СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
ВВЕДЕНИЕ
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Пептиды CLE и их роль в развитии растений
1.2. Пептиды CLE в регуляции развития клубеньков
1.3. Полиморфизм и естественный отбор
1.4. Методы оценки полиморфизма генов у люцерны
2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
2.1. Растительный материал
2.2. Выделение растительной ДНК
2.3. Амплификация фрагментов генов CLE
2.4. Трансформация растений с помощью A. rhizogenes
2.5. Выделение РНК и обратная транскрипция
2.6. Проведение ПЦР в реальном времени
2.7. Биоинформатический анализ
3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
3.1. Филогенетический анализ генов CLE
3.2. Распределение генов MtCLE по хромосомам
3.3. Оценка экспрессии генов MtCLE с помощью доступных транскриптомных данных
3.4. Оценка полиморфизма генов MtCLEлюцерны
3.5. Определение последовательностей фрагментов гена MtCLE34 с помощью секвенирования
3.6. Определение влияния отбора в участках генов MtCLE
3.7. Поиск ассоциаций полиморфизма генов MtCLE с количеством образующихся клубеньков
3.8. Изучение функциональной значимости гена MtCLE34 в регуляции развития симбиотических клубеньков у M. truncatula
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
ВЫВОДЫ
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
ПРИЛОЖЕНИЯ
БЛАГОДАРНОСТИ
Одними из наиболее изученных пептидных фитогормонов являются пептиды CLE (CLAVATA3/EMBRYO SURROUNDING REGION-RELATED). Пептиды CLE имеют размер около 12-14 аминокислот, и образуются из более протяженных белков-предшественников, которые содержат высоко консервативный С-концевой СLE-домен, основная представляющий собой функциональную часть пептидов CLE, а также предполагаемый сигнал секреции на N-конце. Пептиды CLEучаствуют в регуляции различных аспектов развития растений, в том числе̶ в системном контроле развития симбиотических клубеньков. Клубеньки формируются на корнях бобовых растений при симбиозе с почвенными азотфиксирующими бактериями ризобиями. Наряду с механизмами локального контроля, активируемых в результате рецепции сигнальных молекул ризобий,Nod-факторов, в процесс формирования клубеньков у бобовых растений также вовлечены и системные механизмы - система авторегуляции клубенькообразования (Autoregulation Of Nodulation, AON). Ключевым компонентом AON является рецепторная CLAVATA1 (CLV1) - подобная киназа, демонстрирующая высокий процент сходства по последовательности с киназойCLV1, ответственной за поддержание пула стволовых клеток в апикальной меристеме побега. Мутанты по генам, кодирующим CLV1-подобные рецепторы получены у ряда бобовых и все они образуют избыточное число клубеньков при симбиозе с ризобиями (суперклубенькообразующий фенотип). CLV1-подобныекиназы, как было показано с помощью прививок, функционируют в побеге, и их лигандами являются регуляторные пептиды CLE, которые синтезируются в корнях и поступают по проводящей системе из корней – в побег. Однако, в работе системы авторегуляции клубенькообразованияу бобовых растений еще многое остается неизученным. В частности, до конца неясно, какое число пептидов CLE и их рецепторов в ней задействовано.
В настоящей работе проводилось изучение полиморфизма Medicago truncatula по генам, кодирующим пептидыCLE, для которых показано или предполагается участие в системе авторегуляции клубенькообразования. В качестве объектов исследования были использованы 2 линии бобового растения M. truncatula – A17 и R108. В качестве генов для исследования были выбраны гены MtCLE12иMtCLE13, для которых ранее было показано участие в AON (Mortieretal., 2010), а также два родственных им гена, MtCLE34 и MtCLE35. Как было недавно показано в нашей лаборатории, ген MtCLE35 также задействован в AON и сверхэкспрессия этого гена подавляет развитие симбиотических клубеньков. Функция MtCLE34 оставалась неизученной. В открытой рамке считывания гена MtCLE34 у линии люцерны A17 содержится стоп-кодон, что должно приводить к синтезу укороченного нефункционального белка. Однако, у другой лабораторной линии M. truncatula, R108, согласно последовательностям, представленным в базе данных, стоп-кодон отсутствует, таким образом, у линии R108 ген MtCLE34 может кодировать функциональный продукт. Изучение генетического полиморфизма генов MtCLE у бобового растения M. truncatula представляется весьма важным как для фундаментальной науки, так и, в будущем, для прикладных аспектов – селекционной работы и современной практики растениеводства.
