ОГЛАВЛЕНИЕ 2
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ 3
ВВЕДЕНИЕ 4
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 6
1.1 Гематоэнцефалический барьер 6
1.2 Основные белки плотных контактов гематоэнцефалического барьера 10
1.3 Миодистрофия Дюшенна 12
2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ 15
2.1 Приподнятый крестообразный лабиринт 15
2.2 Тест Порсолта 16
2.3 Вестерн-блот 18
2.4 Статистическая обработка результатов 20
3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ 21
3.1 Оценка локомоторной активности у мышей mdx и C57BL. 21
3.2 Оценка уровня тревожности у мышей mdx и C57BL. 23
3.3 Оценка депрессивно-подобного состояния мышей mdx и C57BL. 25
3.4 Определение уровня белков плотных контактов в головном мозге мышей mdx и C57BL. 27
4. ВЫВОДЫ 30
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ 31
БЛАГОДАРНОСТИ
Гематоэнцефалический барьер (ГЭБ) – это физиологический барьер, основная функция которого заключается в поддержании постоянства тканевой среды головного мозга для обеспечения нормального функционирования нейронов. Данная функция осуществляется путём контроля транспорта веществ и клеток между кровеносным руслом и тканями мозга. Гематоэнцефалический барьер образован эндотелиальными клетками, базальной мембраной, перицитами и астроцитами, тесно взаимодействующими друг с другом.
Существуют два пути транспорта через гематоэнцефалический барьер – трансцеллюлярный и парацеллюлярный. Белки плотных контактов, расположенные между эндотелиоцитами кровеносных сосудов, представляют собой важный компонент регуляции парацеллюлярного транспорта.
Основными белками плотных контактов являются клаудины, при этом клаудин-5 считается необходимым для обеспечения барьерных функций эндотелия сосудов мозга. Было установлено, что у мышей, нокаутных по клаудину-5, значительно повышается парацеллюлярная проницаемость в головном мозге при сохранении структуры плотных контактов (Nitta et al., 2003). Помимо него к важным маркерам эндотелия гематоэнцефалического барьера относится и другой трансмембранный белок плотных контактов – окклюдин, функции которого связывают с ограничением парацеллюлярной проницаемости для макромолекул (Al-Sadi et al., 2011), а также с обеспечением ветвления нитей плотных контактов (Saito et al., 2021).
Дисфункция плотных контактов и нарушение функций гематоэнцефалического барьера ассоциированы с развитием некоторых психоневрологических нарушений, таких как рассеянный склероз, шизофрения, расстройства аутистического спектра (РАС) и депрессия (Greene et al., 2019; Kealy et al., 2020).
Существует ряд соматических заболеваний, в которых могут проявляться психоневрологические синдромы, схожие с перечисленными выше, такие как повышенная тревожность и депрессия. К подобным заболеваниям относится миодистрофия Дюшенна (МДД).Данная патология относится к дистрофинопатиям – группе наследственных рецессивных X-сцепленных заболеваний, вызванных мутациями в гене дистрофина. При миодистрофии Дюшенна мутации вызывают сдвиг рамки считывания и преждевременное появление стоп-кодона, из-за чего синтезируется нефункциональный белок дистрофин. Связанный с дистрофином белковый комплекс обеспечивает амортизирующую связь между цитоскелетом и внеклеточным матриксом, играя важную роль в стабилизации мышечных волокон и сопротивлении механическому стрессу при мышечном сокращении(Leyva-Leyva etal., 2018). В связи с этим патогенез МДД во многом объясняется разрушением дистрофин-ассоциированного белкового комплекса, снижением механической прочности мембраны и ускоренной дегенерацией мышечной ткани (Verhaart et al., 2019).
Помимо тяжелых мышечных симптомов, у пациентов с МДД часто выражены когнитивные и психоневрологические нарушения (Naidoo et al., 2020). Распространенность данных симптомов связывают с синаптическими нарушениями, а также с отсутствием укороченных форм дистрофина, преимущественно экспрессируемых в тканях головного мозга. Однако на данный момент нет достаточных сведений о нарушениях, связанных с потерей полноразмерной цепи дистрофина в эндотелиях сосудов головного мозга. Существует предположение, что потеря полноразмерных форм дистрофина в центральной нервной системе (ЦНС) ведёт к увеличению проницаемости гематоэнцефалического барьера (Nicoetal., 2004), однако остаётся малоизученным состояние белков плотных контактов в эндотелии кровеносных сосудов головного мозга при миодистрофии Дюшенна.
Одной из наиболее распространённых моделей МДД являются мыши mdx, несущие мутацию в гене дистрофина, приводящую к отсутствию синтеза полноразмерной формы данного белка (Sicinski et al., 1989). У мышей mdx в ряде исследований наблюдается повышенная тревожность и тоническая неподвижность, связанная со страхом (Vaillend et al., 2017), что свидетельствует о нарушениях в ЦНС. Исследование плотных контактов в эндотелии ГЭБ на данной модели позволит приблизиться к пониманию механизмов, затрагивающих изменения проницаемости сосудов головного мозга, связанные с потерей дистрофина.
