.С. Северцов // Журн. общ. биол. – Т. 51. – № 5. – С. 579–599
36. Сидорова А.И. (2012). Реакция байкальской амфиподы Gmelinoides fasciatus
Stebbing на действие ливневых стоков города Петрозаводска / А.И. Сидорова, Н.М.
Калинкина, И.В. Дыдик // Труды Карельского научного центра РАН. – № 2. – С.
125–130
37. Тахтеев В.В. (2000). Очерки о бокоплавах озера Байкал (систематика,
сравнительная экология, эволюция) / В.В. Тахтеев. – Иркутск: Изд-во Иркутского
ун-та. – 355 с
38. Тахтеев В.В. (2009). Байкальские родники / В.В. Тахтеев, А.В. Галимзянова //
Экология и жизнь. – Т. 3. – № 88. – С. 40–45.
39. Тимофеев М.А. (2000). Сравнительная оценка отношения байкальских гаммарид и
голарктического Gammarus lacustris Sars к абиотическим факторам: Дис. … канд.
биол. наук. / М.А. Тимофеев; Иркутск – … с.
40. Тютеньков С. К., Козляткин А. Л. (1980). Итоги работ по вселению бентических
беспозвоночных в Бухтарминское водохранилище. Итоги и перспективы
акклиматизации рыб и беспозвоночных в водоемах СССР. Тез. докл. М.
41. Щербаков Д.Ю. (1997). Эволюция байкальских гаммарид по данным
последовательностей гена 18S рРНК. // Международный симпозиум
«Экологические эквивалентные виды гидробионтов в великих озерах мира»: Тез.
докл. (Улан-Удэ, 2–4 сентября г.). – Улан-Удэ: Изд-во БНЦ СО РАН, 1997. – С. 96–
97.
42. Alimov A. F., V. E. Panov, P. I. Krylov, I. V. Telesh, D. E. Bychenkov, V. L. Zimin, A.
A. Maximov & L. A. Filatova, (1998). Problema antropogennoy introdukcii
chugerodnikh organizmov v basseine Finskogo zaliva. In Frolov, A. K. (ed.),45
Ekologicheskaya situacija v Sankt-Peterburge i Leningradskoy oblasti v 1997 godu. (The
problem of anthropogenic introductions of non-indigenous organisms in the Gulf of
Finland basin, in Russian). Analiticheskiy obzor. Sankt-Petersburg: 243–248.
43. Arkhiptseva, N. T., I. V. Baranov, G. M. Zabelina, V. V. Pokrovsky, S. A. Serebrova, I.
I. Tereshenkov & G. A. Tsybaleva, (1977). Ozera basseina severnogo rukava reki
Vuoksi. In Pokrovsky, V. V. (ed.), Kadastr malykh ozer Leningradskoy oblasti. Part 1:
Ozera Karelskogo peresheika. (Lakes of the Vuoksa Basin, in Russian). Trudy
GosNIORKh 124: 83–134.
44. Barkov D.V., Kurashov E.A. (2009а). Food Composition and Feeding Rate of the Lake
Baikal Invader Gmelinoides fasciatus (Stebbing, 1899) in Lake Ladoga Institute of
Limnology, Russian Academy of Sciences, ul. Sevast’yanova 9, St. Petersburg, 196105
Russia email: evgeny_kurashov@mail.ru Received November 18.
45. Barkov D.V., Kurashov E.A. (2009б). Feeding Selectivity, Food Assimilability and
Demand of the Baikal Invader Gmelinoides fasciatus (Stebbing, 1899) in Lake Ladoga
Institute of Limnology, Russian Academy of Sciences, ul. Sevast’yanova 9, St.
Petersburg, 196105 Russia email: evgeny_kurashov@mail.ru Received November 19.
46. Barkov D. V., Kurashov E. A. (2011). Food Composition and Feeding Rate of the Lake
Baikal Invader Gmelinoides fasciatus (Stebbing, 1899) in Lake Ladoga, Biologiya
Vnutrennikh Vod, No. 3, pp. 51–61
47. Berezina N.A., Panov V.E. (2004). Distribution, population structure and salinity
tolerance of the invasive amphipod Gmelinoides fasciatus (Stebbing) in the Neva Estuary
(Gulf of Finland, Baltic Sea). Hydrobiologia 514, 199-206.
48. Brooks J.L. (1950). Speciation in ancient lakes. Quart. Rev. Biol. – Vol. 25. – № 1 – P.
30–60.
49. Daev E.V. and Dukelskaya A.V. (2011). The karyotype instability of wild nature
inhabitants could serve as general sign of adverse environmental impact. Journal of
Environmental Indicators 6, 33-40.