Таким образом, целью работы является изучение полиморфизма генов CLE, регулирующих развитие клубеньков у M. truncatula.
В работе были поставлены следующие задачи:
1) Характеристика генов CLEM. truncatula: филогенетический анализ, оценка их расположения на хромосомах люцерны, оценка уровней экспрессии генов CLEс помощью доступных баз данных, поиск консервативных элементов в регуляторных последовательностях генов CLE;
2) Поиск вариабельных позиций в последовательностях генов CLE у линий M. truncatula, доступных в базе данных HapMap и оценка давления отбора нагеныCLE с помощью методов молекулярной эволюции;
3) Изучение функции гена MtCLE34в регуляции развития симбиотических клубеньков у M. truncatula.
Таким образом, в настоящей работе проводилось изучение полиморфизма Medicago truncatula по генам, кодирующим пептидыCLE–охарактеризованные и потенциальные участники авторегуляции клубенькообразования. В качестве объектов исследования были использованы 2 линии бобового растения M. truncatula – A17 и R108. Для исследования полиморфизма были выбраны следующие гены: гомологи MtCLE12 и MtCLE13 - функционально характеризованные гены, для которых ранее было показано участие в AON; MtCLE35, функция в клубенькообразовании для которого была показана совсем недавно и ген MtCLE34,– роль которого в клубенькообразовании оставалась неизученной. Гены MtCLE12 и MtCLE13 расположены рядом на хромосоме4, тогда как гены MtCLE34 иMtCLE35занимают соседние позиции на хромосоме 2. При этом расположенные рядом пары генов CLEдемонстрируют схожий паттерн экспрессии: экспрессия генов MtCLE12 и MtCLE13 активируется при инокуляции ризобиями и в целом специфична для клубеньков, тогда как расположенные рядом гены MtCLE34 иMtCLE35активируются при клубенькообразовании, при действии нитрата, а также их экспрессия наблюдается в корневой системе неинокулированных растений. Характер экспрессии генов MtCLE34 иMtCLE35позволяет предположить, что их роль в растениях может быть более широкой и может не ограничиваться регуляцией клубенькообразования.
В результате проведенного поиска вариабельных позиций в последовательностях генов CLE у линий M. truncatula, доступных в базе данных HapMap,были обнаружены существующие SNP, из которых в гене MtCLE13 – только две синонимичные замены, что может свидетельствовать о консервативности этого гена и значимости его функций для жизни растения, а также о возможном существовании направленного отбора в эволюции. У генов MtCLE12, MtCLE34 и MtCLE35 - синонимичные и несинонимичные замены. При этом в гене MtCLE35 было выявлено наибольшее количество SNP и значения D-критерия для него составляет -0,35, самое приближенное к нулю значение, по сравнению с остальными генами, а также 2 несинонимичных на 3 синонимичные замены. Среди проанализированных «клубеньковых» генов люцерны, ген MtCLE35 по всем показателям более вариабельный по сравнению с другими изученными генами CLE.
Выявление стоп-кодона в гене MtCLE34у лабораторной линии A17, а также у трех других линий из 262 линий, данные oSNPдля которых представлены в базе HapMap,свидетельствует в пользу того, что функция этого гена не является жизненно важной для растений. Проведенная трансформация линии A17 растения M. truncatula с целью оценки эффекта сверхэкспрессии функционального гена MtCLE34, полученного от линии R108, на клубенькообразование показала, что сверхэкспрессия гена MtCLE34 не оказывает эффекта на количество образующихся клубеньков, что отличает этот ген от родственных ему «клубеньковых» генов MtCLE13, MtCLE12 и MtCLE35 – ингибиторов клубенькообразования. Таким образом, пептид MtCLE34, во-видимому, не является участникомAON.Представляет особый интерес осуществить с помощью экспериментальных подходов поиск возможных причин того, почему в ходе эволюции этот близкий гомологиндуцируемых нитратом генов CLEсои утратил способность подавлять развитие симбиотических клубеньков у люцерны.