Целью данной работыявляется оценка уровня белков плотных контактов в эндотелии сосудов головного мозга у мышей mdx и C57BL и оценка их тревожности.
Для достижения данной цели были поставлены следующие задачи:
1. Оценка локомоторной активности мышей mdx и C57BL в приподнятом крестообразном лабиринте.
2. Оценка уровня тревожности у мышей mdx и C57BL в приподнятом крестообразном лабиринте.
3. Оценка уровня депрессивно-подобного состояния у мышей mdx и C57BL с помощью теста Порсолта.
4. Анализ уровня окклюдина и клаудина-5 в головном мозге мышей mdx и C57BL с помощью метода вестерн блот.
1. У мышей mdx обнаружено достоверное снижение общей пройденной дистанции, а также дистанции, пройденной в закрытых рукавах в тесте приподнятый крестообразный лабиринт, что может указывать на снижение локомоторной активности у мышей mdx по сравнению с контрольной группой мышей C57BL.
2. Мыши mdx достоверно не отличались от контрольной группы мышей C57BL по времени пребывания в открытых рукавахи по отношению дистанции, пройденной в открытых рукавах к общей пройденной дистанции, что может свидетельствовать об отсутствии повышенной тревожности у мышей mdx.
3. Тест Порсолта показал отсутствие у мышей mdx депрессивно-подобного состояния по сравнению с контрольной группой мышей C57BL.
4. У мышей mdx не наблюдалось достоверного изменения уровня окклюдина и клаудина-5 по сравнению с контрольной группой мышей C57BL, что свидетельствует об отсутвии изменений в барьерном механизме эндотелия гематоэнцефалического барьера.
1) Марков, А. Г. Белки плотных контактов клаудины: молекулярное звено парацеллюлярного транспорта / А. Г. Марков // Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. – 2013. – Т. 99, № 2. – С. 175-195. – EDN PVAKTJ.
2) Aijaz S, Balda MS, Matter K. Tight junctions: molecular architecture and function. Int RevCytol. 2006;248:261-98. doi: 10.1016/S0074-7696(06)48005-0. PMID: 16487793.
3) Aird WC. Phenotypic heterogeneity of the endothelium: I. Structure, function, and mechanisms. Circ Res. 2007 Feb 2;100(2):158-73. doi: 10.1161/01.RES.0000255691.76142.4a. PMID: 17272818.
4) Al-Sadi R, Khatib K, Guo S, Ye D, Youssef M, Ma T. Occludin regulates macromolecule flux across the intestinal epithelial tight junction barrier. Am J PhysiolGastrointest Liver Physiol. 2011 Jun;300(6):G1054-64. doi: 10.1152/ajpgi.00055.2011. Epub 2011 Mar 17. PMID: 21415414; PMCID: PMC3119114.
5) Armulik A, Genové G, Betsholtz C. Pericytes: developmental, physiological, and pathological perspectives, problems, and promises. Dev Cell. 2011 Aug 16;21(2):193-215. doi: 10.1016/j.devcel.2011.07.001. PMID: 21839917.
6) Bagdatlioglu E, Porcari P, Greally E, Blamire AM, Straub VW. Cognitive impairment appears progressive in the mdx mouse. NeuromusculDisord. 2020 May;30(5):368-388. doi: 10.1016/j.nmd.2020.02.018. Epub 2020 Mar 4. PMID: 32360405; PMCID: PMC7306157.
7) Barres BA. The mystery and magic of glia: a perspective on their roles in health and disease. Neuron. 2008 Nov 6;60(3):430-40. doi: 10.1016/j.neuron.2008.10.013. PMID: 18995817.
8) Bazzoni G, Dejana E. Endothelial cell-to-cell junctions: molecular organization and role in vascular homeostasis. PhysiolRev. 2004 Jul;84(3):869-901. doi: 10.1152/physrev.00035.2003. PMID: 15269339.
9) Ben-Zvi A, Lacoste B, Kur E, Andreone BJ, Mayshar Y, Yan H, Gu C. Mfsd2a is critical for the formation and function of the blood-brain barrier. Nature. 2014 May 22;509(7501):507-11. doi: 10.1038/nature13324. Epub 2014 May 14. PMID: 24828040; PMCID: PMC4134871.
10) Berndt P, Winkler L, Cording J, Breitkreuz-Korff O, Rex A, Dithmer S, Rausch V, Blasig R, Richter M, Sporbert A, Wolburg H, Blasig IE, Haseloff RF. Tight junction proteins at the blood-brain barrier: far more than claudin-5. Cell Mol Life Sci. 2019 May;76(10):1987-2002. doi: 10.1007/s00018-019-03030-7. Epub 2019 Feb 7. PMID: 30734065.
