Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Старение стволовых клеток человека в контексте mTOR-сигналинга

Работа №133817

Тип работы

Магистерская диссертация

Предмет

биология

Объем работы73
Год сдачи2017
Стоимость5350 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
58
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


ОГЛАВЛЕНИЕ ............................................................................................................................................ 2
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ ......................................................................................................................... 5
ВВЕДЕНИЕ .................................................................................................................................................. 7
ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ ............................................................................................................................... 9
1. Основные понятия о стволовых клетках ........................................................................................... 9
1.1. История открытия стволовых клеток ......................................................................................... 9
1.2. Свойства и классификация стволовых клеток........................................................................... 9
1.3. Мезенхимные стволовые клетки...............................................................................................10
1.4. Мезенхимные стволовые клетки человека, выделенные из десквамированного эндометрия
.............................................................................................................................................................11
2. Клеточное старение...........................................................................................................................13
2.1. История развития представлений о феномене старения клеток ............................................13
2.2. Типы клеточного старения и его признаки ..............................................................................14
2.3. Клеточное старение МСК ..........................................................................................................15
2.4. Механизмы, лежащие в основе стресс-индуцированного клеточного старения .................15
3. Белок mTOR и его регуляция ...........................................................................................................17
3.1. История открытия mTOR ..........................................................................................................17
3.2. Доменная структура белка mTOR ............................................................................................18
3.3. Комплексы киназы mTOR .........................................................................................................19
3.4. Регуляция mTOR сигналинга ....................................................................................................21
4. Функциональная роль mTOR в клетке ............................................................................................24
4.1. Контроль над синтезом белка в клетке комплексом mTORС1 ..............................................25
4.2. Регуляция аутофагии комплексом mTORC1 ...........................................................................26
4.3. Роль mTOR в старении ..............................................................................................................27
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ .....................................................................................................................30
1. Клеточная линия и особенности культивирования клеток ...........................................................30
2. Моделирование окислительного стресса и условия обработки клеток .......................................30
3. Оценка жизнеспособности клеток методом МТТ ..........................................................................30
4. Электрофорез и иммуноблотинг ......................................................................................................31
4.1. Приготовление проб для электрофоретического разделения ................................................31
4.2. Электрофорез белков в полиакриламидном геле ....................................................................31
4.3. Иммуноблотинг со специфическими антителами...................................................................31
5. Метод проточной цитофлуориметрии.............................................................................................32
5.1. Анализ изменения размера и количества клеток ....................................................................32
5.2. Измерение уровня внутриклеточных АФК..............................................................................33
6. Выявление активности SA-β-Gal .....................................................................................................33
7. Использованные реактивы и ингибиторы .......................................................................................33
8. Статистическая обработка данных ..................................................................................................33
РЕЗУЛЬТАТЫ ...........................................................................................................................................34
1. Выявление роли mTORC1 в H2O2-индуцированном старении эМСК..........................................34
1.1. Выявление эффектов рапамицина на жиснеспособность клеток и на активность
компонентов mTORC1 сигнального пути в Н2О2-обработанных эМСК .....................................34
1.2. Оценка влияния ингибирования mTORС1 на пролиферативный статус стареющих эМСК
и активность р53/р21/Rb сигнального пути ....................................................................................35
1.3. Исследование эффектов рапамицина на фенотип старения клеток и уровень
внутриклеточных АФК в Н2О2-обработанных эМСК....................................................................36
2. Влияние mTOR на Raf/MEK/ERK/p90RSK сигнальный путь в стареющих эМСК ....................38
3. Влияние AKT киназы на mTORС1 сигнальный путь и ее роль в преждевременном старении
эМСК ......................................................................................................................................................39
3.1. Установление роли AKT киназы в регуляции mTORC1 пути при преждевременном
старении эМСК..................................................................................................................................40
3.2. Исследование характера изменения основных признаков старения Н2О2-обработанных
эМСК в условиях ингибирования AKT...........................................................................................40
3.3. Анализ пролиферативного статуса клеток и активности р53/р21/Rb сигнального пути в
Н2О2-обработанных эМСК при действии LY .................................................................................41
4. Роль белка ERK1/2 в регуляции mTORC1 сигнального пути при стресс-индуцированном
старении эМСК......................................................................................................................................42
4.1. Выявление эффектов U0126 на активность mTORС1 сигнального пути в Н2О2-
обработанных клетках ......................................................................................................................42
4.2. Оценка маркеров преждевременного старения клеток в условиях ингибирования
активности ERК1/2............................................................................................................................43
5. Изучение роли AMPK в регуляции mTORC1 пути в процессе Н2О 2-индуцированного старения
эМСК ......................................................................................................................................................45
ОБСУЖДЕНИЕ .........................................................................................................................................48
ВЫВОДЫ ...................................................................................................................................................56
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ.........................................................................................................................57
БЛАГОДАРНОСТИ ..................................................................................................................................73