1. Белозерова М.Ю., Ткаченко А.А., Додуева И.Е., Жуков В.А. Анализ полиморфизма генов, кодирующих CLE-пептиды и их рецепторы, у гороха посевного (Pisumsativum L.). Школа-конференция молодых ученых «Молекулярно-генетические и клеточные аспекты растительно-микробных взаимодействий»: материалы. Санкт-Петербург-Пушкин. 1-3 декабря 2017. С. 11-12.
2. Ганчева М. С., Маловичко Ю. В., Полюшкевич Л. О., Додуева И. Е., Лутова Л. А. Пептидные гормоны растений. Журнал «Физиология растений». 2019. С. 83-103.
3. Лебедева М. А., Яшенкова Я. С., Додуева И. Е., Лутова Л. А. Молекулярный диалог корня и побега с участием регуляторных пептидов и его роль в системном контроле развития растений. Журнал «ФИЗИОЛОГИЯ РАСТЕНИЙ». 2020. 67(6). С. 1–21. doi:10.31857/S0015330320060111
4. Лутова Л. А., Додуева И. Е., Лебедева М. А., Творогова В. Е. Транскрипционные факторы в генетике развития и эволюции высших растений. Журнал «ГЕНЕТИКА». 2015. 51(5). С. 539-557. doi:10.7868/S001667581503008X
5. Adhikari L., Lindstrom O. M., Markham J., Missaoui A. M. Dissecting Key Adaptation Traits in the Polyploid Perennial Medicago sativa Using GBS-SNP Mapping. Frontiers in Plant Science. 2018. 9.P. 934. doi:10.3389/fpls.2018.00934
6. Araya T., Miyamoto M., Wibowo J., Suzuki A., Kojima S., Tsuchiya Y.N., … Takahashi H. CLE-CLAVATA1 peptide-receptor signaling module regulates the expansion of plant root systems in a nitrogen-dependent manner. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2014. 111(5). P. 2029–2034. doi:10.1073/pnas.1319953111
7. Balakrishnan C.N., Edwards S.V. Nucleotide Variation, Linkage Disequilibrium and Founder-Facilitated Speciation in Wild Populations of the Zebra Finch (Taeniopygia guttata). Genetics. 2008. 181(2). P. 645–660. doi:10.1534/genetics.108.094250
8. Betsuyaku S., Sawa S., Yamada M. The Function of the CLE Peptides in Plant Development and Plant-Microbe Interactions. The Arabidopsis Book. 2011. 9. e0149. doi:10.1199/tab.0149
9. Bonhomme M., Fariello M. I., Navier H., Hajri A., Badis Y., Miteul H., … Pilet-Nayel, M.-L. A local score approach improves GWAS resolution and detects minor QTL: application to Medicago truncatula quantitative disease resistance to multiple Aphanomyces euteiches isolates. Heredity. 2019. 123(4). P. 517-531. doi:10.1038/s41437-019-0235-x
10. Boschiero C., Dai X., Lundquist PK., Roy S., de Bang T., Zhang S., Zhuang Z., Torres-Jerez I., Udvardi MK., Scheible WR., Zhao PX. MtSSPdb: the Medicago truncatula Small Secreted Peptide Database. Plant Physiol. 2020.183(1). P. 399-413.doi:10.1104/pp.19.01088
11. Bradbury P.J., Zhang Z., Kroon D.E., Casstevens T.M., Ramdoss Y., Buckler E.S. TASSEL: Software for association mapping of complex traits in diverse samples. Bioinformatics. 2007. 23(19). P. 2633-2635.doi:10.1093/bioinformatics/btm308