11) Birnkrant DJ, Bushby K, Bann CM, Apkon SD, Blackwell A, Brumbaugh D, Case LE, Clemens PR, Hadjiyannakis S, Pandya S, Street N, Tomezsko J, Wagner KR, Ward LM, Weber DR; DMD Care Considerations Working Group. Diagnosis and management of Duchenne muscular dystrophy, part 1: diagnosis, and neuromuscular, rehabilitation, endocrine, and gastrointestinal and nutritional management. Lancet Neurol. 2018 Mar;17(3):251-267. doi: 10.1016/S1474-4422(18)30024-3. Epub 2018 Feb 3. Erratum in: Lancet Neurol. 2018 Apr 4;: PMID: 29395989; PMCID: PMC5869704.
12) Bulfield G, Siller WG, Wight PA, Moore KJ. X chromosome-linked muscular dystrophy (mdx) in the mouse. Proc Natl Acad Sci U S A. 1984 Feb;81(4):1189-92. doi: 10.1073/pnas.81.4.1189. PMID: 6583703; PMCID: PMC344791.
13) Brussee V, Tardif F, Tremblay JP. Muscle fibers of mdx mice are more vulnerable to exercise than those of normal mice. NeuromusculDisord. 1997 Dec;7(8):487-92. doi: 10.1016/s0960-8966(97)00115-6. PMID: 9447605.
14) Byers TJ, Lidov HG, Kunkel LM. An alternative dystrophin transcript specific to peripheral nerve. NatGenet. 1993 May;4(1):77-81. doi: 10.1038/ng0593-77. PMID: 8513330.
15) Campos AC, Fogaça MV, Aguiar DC, Guimarães FS. Animal models of anxiety disorders and stress. Braz J Psychiatry. 2013;35 Suppl 2:S101-11. doi: 10.1590/1516-4446-2013-1139. PMID: 24271222.
16) Can A, Dao DT, Arad M, Terrillion CE, Piantadosi SC, Gould TD. The mouse forced swim test. J VisExp. 2012 Jan 29;(59):e3638. doi: 10.3791/3638. PMID: 22314943; PMCID: PMC3353513.
17) Chelly J, Hamard G, Koulakoff A, Kaplan JC, Kahn A, Berwald-Netter Y. Dystrophin gene transcribed from different promoters in neuronal and glial cells. Nature. 1990 Mar 1;344(6261):64-5. doi: 10.1038/344064a0. PMID: 2406613.
18) Comim CM, Ventura L, Freiberger V, Dias P, Bragagnolo D, Dutra ML, Amaral RA, Camargo-Fagundes ALS, Reis PA, Castro-Faria-Neto HC, Vainzof M, Rosa MI. Neurocognitive Impairment in mdx Mice. Mol Neurobiol. 2019 Nov;56(11):7608-7616. doi: 10.1007/s12035-019-1573-7. Epub 2019 May 10. PMID: 31077034.
19) Coomber BL, Stewart PA. Morphometric analysis of CNS microvascular endothelium. Microvasc Res. 1985 Jul;30(1):99-115. doi: 10.1016/0026-2862(85)90042-1. PMID: 4021842.
20) Daneman R, Prat A. The blood-brain barrier. Cold Spring HarbPerspect Biol. 2015 Jan 5;7(1):a020412. doi: 10.1101/cshperspect.a020412. PMID: 25561720; PMCID: PMC4292164.
21) Daneman R, Zhou L, Kebede AA, Barres BA. Pericytes are required for blood-brain barrier integrity during embryogenesis. Nature. 2010 Nov 25;468(7323):562-6. doi: 10.1038/nature09513. Epub 2010 Oct 13. PMID: 20944625; PMCID: PMC3241506.
22) De Stefano ME, Ferretti V, Mozzetta C. Synaptic alterations as a neurodevelopmental trait of Duchenne muscular dystrophy. NeurobiolDis. 2022 Jun 15;168:105718. doi: 10.1016/j.nbd.2022.105718. Epub 2022 Apr 4. PMID: 35390481.
23) Dietrich JB. The adhesion molecule ICAM-1 and its regulation in relation with the blood-brain barrier. J Neuroimmunol. 2002 Jul;128(1-2):58-68. doi: 10.1016/s0165-5728(02)00114-5. PMID: 12098511.
24) Doorenweerd N, Mahfouz A, van Putten M, Kaliyaperumal R, T' Hoen PAC, Hendriksen JGM, Aartsma-Rus AM, Verschuuren JJGM, Niks EH, Reinders MJT, Kan HE, Lelieveldt BPF. Timing and localization of human dystrophin isoform expression provide insights into the cognitive phenotype of Duchenne muscular dystrophy. Sci Rep. 2017 Oct 3;7(1):12575. doi: 10.1038/s41598-017-12981-5. Erratum in: Sci Rep. 2018 Mar 1;8(1):4058. PMID: 28974727; PMCID: PMC5626779.
25) Dore-Duffy P. Pericytes: pluripotent cells of the blood brain barrier. CurrPharmDes. 2008;14(16):1581-93. doi: 10.2174/138161208784705469. PMID: 18673199.