Эндометриальные мезенхимные стволовые клетки (эМСК) впервые были
обнаружены в десквамированном эндометрии, содержащемся в менструальной крови, в
2007 году (Meng et al., 2007). Показано, что эМСК обладают рядом существенных
преимуществ по сравнению с мезенхимными стволовыми клетками (МСК), полученными
из других источников, важнейшими из которых являются сохранение стабильного
кариотипа и высокой пролиферативной активности при длительном культивировании,
способность дифференцироваться в 9 типов клеток трех зародышевых листков, а также не
инвазивный и не травматичный для пациента способ их изоляции. Эти особенности
делают эМСК привлекательным объектом для использования в заместительной клеточной
терапии, и в настоящее время уже есть сообщения о положительных результатах
трансплантации эМСК людям, страдающим такими заболеваниями, как рассеянный
склероз, мышечная дистрофия Дюшена и сердечная недостаточность (Zhong et al., 2009;
Ichim et al., 2010; Bockeria et al., 2013; Ulrich et al., 2013). Известно, что развитие многих
заболеваний, для которых описано успешное применение эМСК, сопровождается
локальным окислительным стрессом (Agarwal et al., 2005; Di Filippo et al., 2006; Tsutsui et
al., 2011; Terrill et al., 2013), следовательно, после трансплантации эМСК могут оказаться в
неблагоприятном микроокружении. В связи с этим изучение ответов эМСК на
окислительный стресс может моделировать реальные ситуации, возникающие в процессе
трансплантации этих клеток при лечении различных заболеваний. Наряду с такими
широко распространенными реакциями МСК на стрессовые воздействия, как временная
остановка клеточного цикла, репарация повреждений и апоптоз, в последнее время
активно исследуется феномен преждевременного старения клеток (Wang, Jang, 2009;
Brandl et al., 2011b; Kim et al., 2011; Alekseenko et al., 2012; Cmielova et al., 2012; Ko et al.,
2012; Larsen et al., 2012; Burova et al., 2013). Существенным является то, что стареющие
МСК, оставаясь метаболически активными, находятся в состоянии необратимого ареста
клеточного цикла и, соответственно, утрачивают способность регенерировать
поврежденные ткани. Эти факты подчеркивают необходимость исследования механизмов,
лежащих в основе преждевременного старения стволовых клеток. Основной пул данных о
преждевременном старении МСК в условиях окислительного стресса получен на МСК,
выделенных из костного мозга и пуповинной крови. Важно подчеркнуть, что до недавнего
времени в литературе полностью отсутствовали сведения о стресс-индуцированном
старении эМСК. Однако в 2013 году сотрудниками нашего отдела было убедительно
продемонстрировано, что в условиях сублетального окислительного стресса эМСК
подвергаются преждевременному старению, которое сопровождается соответствующими
фенотипическими изменениями клеток и необратимой потерей пролиферации (Burova et
al., 2013). При исследовании механизма, лежащего в основе стресс-индуцированного
старения эМСК, мы обнаружили, что в Н 2О2-обработанных клетках активируются
р53/p21/Rb и p38 MAPK сигнальные каскады (Borodkina et al., 2014). На основании
литературных данных мы предположили, что mTORС1 путь также может быть вовлечен в
развитие преждевременного старения эМСК. Таким образом, в настоящей работе
представлялось важным изучить роль mTORС1 и его основных регуляторов в процессе
Н2О2-индуцированного старения эМСК.
Цель: исследование роли mTORС1 сигнального пути в регуляции Н2О2 -
индуцированного старения эндометриальных стволовых клеток человека.
Задачи:
1. Выявление эффектов рапамицина на активность компонентов mTORC1
сигнального пути в Н2О2 -обработанных эМСК
2. Оценка влияния ингибирования mTORС1 на пролиферативный статус, активность
р53/р21/Rb сигнального пути и фенотип стареющих эМСК
3. Анализ влияния mTORC1 на Raf/MEK/ERK/p90RSK сигнальный каскад в Н2О2-
обработанных эМСК
4. Установление роли AKT киназы в регуляции mTORC1 пути при преждевременном
старении эМСК
5. Исследование характера изменения основных признаков старения Н2О2-
обработанных эМСК и активности р53/р21/Rb сигнального пути в условиях
ингибирования AKT
6. Выявление роли ERK1/2 в регуляции mTORC1 пути при стресс-индуцированном
старении эМСК
7. Оценка маркеров преждевременного старения эМСК в условиях ингибирования
активности ERK1/2
8. Изучение роли AMPK в регуляции mTORC1 пути в процессе Н2О2-
индуцированного старения эМСК.

Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


Выводы:
1. Рапамицин в концентрации 200 нМ эффективно подавляет фосфорилирование
основных мишеней mTORC1, S6K, S6 и 4E-BP1, в H2O2-обработанных эМСК.
2. Ингибирование mTORC1 не способствует восстановлению пролиферативного
потенциала стареющих клеток; не влияет на активность p53/p21/Rb сигнального
пути; предотвращает увеличение размера клеток и приводит к снижению уровня
АФК и активности SA-β-Gal в стареющих эМСК.
3. Подавление активности mTORC1 способствует усилению активации каждого
компонента Raf/MEK/ERK/p90RSK сигнального каскада в Н2О2-обработанных эМСК.
4. Ингибирование AKT приводит к снижению активности mTORC1 пути при
преждевременном старении эМСК.
5. Подавление активности AKT киназы способствует предотвращению увеличения
размера Н2О2-обработанных клеток и снижению активности SA-β-Gal, но не
приводит к возобновлению пролиферации стареющих клеток и модуляции
функционирования p53/p21/Rb пути.
6. Ингибирование ERK1/2 почти не оказывает влияние на активность mTORC1 пути
в стареющих эМСК.
7. Подавление активности ERK1/2 способствует снижению уровня АФК и активности
SA-β-Gal в Н2О2-обработанных эМСК, но при этом не приводит к восстановлению
пролиферативного потенциала и предотвращению увеличения размера стареющих клеток.
8. AMPK оказывает слабое влияние на mTORС1 и не играет ключевой роли в
процессе Н2О2-индуцированного старения эМСК.


1. Бородкина А.В., Шатрова А.Н., Никольский Н.Н., Бурова Е.Б. 2016. Роль MAP-киназы
р38 в развитии стресс-индуцированного старения эндометриальных стволовых клеток
человека. Цитология. 58 (6) : 429–435.
2. Бурова Е.Б., Люблинская О.Г., Шатрова А.Н., Бородкина А.В., Никольский Н.Н. 2012.
Сравнительный анализ устойчивости к окислительному стрессу стволовых клеток
эндометрия и фибробластов человека. Цитология. 54 (6) : 478‒483.
3. Дерябин П.И., Бородкина А.В., Никольский Н.Н., Бурова Е.Б. 2015. Взаимное влияние
р53/р21/Rb и МАР-киназных сигнальных путей в эндометриальных стволовых клетках
человека в условиях окислительного стресса. Цитология. 57 (11) : 788–795.
4. Земелько В.И., Гринчук Т.М., Домнина А.П., Арцыбашева И.В., Зенин В.В., Кирсанов
А.А., Бичевая Н.К., Корсак В.С., Никольский Н.Н. 2011. Мультипотентные
мезенхимные стволовые клетки десквамированного эндометрия. Выделение,
характеристика и использование в качестве фидерного слоя для культивирования
эмбриональных стволовых линий человека. Цитология. 53 (12) : 919–929.
5. Зубова С.Г., Шитикова Ж.В., Поспелова Т.В. 2012. TOR-центрическая концепция
регуляции митогенных, метаболических и энергетических сигнальных путей в клетке.
Цитология. 54 (8) : 589–602.
6. Москалев А.А. 2008. Старение и гены. Санкт-Петербург: Наука. 358 с.
7. Мусина Р.А., Белявский А.В., Тарусова О.В., Соловьева Е.В., Сухих Г.Т. 2008.
Мезенхимальные стволовые клетки эндометрия, полученные из менструальной крови.
Кл. техн. Биол. Мед. 2 : 110–114.
8. Пальцев М.А., Смирнов В.Н., Романов Ю.А., Иванов А.А. 2006. Перспективы
использования стволовых клеток в медицине. Вестник Российской академии наук. 76
(2) : 99–111.
9. Чертков П.Л., Фриденштейн А.Я. 1977. Клеточные основы кроветворения.
Кроветворные клетки-предшественники. Медицина. 274.
10. Abdallah B.M., Haack-Sørensen M., Burns J.S., Elsnab B., Jakob F., Hokland P., Kassem M.
2005. Maintenance of differentiation potential of human bone marrow mesenchymal stem
cells immortalized by human telomerase reverse transcriptase gene despite [corrected]
extensive proliferation. Biochem Biophys Res Commun. 326 : 527–538.
11. Agarwal A., Gupta S., Sharma R.K. 2005. Role of oxidative stress in female reproduction.
Reprod Biol Endocrinol. 3 : 28.
12. Ahn J., Urist M., Prives C. 2004. The Chk2 protein kinase. DNA Repair. 3 : 1039–1047.
13. Alekseenko L.L., Zemelko V.I., Zenin V.V., Pugovkina N.A., Kozhukharova I.V., Kovaleva
Z.V., Grinchuk T.M., Fridlyanskaya I.I., Nikolsky N.N. 2012. Heat shock induces apoptosis in
human embryonic stem cells but a premature senescence phenotype in their differentiated
progeny. Cell Cycle. 11 : 3260 –3269.
14. Alimonti A., Nardella C., Chen Z., Clohessy J.G., Carracedo A., Trotman L.C., Cheng
K., Varmeh S., Kozma S.C., Thomas G., Rosivatz E., Woscholski R., Cognetti F., Scher
H.I., Pandolfi P.P. 2010. A novel type of cellular senescence that can be enhanced
in mouse models and human tumor xenografts to suppress prostate tumorigenesis. J Clin
Invest. 120 (3) : 681–693.
15. Alimova I.N., Liu B., Fan Z., Edgerton S.M., Dillon T., Lind S.E., Thor A.D. 2009
Metformin inhibits breast cancer cell growth, colony formation and induces cell cycle arrest
in vitro. Cell Cycle. 8 : 909–915.
...


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.



Подобные работы


©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