12. Chen S., Lang P., Chronis D., Zhang S., De Jong W.S., Mitchum M.G., Wang X. In planta processing and glycosylation of a nematode CLAVATA3/ENDOSPERM SURROUNDING REGION-like effector and its interaction with a host CLAVATA2-like receptor to promote parasitism. Plant Physiol. 2015. P. 262-72. doi:10.1104/pp.114.251637
13. Curtin S.J., Xiong Y., Michno J.-M., Campbell B.W., Stec A.O., Čermák T., … Stupar R.M. CRISPR/Cas9 and TALENs generate heritable mutations for genes involved in small RNA processing of Glycine max and Medicago truncatula. Plant Biotechnology Journal. 2017. 16(6). P. 1125–1137. doi:10.1111/pbi.12857
14. de Bang T.C., Lay K.S., Scheible W.-R., Takahashi H. Small peptide signaling pathways modulating macronutrient utilization in plants. Current Opinion in Plant Biology. 2017. 39. P. 31–39. doi:10.1016/j.pbi.2017.05.005
15. Delph L.F., Kelly J.K. On the importance of balancing selection in plants. New Phytologist. 2013. 201(1). P. 45–56. doi:10.1111/nph.12441
16. DiGennaro P., Grienenberger E., Dao T.Q., Jun J.H.,Fletcher J.C. Peptide signaling molecules CLE5 and CLE6 affect Arabidopsis leaf shape downstream of leaf patterning transcription factors and auxin. Plant Direct. 2018. 2(12). e00103. doi:10.1002/pld3.103
17. Dong W., Wang Y., Takahashi H. CLE-CLAVATA1 Signaling Pathway Modulates Lateral Root Development under Sulfur Deficiency. Plants. 2019. 8(4). P. 103. doi:10.3390/plants8040103
18. Doo M., Kim Y. Obesity: Interactions of Genome and Nutrients Intake. Preventive Nutrition and Food Science. 2015. 20(1). P. 1–7. doi:10.3746/pnf.2015.20.1.1
19. Dybowski R., Restif O., Price D.J., Mastroeni P. Inferring within-host bottleneck size: A Bayesian approach. Journal of Theoretical Biology. 2017. 435. P. 218–228. doi:10.1016/j.jtbi.2017.09.011
20. Endo S., Betsuyaku S., Fukuda H. Endogenous peptide ligand–receptor systems for diverse signaling networks in plants. Curr. Opin. Plant Biol. 2014. 21. P. 140–146. doi:10.1016/j.pbi.2014.07.011
21. Fahraeus G. The infection of clover root hairs by nodulebacteria studied by a simple glass slide technique. J. Gen. Microbiol. 1957. 16. P. 374–381.doi:10.1099/00221287-16-2-374
22. Fay J.C., Wu C.I. Hitchhiking under positive Darwinian selection. Genetics. 2000. 155(3). P. 1405-1413.
23. Ferguson B.J., Mens C., Hastwell A.H., Zhang M., Su H., Jones C.H., … Gresshoff P.M. Legume nodulation: The host controls the party. Plant, Cell & Environment. 2018. 42(1). P. 41-51. doi:10.1111/pce.13348
24. Fletcher J.C. Recent Advances in Arabidopsis CLE Peptide Signaling. Trends in Plant Science. 2020. S1360-1385(20). P. 30129-1. doi:10.1016/j.tplants.2020.04.014
25. Fu Y.X., Li W.H. Statistical Testsof Neutrality of Mutations. Centerfor Demographic and Population Genetics, University of Texas, Houston, Texas. 1992. P. 693-705.