26) D'Souza VN, Nguyen TM, Morris GE, Karges W, Pillers DA, Ray PN. A novel dystrophin isoform is required for normal retinal electrophysiology. HumMolGenet. 1995 May;4(5):837-42. doi: 10.1093/hmg/4.5.837. PMID: 7633443.
27) Duan D, Goemans N, Takeda S, Mercuri E, Aartsma-Rus A. Duchenne muscular dystrophy. Nat Rev Dis Primers. 2021 Feb 18;7(1):13. doi: 10.1038/s41572-021-00248-3. PMID: 33602943.
28) Dunton AD, Göpel T, Ho DH, Burggren W. Form and Function of the Vertebrate and Invertebrate Blood-Brain Barriers. Int J Mol Sci. 2021 Nov 9;22(22):12111. doi: 10.3390/ijms222212111. PMID: 34829989; PMCID: PMC8618301.
29) Etchevers HC, Vincent C, Le Douarin NM, Couly GF. The cephalic neural crest provides pericytes and smooth muscle cells to all blood vessels of the face and forebrain. Development. 2001 Apr;128(7):1059-68. doi: 10.1242/dev.128.7.1059. PMID: 11245571.
30) Feldman GJ, Mullin JM, Ryan MP. Occludin: structure, function and regulation. AdvDrugDelivRev. 2005 Apr 25;57(6):883-917. doi: 10.1016/j.addr.2005.01.009. PMID: 15820558.
31) Flanigan KM. Duchenne and Becker muscular dystrophies. Neurol Clin. 2014 Aug;32(3):671-88, viii. doi: 10.1016/j.ncl.2014.05.002. PMID: 25037084.
32) Garrido-Urbani S, Bradfield PF, Imhof BA. Tight junction dynamics: the role of junctional adhesion molecules (JAMs). Cell Tissue Res. 2014 Mar;355(3):701-15. doi: 10.1007/s00441-014-1820-1. Epub 2014 Mar 5. PMID: 24595739.
33) Górecki DC, Abdulrazzak H, Lukasiuk K, Barnard EA. Differential expression of syntrophins and analysis of alternatively spliced dystrophin transcripts in the mouse brain. Eur J Neurosci. 1997 May;9(5):965-76. doi: 10.1111/j.1460-9568.1997.tb01447.x. PMID: 9182949.
34) Górecki DC, Monaco AP, Derry JM, Walker AP, Barnard EA, Barnard PJ. Expression of four alternative dystrophin transcripts in brain regions regulated by different promoters. HumMolGenet. 1992 Oct;1(7):505-10. doi: 10.1093/hmg/1.7.505. PMID: 1307251.
35) Greene C, Hanley N, Campbell M. Claudin-5: gatekeeper of neurological function. Fluids Barriers CNS. 2019 Jan 29;16(1):3. doi: 10.1186/s12987-019-0123-z. PMID: 30691500; PMCID: PMC6350359.
36) Günzel D, Fromm M. Claudins and other tight junction proteins. Compr Physiol. 2012 Jul;2(3):1819-52. doi: 10.1002/cphy.c110045. PMID: 23723025.
37) Gurevich DB, David DT, Sundararaman A, Patel J. Endothelial Heterogeneity in Development and Wound Healing. Cells. 2021 Sep 7;10(9):2338. doi: 10.3390/cells10092338. PMID: 34571987; PMCID: PMC8469713.
38) Hartmann C, Schwietzer YA, Otani T, Furuse M, Ebnet K. Physiological functions of junctional adhesion molecules (JAMs) in tight junctions. BiochimBiophys Acta Biomembr. 2020 Sep 1;1862(9):183299. doi: 10.1016/j.bbamem.2020.183299. Epub 2020 Apr 2. PMID: 32247783.
39) Hashimoto Y, Greene C, Munnich A, Campbell M. The CLDN5 gene at the blood-brain barrier in health and disease. FluidsBarriers CNS. 2023 Mar 28;20(1):22. doi: 10.1186/s12987-023-00424-5. PMID: 36978081; PMCID: PMC10044825.
40) Hashimoto Y, Kuniishi H, Sakai K, Fukushima Y, Du X, Yamashiro K, Hori K, Imamura M, Hoshino M, Yamada M, Araki T, Sakagami H, Takeda S, Itaka K, Ichinohe N, Muntoni F, Sekiguchi M, Aoki Y. Brain Dp140 alters glutamatergic transmission and social behaviour in the mdx52 mouse model of Duchenne muscular dystrophy. ProgNeurobiol. 2022 Sep;216:102288. doi: 10.1016/j.pneurobio.2022.102288. Epub 2022 May 30. PMID: 35654209.
41) Hoddevik EH, Rao SB, Zahl S, Boldt HB, Ottersen OP, Amiry-Moghaddam M. Organisation of extracellular matrix proteins laminin and agrin in pericapillary basal laminae in mouse brain. Brain Struct Funct. 2020 Mar;225(2):805-816. doi: 10.1007/s00429-020-02036-3. Epub 2020 Feb 18. PMID: 32072250; PMCID: PMC7046580.
