Протеасома является крупным мультисубъединичным белковым комплексом, осуществляющим убиквитин-зависимую деградацию белков в клетках эукариот (Maupin- Furlow et al., 2006). Исследования последних лет обнаружили присутствие протеасом также и во внеклеточном пространстве: в плазме крови, спинномозговой жидкости, альвеолярном секрете, в кондиционированной культурами клеток питательной среде (Wada et al., 1993, Roth et al., 2005, Egerer et al., 2002). Роль протеасом во внеклеточном пространстве неизвестна, однако, замечена прямая зависимость между количеством внеклеточных протеасом в плазме крови и тяжестью онкологических заболеваний пациентов (Wada et al., 1993). Аналогичная связь выявлена у пациентов, страдающих заболеваниями печени (цирроз, острый или хронический гепатит, жировая дистрофия) (Wada et al., 1993), а также аутоиммунными заболеваниями (аутоиммунный миозит, системная красная волчанка, синдром Шегрена, ревматоидный артрит и аутоиммунный гепатит) (Egerer et al., 2002). Данное наблюдение открывает перспективы в диагностике патогенных процессов в организме, что подстегивает исследования, направленные на определение количества протеасом в плазме крови пациентов при различных заболеваниях. Кроме того, было замечено, что после проведения стандартной или усиленной химиотерапии уровень протеасом в плазме крови тех пациентов, лечение для которых было успешным, достоверно снижался; такого эффекта не наблюдалось у неподдающихся химиотерапии больных (Wada et al., 1993, Stoebner et al., 2005). Взаимозависимость между стадией онкологического заболевания и концентрацией внеклеточных протеасом была также обнаружена у пациентов с метастазирующей злокачественной меланомой (Stoebner et al., 2005). Значимо повышенные концентрации внеклеточных протеасом также наблюдались у пациентов с различными солидными опухолями (Lavabre-Bertrand et al., 2001, Dutaud et al., 2002). Таким образом, это позволяет рассматривать внеклеточные протеасомы как возможный прогностический параметр в исходе заболеваний. Нельзя, однако, не отметить тот факт, что, в других исследованиях показано, что наибольший рост концентрации внеклеточных протеасом в плазме крови происходит при значительном прогрессировании онкологического заболевания (Lavabre- Bertrand et al., 2001). Кроме того, у пациентов, больных некоторыми формами лимфомы или лимфоцитарным лейкозом, напротив, наблюдалось пониженное количество внеклеточных протеасом по сравнению со здоровыми донорами (Lavabre-Bertrand et al., 2001).
Несмотря на большое количество данных, касающихся исследованию концентрации и активности внеклеточных протеасом у пациентов, страдающих тем или иным заболеванием, свойства секретируемых клетками протеасом или механизм их секреции на сегодняшний день не исследованы, что отдаляет перспективу использования внеклеточных протеасом в качестве маркеров онкологических и других заболеваний. Чтобы приблизиться к пониманию роли протеасом во внеклеточном пространстве, необходимо определить специфические особенности, в том числе посттрансляционные модификации белков внеклеточных протеасом в сравнении с внутриклеточными комплексами, и ответить на вопрос, какие механизмы задействованы в их транспорте во внеклеточное пространство.
Выводы:
1. С помощью масс-спектрометрического анализа идентифицированы 55 посттрансляционных модификаций у клеточных и 31 - у внеклеточных протеасом, аффинно-очищенных из клеток К562 и кондиционированной клетками среды. Из списка выявленных посттрансляционных модификаций клеточных и внеклеточных протеасом, соответственно, 36 и 21 идентифицированы нами впервые.
2. По результатам МС-анализа фосфорилирование по серину в 181-м положении в субъединице РЗ (PSMB3) нами обнаружено впервые и потенциально является специфичной посттрансляционной модификацией для внеклеточных протеасом.
3. Получены и апробированы плазмидные конструкции рХЗЗО системы CRISPR/Cas9, содержащие последовательности гид-РНК, нацеленные на второй и третий экзоны гена субъединицы РЗ (PSMB3) протеасомы с целью дальнейшего нокаута по гену PSMB3 доксициклин-регулируемых клеточный линий.