26. Futuyma D.J., Kirkpatrick M. Evolution. 4th edition. Oxford: Sinauer Associates. 2017.
27. Gautrat P., Laffont C., Frugier F. Compact Root Architecture 2 Promotes Root Competence for Nodulation through the miR2111 Systemic Effector. Current Biology. 2020.30. P. 1–7. doi:10.1016/j.cub.2020.01.084
28. Guo X., Wang J., Gardner M., Fukuda H., Kondo Y., Etchells J.P., Wang X., Mitchum M.G. Identification of cyst nematode B-type CLE peptides and modulation of the vascular stem cell pathway for feeding cell formation, PLoSPathog. 2017. 13. P. 1–19. doi:10.1504/IJICT.2017.085458
29. Guo Y., Ni, J., Denver, R., Wang, X., & Clark, S. E. Mechanisms of Molecular Mimicry of Plant CLE Peptide Ligands by the Parasitic Nematode Globoderarostochiensis. Plant Physiology. 2011. 157(1). P. 476–484. doi:10.1104/pp.111.180554
30. Harrisson K.A., Pavlova A., Telonis-Scott M., Sunnucks. Using genomics to characterize evolutionary potential for conservation of wild populations. Evol Appl. 2014. P. 1008-1025. doi:10.1111/eva.12149
31. Hastwell A.H., de Bang T.C., Gresshoff P.M., Ferguson B.J. CLE peptide-encoding gene families in Medicago truncatula and Lotus japonicus, compared with those of soybean, common bean and Arabidopsis. Scientific Reports. 2017. 7(1). P. 9384. doi:10.1038/s41598-017-09296-w
32. Hastwell A.H., Gresshoff P.M., Ferguson B.J. Genome-wide annotation and characterization of clavata/esr (cle) peptide hormones of soybean (Glycine max) and common bean (Phaseolus vulgaris), and their orthologues of Arabidopsis thaliana. J. Exp. Bot. 2015. 66. P. 5271-5287. doi:10.1093/jxb/erv351
33. Hirakawa Y., Kondo Y., Fukuda H. TDIF peptide signaling regulates vascular stem cell proliferation via the WOX4 homeobox gene in Arabidopsis. Plant cell. 2010. P. 2618-2629.doi:10.1105/tpc.110.076083
34. Kang Y., Sakuroglu M., Krom N., Stanton-Geddes J., Wang M., Lee Y-C., Young N.D., Udvardi M. Genome-wide assocation of drought-related and biomass traits with HapMap SNPs in Medicago truncatula. Plant Cell and Environment. 2015. 38. P. 1997-2011. doi: 10.1111/pce.12520
35. Karlo M., Boschiero C., Landerslev K.G., et al. The CLE53-SUNN genetic pathway negatively regulates arbuscular mycorrhiza root colonization in Medicago truncatula. J Exp Bot. 2020. 71(16). P.4972-4984. doi:10.1093/jxb/eraa193
36. Kingsolver J.G., Diamond S.E. Phenotypic selection in natural populations: What limits directional selection? Am. Nat. 2011. 177. P. 346–357.doi:10.1086/658341
37. Kinoshita A., Betsuyaku S., Osakabe Y., Mizuno S., Nagawa S., Stahl Y., Simon R., Yamaguchi-Shinozaki K., Fukuda H., Sawa S. Rpk2 is an essential receptor-like kinase that transmits the clv3 signal in Arabidopsis. Development. 2010. 137. P. 3911–3920. doi:10.1242/dev.048199
38. Kumar S., Stecher G., Li M., Knyaz C., Tamura K. MEGA X: Molecular Evolutionary Genetics Analysis across computing platforms. Molecular Biology and Evolution. 2018. 35. P. 1547-1549. doi:10.1093/molbev/msy096
39. Laffont C., Ivanovici A., Gautrat P. et al. The NIN transcription factor coordinates CEP and CLE signaling peptides that regulate nodulation antagonistically. Nat Commun. 2020. 11. 3167. P. 1-13. doi:10.1038/s41467-020-16968-1
40. Le Marquer M., Bécard G., Frei dit Frey N. Arbuscular mycorrhizal fungi possess a CLAVATA 3/Endosperm surrounding region‐related gene that positively regulates symbiosis. New Phytologist. 2018. 222(2). P. 1030-1042. doi:10.1111/nph.15643
41. Lebedeva M., Azarakhsh M., Yashenkova Y., Lutova L. Nitrate-Induced CLE Peptide Systemically Inhibits Nodulation in Medicago truncatula. Plants (Basel). 2020. 28;9(11). P. 1456. doi:10.3390/plants9111456
42. Li G., Wang, B., Tian, Q., Wang, T., & Zhang, W.-H. Medicago truncatula ecotypes A17 and R108 differed in their response to iron deficiency. Journal of Plant Physiology. 2014. 171(8). P. 639–647. doi:10.1016/j.jplph.2013.12.018
43. Li Z., Liu D., Xia Y., Li Z., Niu N., Ma S., Wang J., Song Y., Zhang G. Identification and Functional Analysis of the CLAVATA3/EMBRYO SURROUNDING REGION (CLE) Gene Family in Wheat. Int. J. Mol. Sci. 2019. 20. P. 4319. doi:10.3390/ijms20174319
44. Lieberman B.S., Dudgeon S. An evaluation of stabilizing selection as a mechanism for stasis. Palaeogeog. Lapaeoclimat. Palaeoecol. 1996. 127. P. 229–238.