42) HouJ., Chapter 2 - Biochemical approaches for tight junction, Editor(s): Jianghui Hou, A Laboratory Guide to the Tight Junction, Academic Press, 2020, Pages 33-88, ISBN 9780128186473, https://doi.org/10.1016/B978-0-12-818647-3.00002-7.
43) Ito K, Kimura S, Ozasa S, Matsukura M, Ikezawa M, Yoshioka K, Ueno H, Suzuki M, Araki K, Yamamura K, Miwa T, Dickson G, Thomas GD, Miike T. Smooth muscle-specific dystrophin expression improves aberrant vasoregulation in mdx mice. Hum Mol Genet. 2006 Jul 15;15(14):2266-75. doi: 10.1093/hmg/ddl151. Epub 2006 Jun 15. PMID: 16777842.
44) Kodippili K, Thorne PK, Laughlin MH, Duan D. Dystrophin deficiency impairs vascular structure and function in the canine model of Duchenne muscular dystrophy. J Pathol. 2021 Aug;254(5):589-605. doi: 10.1002/path.5704. Epub 2021 Jun 14. PMID: 33999411; PMCID: PMC8713812.
45) Koehler RC, Roman RJ, Harder DR. Astrocytes and the regulation of cerebral blood flow. Trends Neurosci. 2009 Mar;32(3):160-9. doi: 10.1016/j.tins.2008.11.005. Epub 2009 Jan 21. PMID: 19162338.
46) Krause G, Winkler L, Mueller SL, Haseloff RF, Piontek J, Blasig IE. Structure and function of claudins. BiochimBiophys Acta. 2008 Mar;1778(3):631-45. doi: 10.1016/j.bbamem.2007.10.018. Epub 2007 Oct 25. PMID: 18036336.
47) Lacaz-Vieira F, Jaeger MM, Farshori P, Kachar B. Small synthetic peptides homologous to segments of the first external loop of occludin impair tight junction resealing. J MembrBiol. 1999 Apr 1;168(3):289-97. doi: 10.1007/s002329900518. PMID: 10191363.
48) Leyva-Leyva M, Sandoval A, Felix R, González-Ramírez R. Biochemical and Functional Interplay Between Ion Channels and the Components of the Dystrophin-Associated Glycoprotein Complex. J Membr Biol. 2018 Aug;251(4):535-550. doi: 10.1007/s00232-018-0036-9. Epub 2018 May 19. PMID: 29779049.
49) Lidov HG, Byers TJ, Watkins SC, Kunkel LM. Localization of dystrophin to postsynaptic regions of central nervous system cortical neurons. Nature. 1990 Dec 20-27;348(6303):725-8. doi: 10.1038/348725a0. PMID: 2259381.
50) Lidov HG, Kunkel LM. Dystrophin and Dp140 in the adult rodent kidney. Lab Invest. 1998 Dec;78(12):1543-51. PMID: 9881954.
51) Lim D, Semyanov A, Genazzani A, Verkhratsky A. Calcium signaling in neuroglia. Int Rev Cell Mol Biol. 2021;362:1-53. doi: 10.1016/bs.ircmb.2021.01.003. Epub 2021 Apr 10. PMID: 34253292.
52) Liu WY, Wang ZB, Zhang LC, Wei X, Li L. Tight junction in blood-brain barrier: an overview of structure, regulation, and regulator substances. CNS NeurosciTher. 2012 Aug;18(8):609-15. doi: 10.1111/j.1755-5949.2012.00340.x. Epub 2012 Jun 12. PMID: 22686334; PMCID: PMC6493516.
53) Lochhead JJ, Yang J, Ronaldson PT, Davis TP. Structure, Function, and Regulation of the Blood-Brain Barrier Tight Junction in Central Nervous System Disorders. Front Physiol. 2020 Aug 6;11:914. doi: 10.3389/fphys.2020.00914. PMID: 32848858; PMCID: PMC7424030.
54) Lopez JR, Kolster J, Uryash A, Estève E, Altamirano F, Adams JA. Dysregulation of Intracellular Ca2+ in Dystrophic Cortical and Hippocampal Neurons. MolNeurobiol. 2018 Jan;55(1):603-618. doi: 10.1007/s12035-016-0311-7. Epub 2016 Dec 15. PMID: 27975174.
55) Loufrani L, Matrougui K, Gorny D, Duriez M, Blanc I, Lévy BI, Henrion D. Flow (shear stress)-induced endothelium-dependent dilation is altered in mice lacking the gene encoding for dystrophin. Circulation. 2001 Feb 13;103(6):864-70. doi: 10.1161/01.cir.103.6.864. PMID: 11171796; PMCID: PMC2233878.
56) Lynch GS, Hinkle RT, Chamberlain JS, Brooks SV, Faulkner JA. Force and power output of fast and slow skeletal muscles from mdx mice 6-28 months old. J Physiol. 2001 Sep 1;535(Pt 2):591-600. doi: 10.1111/j.1469-7793.2001.00591.x. PMID: 11533147; PMCID: PMC2278782.