4. Получена линия клеток K562, стабильно экспрессирующая генетическую конструкцию, кодирующую субъединицу протеасом РЗ (PSMB3) слитую на N- конце с последовательностью T7, с целью дальнейшего получения линий клеток HeLa, стабильно экспрессирующих нормальную и, созданную нами, мутантную последовательности.
1. Maupin-Furlow J. A., Humbard M. A., Kirkland P. A., Li W., Reuter C. J., Wright A. J., Zhou G. Proteasomes from structure to function: perspectives from Archaea // Curr Top Dev Biol. - 2006. - T. 75. - C. 125-69.
2. Wada M., Kosaka M., Saito S., Sano T., Tanaka K., Ichihara A. Serum concentration and localization in tumor cells of proteasomes in patients with hematologic malignancy and their pathophysiologic significance // J Lab Clin Med. - 1993. - T. 121, № 2. - C. 215-23.
3. Roth G. A., Moser B., Krenn C., Roth-Walter F., Hetz H., Richter S., Brunner M., Jensen- Jarolim E., Wolner E., Hoetzenecker K., Boltz-Nitulescu G., Ankersmit H. J. Heightened levels of circulating 20S proteasome in critically ill patients // Eur J Clin Invest. - 2005. - T. 35, № 6. - C. 399-403.
4. Egerer K., Kuckelkorn U., Rudolph P. E., Ruckert J. C., Dorner T., Burmester G. R., Kloetzel P. M., Feist E. Circulating proteasomes are markers of cell damage and immunologic activity in autoimmune diseases // J Rheumatol. - 2002. - T. 29, № 10. - C. 2045-52.
5. Stoebner P. E., Lavabre-Bertrand T., Henry L., Guiraud I., Carillo S., Dandurand M., Joujoux J. M., Bureau J. P., Meunier L. High plasma proteasome levels are detected in patients with metastatic malignant melanoma // Br J Dermatol. - 2005. - T. 152, № 5. - C. 948-53.
6. Lavabre-Bertrand T., Henry L., Carillo S., Guiraud I., Ouali A., Dutaud D., Aubry L., Rossi J. F., Bureau J. P. Plasma proteasome level is a potential marker in patients with solid tumors and hemopoietic malignancies // Cancer. - 2001. - T. 92, № 10. - C. 2493-500.
7. Budenholzer L., Cheng C. L., Li Y., Hochstrasser M. Proteasome Structure and Assembly // J Mol Biol. - 2017. - T. 429, № 22. - C. 3500-3524.
8. Tanaka K. The proteasome: overview of structure and functions // Proc Jpn Acad Ser B Phys Biol Sci. - 2009. - T. 85, № 1. - C. 12-36.
9. Dahlmann B. Proteasomes // Essays Biochem. - 2005. - T. 41. - C. 31-48.
10. Voges D., Zwickl P., Baumeister W. The 26S proteasome: a molecular machine designed for controlled proteolysis // Annu Rev Biochem. - 1999. - T. 68. - C. 1015-68.
11. Lowe J., Stock D., Jap B., Zwickl P., Baumeister W., Huber R. Crystal structure of the 20S proteasome from the archaeon T. acidophilum at 3.4 A resolution // Science. - 1995. - T. 268, № 5210. - C. 533-9.
12. Groll M., Ditzel L., Lowe J., Stock D., Bochtler M., Bartunik H. D., Huber R. Structure of 20S proteasome from yeast at 2.4 A resolution // Nature. - 1997. - T. 386, № 6624. - C. 463-71.
13. Seemuller E., Lupas A., Stock D., Lowe J., Huber R., Baumeister W. Proteasome from Thermoplasma acidophilum: a threonine protease // Science. - 1995. - T. 268, № 5210. - C. 579-82.
14. Coux O., Tanaka K., Goldberg A. L. Structure and functions of the 20S and 26S proteasomes // Annu Rev Biochem. - 1996. - T. 65. - C. 801-47.
15. Groll M., Bochtler M., Brandstetter H., Clausen T., Huber R. Molecular machines for protein degradation // Chembiochem. - 2005. - T. 6, № 2. - C. 222-56.
...