45. Lim C.W., Lee Y.W., Lee S.C., Hwang C.H. Nitrate inhibits soybean nodulation by regulating expression of CLE genes // Plant Science. 2014. 229. P. 1.doi:10.1016/j.plantsci.2014.08.014
46. Limpens E. RNA interference in Agrobacterium rhizogenes-transformed roots of Arabidopsis and Medicago truncatula. Journal of Experimental Botany. 2004. 55(399). P. 983–992. doi:10.1093/jxb/erh122
47. Liu P. Pricing Strategies of a Three-Stage Supply Chain: A New Research in the Big Data Era. Discrete Dynamics in Nature and Society. 2017. P. 1–16. doi:10.1155/2017/9024712
48. Loewe L. Negative selection. Nature Education. 2008. 1(1). P. 59.
49. Lu G., Moriyama E. Vector NTI, a balanced all-in-one sequence analysis suite. Briefings in Bioinformatics. 2004. 5(4). P. 378–388. doi:10.1093/bib/5.4.378
50. Luo S., Sun Y., Zhou X., Zhu T., Zhu L., Arfan M., … Lin H. Medicago truncatula genotypes Jemalong A17 and R108 show contrasting variations under drought stress. Plant Physiology and Biochemistry. 2016. 109. P. 190–198. doi:10.1016/j.plaphy.2016.09.019
51. Ma L.C., Wang Y.R., Liu W.X., Liu Z.P. Expression analysis of seed-specific genes in four angiosperm species with an emphasis on the unconserved expression patterns of homologous genes. Seed Sci. Res. 2013. 23. P. 223–231. doi:10.1017/S0960258513000305
52. Mens C., Hastwell A.H., Su H., Gresshoff P.M., Mathesius U., Ferguson B.J. Characterisation of Medicago truncatula CLE34 and CLE35 in nitrate and rhizobia regulation of nodulation. New Phytol. 2021. 229. P. 2525-2534. doi:10.1111/nph.17010
53. Miyawaki K., Tabata R., Sawa S. CurrOpin Evolutionarily conserved CLE peptide signaling in plant development, symbiosis, and parasitism. Plant Biol. 2013. P. 598-606. doi:10.1016/j.pbi.2013.08.008
54. Mortier V., Den Herder G., Whitford R., Van de Velde W., Rombauts S., D'Haeseleer K., Holsters M., Goormachtig S. CLE peptides control Medicago truncatula nodulation locally and systemically. Plant Physiol. 2010. P. 222-37.doi:10.1104/pp.110.153718
55. Mortier V., De Wever E., Vuylsteke M., Holsters M., Goormachtig S. Nodule numbers are governed by interaction between CLE peptides and cytokinin signaling. The Plant Journal. 2012. 70(3). P. 367–376. doi:10.1111/j.1365-313x.2011.04881.x
56. Mortier V., Fenta B. A., Kunert K., Holsters M, Goormachtig S. Identification of putative CLE peptide receptors involved in determinate nodulation on soybean. Plant Signaling and Behavior. 2011. 6(7). P. 1019-1023.doi:10.4161/psb.6.7.15575
57. Nishida H., Ito M., Miura K., Kawaguchi M., Suzaki, T. Autoregulation of nodulation pathway is dispensable for nitrate-induced control of rhizobial infection. Plant Signaling & Behavior. 2020. 26. P. 1733814. doi:10.1080/15592324.2020.1733814
58. Nishida H., Suzaki T. Two Negative Regulatory Systems of Root Nodule Symbiosis: How Are Symbiotic Benefits and Costs Balanced? Plant and Cell Physiology. 2018. 59(9). P. 1733–1738. doi:10.1093/pcp/pcy102