57) Magistretti PJ. Neuron-glia metabolic coupling and plasticity. J Exp Biol. 2006 Jun;209(Pt 12):2304-11. doi: 10.1242/jeb.02208. PMID: 16731806.
58) Majesky MW. Developmental basis of vascular smooth muscle diversity. ArteriosclerThrombVasc Biol. 2007 Jun;27(6):1248-58. doi: 10.1161/ATVBAHA.107.141069. Epub 2007 Mar 22. PMID: 17379839.
59) Markov AG, Aschenbach JR, Amasheh S. Claudin clusters as determinants of epithelial barrier function. IUBMB Life. 2015 Jan;67(1):29-35. doi: 10.1002/iub.1347. Epub 2015 Mar 18. PMID: 25788154.
60) Mathiisen TM, Lehre KP, Danbolt NC, Ottersen OP. The perivascular astroglial sheath provides a complete covering of the brain microvessels: an electron microscopic 3D reconstruction. Glia. 2010 Jul;58(9):1094-103. doi: 10.1002/glia.20990. PMID: 20468051.
61) Medina R, Rahner C, Mitic LL, Anderson JM, Van Itallie CM. Occludin localization at the tight junction requires the second extracellular loop. J Membr Biol. 2000 Dec 1;178(3):235-47. doi: 10.1007/s002320010031. PMID: 11140279.
62) Mineta K, Yamamoto Y, Yamazaki Y, Tanaka H, Tada Y, Saito K, Tamura A, Igarashi M, Endo T, Takeuchi K, Tsukita S. Predicted expansion of the claudin multigene family. FEBS Lett. 2011 Feb 18;585(4):606-12. doi: 10.1016/j.febslet.2011.01.028. Epub 2011 Jan 26. PMID: 21276448.
63) Moon S, Chang MS, Koh SH, Choi YK. Repair Mechanisms of the Neurovascular Unit after Ischemic Stroke with a Focus on VEGF. Int J Mol Sci. 2021 Aug 9;22(16):8543. doi: 10.3390/ijms22168543. PMID: 34445248; PMCID: PMC8395233.
64) Morita K, Sasaki H, Furuse M, Tsukita S. Endothelial claudin: claudin-5/TMVCF constitutes tight junction strands in endothelial cells. J Cell Biol. 1999 Oct 4;147(1):185-94. doi: 10.1083/jcb.147.1.185. PMID: 10508865; PMCID: PMC2164984.
65) Muntoni F, Torelli S, Ferlini A. Dystrophin and mutations: one gene, several proteins, multiple phenotypes. LancetNeurol. 2003 Dec;2(12):731-40. doi: 10.1016/s1474-4422(03)00585-4. PMID: 14636778.
66) Muoio V, Persson PB, Sendeski MM. The neurovascular unit - concept review. ActaPhysiol (Oxf). 2014 Apr;210(4):790-8. doi: 10.1111/apha.12250. PMID: 24629161.
67) Naidoo M, Anthony K. Dystrophin Dp71 and the Neuropathophysiology of Duchenne Muscular Dystrophy. Mol Neurobiol. 2020 Mar;57(3):1748-1767. doi: 10.1007/s12035-019-01845-w. Epub 2019 Dec 13. PMID: 31836945; PMCID: PMC7060961.
68) Nico B, Paola Nicchia G, Frigeri A, Corsi P, Mangieri D, Ribatti D, Svelto M, Roncali L. Altered blood-brain barrier development in dystrophic MDX mice. Neuroscience. 2004;125(4):921-35. doi: 10.1016/j.neuroscience.2004.02.008. PMID: 15120852.
69) Nitta T, Hata M, Gotoh S, Seo Y, Sasaki H, Hashimoto N, Furuse M, Tsukita S. Size-selective loosening of the blood-brain barrier in claudin-5-deficient mice. J Cell Biol. 2003 May 12;161(3):653-60. doi: 10.1083/jcb.200302070. PMID: 12743111; PMCID: PMC2172943.
70) Ohlendieck K, Swandulla D. Complexity of skeletal muscle degeneration: multi-systems pathophysiology and organ crosstalk in dystrophinopathy. Pflugers Arch. 2021 Dec;473(12):1813-1839. doi: 10.1007/s00424-021-02623-1. Epub 2021 Sep 22. PMID: 34553265; PMCID: PMC8599371.
71) Ortiz-Zapater E, Santis G, Parsons M. CAR: A key regulator of adhesion and inflammation. Int J Biochem Cell Biol. 2017 Aug;89:1-5. doi: 10.1016/j.biocel.2017.05.025. Epub 2017 May 22. PMID: 28545889.
72) Otani T, Nguyen TP, Tokuda S, Sugihara K, Sugawara T, Furuse K, Miura T, Ebnet K, Furuse M. Claudins and JAM-A coordinately regulate tight junction formation and epithelial polarity. J Cell Biol. 2019 Oct 7;218(10):3372-3396. doi: 10.1083/jcb.201812157. Epub 2019 Aug 29. PMID: 31467165; PMCID: PMC6781433.