50. Drouin G, Sevigny J., McLaren I., Hofman JD, Doolittle WF (1992). Variable
arrangement of 5S ribosomal genes within the ribosomal DNA repeats of arthropods. Mol
Biol Evol 9(5):826–835
51. Drouin G, de Sá M., (1995). The concerted evolution of 5S ribosomal genes linked to the
repeat units of other multigene families. Mol Biol Evol 12(3):481–493
52. Duron O. (2008). The diversity of reproductive parasites among arthropods: Wolbachia
do not walk alone / BMC Biol. – Vol.6. – № 27. – P.46
53. Folmer O. (1994). DNA primer for amplification of mitochondrial cytochrome c oxidase
subunite I from diverse metazoan invertebrates // Molecular Marine Biology and
Biotechnology. – Vol. 3. – P. 294–299.
54. Garcia S., Lim K.Y., Chester M., Garnatje T., Pellicer J., Valles J., Leitch A.R., Kovařík
A. (2009). Linkage of 35S and 5S rRNA genes in Artemisia (family Asteraceae): first
evidence from angiosperms. Chromosoma 118(1):85–97.
55. Garcia S, Kovarik A. (2013). Dancing together and separate again: gymnosperms exhibit
frequent changes of fundamental 5S and 35S rRNA genes (rDNA) organisation. Heredity
111(1):23–33.
56. Garcia S., Kovařík A., Leitch A.R., Garnatje T. (2017). Cytogenetic features of rRNA
genes across land plants: analysis of the plant rDNA database. Plant J 89(5):1020–1030.
57. Gray M.W., Burger G., Lang B.F. (1999). Mitochondrial evolution. Science 283: 1476-
1481
58. Jeffery N.W., Yampolsky Y., Gregory R., (2016). Nuclear DNA content correlates with
depth, body size, and diversification rate in amphipod crustaceans from ancient Lake
Baikal, Russia, Genome 60(4)
59. Klingerman A. D., Bloom S. E. (1977). Rapid chromosome preparation from solid tissue
of fishes. – Journal of Fishery Research Board of Canada 34: 266–269
60. Krapp T., Rampin M., Libertini A. (2008). A cytogenetical study of Ischyroceridae
(Amphipoda) allows the identification of a new species, Jassa cadetta sp. n., in the
Lagoon of Venice. Org Divers Evol 8: 337-345
61. L
62. Libertini, A., Rampin M. (2009). A molecular cytogenetic study on some Icelandic
amphipods (Crustacea) by fluorescence in situ hybridization (FISH). Open Zoology
Journal, 2, 109-116.
63. Lee C., Sasi R., Lin C. C. (1993). Interstitial localization of telomeric DNA sequences in
the Indian muntjac chromosomes: further evidence for tandem chromosome fusions in
the karyotypic evolution of the Asian muntjacs. Cytogenetic and Genome
Research, 63(3), 156-159.
64. Macdonald, K. S., L. Yampolsky, J. E. Duffy (2005). Molecular and morphological
evolution of the amphipod radiation of Lake Baikal. Molecular Phylogenetics and
Evolution 35: 323–343
65. Mann, R. M., Hyne, R. V. (2008). Embryological development of the Australian
amphipod, Melita plumulosa Zeidler, 1989 (Amphipoda, Gammaridea,
Melitidae). Crustaceana, 81(1), 57-66.47
66. McDonald I.R., Smith K., Lidstrom M.E. (2005). Methanotrophic populations in
estuarine sediment from Newport Bay, California // FEMS Microbiology Letters. – №
250. – P. 287–293.
67. Moritz C., Dowling T.E., Brown W.M. (1987). Evolution of Animal mitochondrial DNArevelence for population biology and systematic. Ann Rev Ecol Syst 18: 269-292.
68. Nei M., Maruyama T., Chakraborty R., (1975). The bottleneck effect and genetic
variability in populations. Evolution 29: 1-10.
69. Nilova, O. I., (1976). Nekotorye cherty ecologii i biologii Gmelinoides fasciatus Stebb.
akklimirovannogo v ozero Otradnoe Leningradskoy oblasti. (Some features of ecology
and biology of Gmelinoides fasciatus acclimatized in Lake Otradnoe in Leningrad
Region). Trudy GosNIORKh 110: 10–15 (in Russian)
70. Panov V.E. (1996). Establishment of the Baikalian endemic amphipod Gmelinoides
fasciatus Stebb. in Lake Ladoga / V.E. Panov // Hydrobiologia. – № 322. – P. 187–192.
71. Panov, V. E., P. I. Krylov & I. V. Telesh, (1999). The St. Petersburg harbour profile. In
Gollasch, S. & E. Leppäkoski (eds.), Initial risk assessment of alien species in Nordic
coastal waters. Nord 1999: 8. Nordic Council of Ministers, Copenhagen: 225–244.