59. Nishida H., Tanaka S., Handa Y., Ito M., Sakamoto Y., Matsunaga S., … Suzaki T. A NIN-LIKE PROTEIN mediates nitrate-induced control of root nodule symbiosis in Lotus japonicus. Nature Communications. 2018. 9(1). P. 499. doi:10.1038/s41467-018-02831-x
60. Oelkers K., Goffard N., Weiller G. F., Gresshoff P. M., Mathesius U., Frickey T. Bioinformatic analysis of the CLE signaling peptide family. BMC Plant Biology. 2008. 8(1). P. 1. doi:10.1186/1471-2229-8-1
61. Okamoto S., Ohnishi E., Sato S., Takahashi H., Nakazono M., Tabata S., Kawaguchi M. Nod Factor/Nitrate-Induced CLE Genes that Drive HAR1-Mediated Systemic Regulation of Nodulation. Plant and Cell Physiology. 2009. 50(1). P. 67–77. doi:10.1093/pcp/pcn194
62. Okonechnikov K., Golosova O., Fursov M., et al. Unipro UGENE: a unified bioinformatics toolkit. Bioinformatics. 2012. 28. P. 1166-1167. doi:10.1093/bioinformatics/bts091
63. Reid D.E., Ferguson B.J., Gresshoff P.M. Inoculationand nitrate-induced CLE peptides of soybean control NARK-dependent nodule formation // Mol. PlantMicrobe Interact. 2011.24. P. 606.doi:10.1094/MPMI-09-10-0207
64. Rueffler C., Van Dooren Tom J.M., Olof Leimar, Abrams P. A. Disruptive selection and then what? Trends in Ecology and evolution. 2006. P. 238-245. doi:10.1016/j.tree.2006.03.003
65. Salisbury B.A., Pungliya M., Choi J.Y., Jiang R., Sun X.J., Stephens J.C. SNP and haplotype variation in the human genome. Mutation Research/Fundamental and Molecular Mechanisms of Mutagenesis. 2003. 526(1-2). P. 53–61. doi:10.1016/s0027-5107(03)00014-9
66. Sarkar A.K., Luijten M., Miyashima S., Lenhard M., Hashimoto T., Nakajima K., Scheres B., Heidstra R., Laux T. Conserved factors regulate signalling in Arabidopsis thaliana shoot and root stem cell organizers. Nature. 2007. 446. P. 811–814. doi:10.1038/nature05703
67. Schoof H., Lenhard M., Haecker A., Mayer K.F., Jürgens G., Laux T. The stem cell population of Arabidopsis shoot meristems in maintained by a regulatory loop between the CLAVATA and WUSCHEL genes. Cell. 2000. V. 100. P. 635–644. doi:10.1016/s0092-8674(00)80700-x
68. Somssich M., Je Il B., Simon R., Jackson D. CLAVATA-WUSCHEL signaling in the shoot meristem. Development 143. 2016. P. 3238–3248. doi:10.1242/dev.133645
69. Stahl Y., Wink R. H., Ingram G. C., Simon R. A Signaling Module Controlling the Stem Cell Niche in Arabidopsis Root Meristems. Current Biology. 2009. 19(11). P. 909–914. doi:10.1016/j.cub.2009.03.060
70. Stanton-Geddes J., Paape T., Epstein B., Briskine R., Yoder J., Mudge J., … Tiffin P. Candidate Genes and Genetic Architecture of Symbiotic and Agronomic Traits Revealed by Whole-Genome, Sequence-Based Association Genetics in Medicago truncatula. PLoS ONE. 2013. 8(5). e65688. doi:10.1371/journal.pone.0065688