73) Park HJ, Shin JY, Kim HN, Oh SH, Song SK, Lee PH. Mesenchymal stem cells stabilize the blood-brain barrier through regulation of astrocytes. Stem Cell Res Ther. 2015 Sep 29;6:187. doi: 10.1186/s13287-015-0180-4. PMID: 26420371; PMCID: PMC4588687.
74) Patel AM, Wierda K, Thorrez L, van Putten M, De Smedt J, Ribeiro L, Tricot T, Gajjar M, Duelen R, Van Damme P, De Waele L, Goemans N, Tanganyika-de Winter C, Costamagna D, Aartsma-Rus A, van Duyvenvoorde H, Sampaolesi M, Buyse GM, Verfaillie CM. Dystrophin deficiency leads to dysfunctional glutamate clearance in iPSC derived astrocytes. Transl Psychiatry. 2019 Aug 21;9(1):200. doi: 10.1038/s41398-019-0535-1. PMID: 31434868; PMCID: PMC6704264.
75) Personius KE, Sawyer RP. Terminal Schwann cell structure is altered in diaphragm of mdx mice. MuscleNerve. 2005 Nov;32(5):656-63. doi: 10.1002/mus.20405. PMID: 16025531.
76) Polakoff RJ, Morton AA, Koch KD, Rios CM. The psychosocial and cognitive impact of Duchenne's muscular dystrophy. SeminPediatrNeurol. 1998 Jun;5(2):116-23. doi: 10.1016/s1071-9091(98)80027-2. PMID: 9661245.
77) Rao R. Occludin phosphorylation in regulation of epithelial tight junctions. Ann N Y Acad Sci. 2009 May;1165:62-8. doi: 10.1111/j.1749-6632.2009.04054.x. PMID: 19538289; PMCID: PMC6202026.
78) Remmelink E, Aartsma-Rus A, Smit AB, Verhage M, Loos M, van Putten M. Cognitive flexibility deficits in a mouse model for the absence of full-length dystrophin. Genes Brain Behav. 2016 Jul;15(6):558-67. doi: 10.1111/gbb.12301. PMID: 27220066.
79) Ricotti V, Mandy WP, Scoto M, Pane M, Deconinck N, Messina S, Mercuri E, Skuse DH, Muntoni F. Neurodevelopmental, emotional, and behavioural problems in Duchenne muscular dystrophy in relation to underlying dystrophin gene mutations. Dev Med Child Neurol. 2016 Jan;58(1):77-84. doi: 10.1111/dmcn.12922. Epub 2015 Sep 14. PMID: 26365034.
80) Ronaldson PT, Davis TP. Targeting blood-brain barrier changes during inflammatory pain: an opportunity for optimizing CNS drug delivery. TherDeliv. 2011 Aug;2(8):1015-41. doi: 10.4155/tde.11.67. PMID: 22468221; PMCID: PMC3313594.
81) Saito AC, Higashi T, Fukazawa Y, Otani T, Tauchi M, Higashi AY, Furuse M, Chiba H. Occludin and tricellulin facilitate formation of anastomosing tight-junction strand network to improve barrier function. Mol Biol Cell. 2021 Apr 15;32(8):722-738. doi: 10.1091/mbc.E20-07-0464. Epub 2021 Feb 10. PMID: 33566640; PMCID: PMC8108510.
82) Saitou M, Furuse M, Sasaki H, Schulzke JD, Fromm M, Takano H, Noda T, Tsukita S. Complex phenotype of mice lacking occludin, a component of tight junction strands. MolBiol Cell. 2000 Dec;11(12):4131-42. doi: 10.1091/mbc.11.12.4131. PMID: 11102513; PMCID: PMC15062.
83) Schaeffer S, Iadecola C. Revisiting the neurovascular unit. Nat Neurosci. 2021 Sep;24(9):1198-1209. doi: 10.1038/s41593-021-00904-7. Epub 2021 Aug 5. PMID: 34354283; PMCID: PMC9462551.
84) Segal MB. The choroid plexuses and the barriers between the blood and the cerebrospinal fluid. Cell MolNeurobiol. 2000 Apr;20(2):183-96. doi: 10.1023/a:1007045605751. PMID: 10696509.
85) Sesay AK, Errington ML, Levita L, Bliss TV. Spatial learning and hippocampal long-term potentiation are not impaired in mdx mice. NeurosciLett. 1996 Jun 28;211(3):207-10. doi: 10.1016/0304-3940(96)12747-6. PMID: 8817577.
86) Sicinski P, Geng Y, Ryder-Cook AS, Barnard EA, Darlison MG, Barnard PJ. The molecular basis of muscular dystrophy in the mdx mouse: a point mutation. Science. 1989 Jun 30;244(4912):1578-80. doi: 10.1126/science.2662404. PMID: 2662404.