72. Patwardhan, A., Ray, S., Roy, A. (2014). Molecular Markers in Phylogenetic Studies—A
Review. Phylogenetics & Evolutionary Biology, 2, 1-9.
73. Pellicia E, Volpi E. V., Lanza V., Gaddini L., Baldini A., Rocchi A., 1994: Telomeric
sequences of Asellus aquaticus (Crust. Isop.). - Heredity 72: 78-80.
74. Pelliccia, F., Barzotti, R., Volpi, E.V., Bucciarelli, E., and Rocchi, A. (1998). Nucleotide
sequence and chromosomal mapping of the 5S rDNA repeat of the crustacean Proasellus
coxalis. Genome, 41: 129–133
75. Pinkel D. (1986). Cytogenetic analysis using quantitative, high-sensitivity, fluorescence
hybridization // Proc. Nati. Acad. Sci. USA Vol. 83, pp. 2934-2938
76. Prokopowich C.D., Gregory T.R., Crease T.J. (2003). The correlation between rDNA
copy number and genome size in eukaryotes. Genome, 46, 48–50.
77. Protopopova M.V. (2011). Small HSPs molecular weights as new indication to the
hypothesis of segregated status of thermophilic relict Gmelinoides fasciatus among
Baikal and Palearctic amphipods // Journal of Stress Physiology & Biochemistry. – Vol.
7. – № 2. – P. 175–182.
78. Rampin M. Amphipods genome evolution: a molecular cytogenetics approach //
Conference paper: Monitoring European Biodiversity Conference: The role and
importance of amphipod crustaceans 2011.48
79. Roa F., Guerra M. (2015). Non-Random Distribution of 5S rDNA Sites and Its
Association with 45S rDNA in Plant Chromosomes. Cytogenet Genome Res 146(3):243–
249
80. Salemaa H. (1979). The Chromosomes of Asellus aquaticus (L.): A Technique for Isopod
Karyology / Crustaceana Vol. 36, No. 3, pp. 316-318
81. Salemaa H. (1984). Polyploidy in the evolution of the glacial relict Pontoporeiu spp.
(Amphipoda, Crustacea) / Hereditas - 100: 5340.
82. Sherbakov D.Yu. (1998). Patterns of evolutionary change in Baikalian Gammaridae
inferred from DNA sequences (Crustacea, Amphipoda) // Molecular Phylogeny and
Evolution. – Vol. 10, № 2. – P. 160–167
83. Sherbakov D.Yu. (1999). On the phylogeny of Lake Baikal amphipods in the light of
mitochondrial and nuclear DNA sequence data // Crustaceana. – Vol. 72. – № 8. – P.
911–919.
84. Sidorov D.A. (2013). Unexpected finding of the invasive Baikalian amphipod
Gmelinoides fasciatus in a cold spring of the southern Pamir Mountains / D.A. Sidorov,
Gontcharov A.A., Palatov D.M. // Knowledge and Management of Aquatic Ecosystems.
– V. 411. – № 12. – P. 1–8
85. Sochorová, S. Garcia, F. Gálvez, R. Symonová, A. Kovařík. (2018). Evolutionary trends
in animal ribosomal DNA loci: introduction to a new online database Jana, Chromosoma
127: 141.
86. Sundelin B., Eriksson A.K. (1998). Malformations in embryos of the deposit-feeding
amphipod Monorelia affinis in the Baltic Sea// Marine Ecology Progress Series. – V.171.
– P. 165-180.
87. Takhteev V.V. (2009). Amphipods (Amphipoda) of thermal and mineral springs of
northern part Baikal region / V.V. Takhteev // Biota of waterbodies of Baikal rift zone. –
Irkutsk: Publishers of Irkutsk state universit. – P. 123–130 (in Russian).].
88. Terry R.S. (2004). Widespread vertical transmission and associated host sex-ratio
distortion within the eukaryotic phylum Microspora // Proc. R. Soc. Lond. B. – Vol. 271.
– P. 1783–1789
89. Traut W. and Clarke C. A. (1997). Karyotype evolution by chromosome fusion in the
moth genus Urgyia. - Hereditus 126: 77-84.
90. Traut W., Szczepanowski M., Vitkova M., Opitz C., Marec F., Zrzavy J.(2007). The
telomere repeat motif of basal metazoa. Chromosome Res 15: 371–382.
91. Väinölä R. (2008). Global diversity of amphipods (Amphipoda; Crustacea) in freshwater
// Hydrobiologia. – № 595. – P. 241–255.49
92. Wicke S, Costa A, Muñoz J, Quandt D (2011). Restless 5S: The re arrangement(s) and
evolution of the nuclear ribosomal DNA in land plants. Mol Phylogenet Evol 61(2):321–
332
Купить