87) Sofroniew MV, Vinters HV. Astrocytes: biology and pathology. Acta Neuropathol. 2010 Jan;119(1):7-35. doi: 10.1007/s00401-009-0619-8. Epub 2009 Dec 10. PMID: 20012068; PMCID: PMC2799634.
88) Sweeney MD, Ayyadurai S, Zlokovic BV. Pericytes of the neurovascular unit: key functions and signaling pathways. NatNeurosci. 2016 May 26;19(6):771-83. doi: 10.1038/nn.4288. PMID: 27227366; PMCID: PMC5745011.
89) Sweeney MD, Zhao Z, Montagne A, Nelson AR, Zlokovic BV. Blood-Brain Barrier: From Physiology to Disease and Back. PhysiolRev. 2019 Jan 1;99(1):21-78. doi: 10.1152/physrev.00050.2017. PMID: 30280653; PMCID: PMC6335099.
90) Taylor PJ, Betts GA, Maroulis S, Gilissen C, Pedersen RL, Mowat DR, Johnston HM, Buckley MF. Dystrophin gene mutation location and the risk of cognitive impairment in Duchenne muscular dystrophy. PLoS One. 2010 Jan 20;5(1):e8803. doi: 10.1371/journal.pone.0008803. PMID: 20098710; PMCID: PMC2808359.
91) Tinsley JM, Blake DJ, Davies KE. Apo-dystrophin-3: a 2.2kb transcript from the DMD locus encoding the dystrophin glycoprotein binding site. HumMolGenet. 1993 May;2(5):521-4. doi: 10.1093/hmg/2.5.521. PMID: 8518789.
92) Ufnal M, Skrzypecki J. Blood borne hormones in a cross-talk between peripheral and brain mechanisms regulating blood pressure, the role of circumventricular organs. Neuropeptides. 2014 Apr;48(2):65-73. doi: 10.1016/j.npep.2014.01.003. Epub 2014 Jan 22. PMID: 24485840.
93) Ullian EM, Sapperstein SK, Christopherson KS, Barres BA. Control of synapse number by glia. Science. 2001 Jan 26;291(5504):657-61. doi: 10.1126/science.291.5504.657. PMID: 11158678.
94) Vaillend C, Billard JM, Claudepierre T, Rendon A, Dutar P, Ungerer A. Spatial discrimination learning and CA1 hippocampal synaptic plasticity in mdx and mdx3cv mice lacking dystrophin gene products. Neuroscience. 1998 Sep;86(1):53-66. doi: 10.1016/s0306-4522(98)00023-2. PMID: 9692743.
95) Vaillend C, Billard JM, Laroche S. Impaired long-term spatial and recognition memory and enhanced CA1 hippocampal LTP in the dystrophin-deficient Dmd(mdx) mouse. NeurobiolDis. 2004 Oct;17(1):10-20. doi: 10.1016/j.nbd.2004.05.004. PMID: 15350961.
96) Vaillend C, Chaussenot R. Relationships linking emotional, motor, cognitive and GABAergic dysfunctions in dystrophin-deficient mdx mice. HumMolGenet. 2017 Mar 15;26(6):1041-1055. doi: 10.1093/hmg/ddx013. PMID: 28087735.
97) Van Itallie CM, Tietgens AJ, Anderson JM. Visualizing the dynamic coupling of claudin strands to the actin cytoskeleton through ZO-1. Mol Biol Cell. 2017 Feb 15;28(4):524-534. doi: 10.1091/mbc.E16-10-0698. Epub 2016 Dec 14. PMID: 27974639; PMCID: PMC5305259.
98) Verkhratsky A, Nedergaard M. Physiology of Astroglia. Physiol Rev. 2018 Jan 1;98(1):239-389. doi: 10.1152/physrev.00042.2016. PMID: 29351512; PMCID: PMC6050349.
99) Volterra A, Meldolesi J. Astrocytes, from brain glue to communication elements: the revolution continues. NatRevNeurosci. 2005 Aug;6(8):626-40. doi: 10.1038/nrn1722. PMID: 16025096.
100) Yuan S, Liu KJ, Qi Z. Occludin regulation of blood-brain barrier and potential therapeutic target in ischemic stroke. Brain Circ. 2020 Sep 30;6(3):152-162. doi: 10.4103/bc.bc_29_20. PMID: 33210038; PMCID: PMC7646391.
101) Zabłocka B, Górecki DC, Zabłocki K. Disrupted Calcium Homeostasis in Duchenne Muscular Dystrophy: A Common Mechanism behind Diverse Consequences. Int J Mol Sci. 2021 Oct 13;22(20):11040. doi: 10.3390/ijms222011040. PMID: 34681707; PMCID: PMC8537421.
102) Zihni C, Mills C, Matter K, Balda MS. Tight junctions: from simple barriers to multifunctional molecular gates. Nat Rev Mol Cell Biol. 2016 Sep;17(9):564-80. doi: 10.1038/nrm.2016.80. Epub 2016 Jun 29. PMID: 27353478.