71. Strabala T.J., O’Donnell P.J., Anne-Marie S., Charles A.D., E Jane M., Natalie N., Nieuwenhuizen N.J., Quinn B.D., Foote H.C.C., Hudson K.R. Gain-of-function phenotypes of many clavata3/esr genes, including four new family members, correlate with tandem variations in the conserved clavata3/esr domain. Plant Physiol. 2006. 140. P. 1331–1344. doi:10.1104/pp.105.075515
72. Studer A., Zhao Q., Ross-Ibarra J., Doebley J. Identification of a functional transposon insertion in the maize domestication gene tb1. Nat. Genet. 2011. 43. P. 1160–1163.doi:10.1038/ng.942
73. Suzaki T., Nishida H. Autoregulation of Legume Nodulation by Sophisticated Transcriptional Regulatory Networks. Molecular Plant. 2019. 12(9). P. 1179-1181. doi:10.1016/j.molp.2019.07.008
74. Tajima F. Statistical method for testing the neutral mutation hypothesis by DNA polymorphism. Genetics. 1989. P. 585–595.
75. Tamura K., Nei M., Kumar S. Prospects for inferring very large phylogenies by using the neighbor-joining method. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2004. 101(30). P. 11030–11035. doi:10.1073/pnas.0404206101
76. Tsikou D., Yan Z., Holt D. B., Abel N. B., Reid D. E., Madsen L. H., … Markmann K. Systemic control of legume susceptibility to rhizobial infection by a mobile microRNA. Science. 2018. 362(6411). P.233-236. doi:10.1126/science.aat6907
77. Villanea Fernando A., Safi Kristin N., Busch Jeremiah W. A general model of negative frequency dependent selection explains global patterns of human ABO Polymorphism. Plos one. 2015. 10(5). e0125003. doi:10.1371/journal.pone.0125003
78. Wang J., Kucukoglu M., Zhang L., Chen P., Decker D., Nilsson O., Jones B., Sandberg G., Zheng B. The Arabidopsis LRR-RLK, PXC, is a regulator of secondary wall formation correlated with the TDIF-PXY/TDR-WOX4 signaling pathway. Plant biology. 2013. P. 13.doi:10.1186/1471-2229-13-94
79. Wang L., Sun Z., Su C., Wang Y., Yan Q., Chen J., … Li X. A GmNINa-miR172c-NNC1 Regulatory Network Coordinates the Nodulation and Autoregulation of Nodulation Pathways in Soybean. Molecular Plant. 2019. 12(9). P. 1211-1226. doi:10.1016/j.molp.2019.06.002
80. Watterson G.A.On the number of segregating sites in genetical models without recombination. Theoretical Population Biology. 1975. 7(2). P. 256–276. doi:10.1016/0040-5809(75)90020-9
81. Whitewoods C.D. Evolution of CLE peptide signalling. Semin Cell Dev Biol. 2020. 109. P. 12-19.doi:10.1016/j.semcdb.2020.04.022
82. Wray G.A. Genomics and the Evolution of Phenotypic Traits. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics. 2013. 44(1). P. 51–72. doi:10.1146/annurev-ecolsys-110512-135828
83. Yadav R.K., Perales M., Gruel J. et al. WUSCHEL protein movement mediates stem cell homeostasis in the Arabidopsis shoot apex. Genes and Development. 2011. 25. P. 2025–2030. doi:10.7868/S001667581503008X
84. Yamaguchi Y.L., Ishida T., Sawa S. CLE peptides and their signaling pathways in plant development. J. Exp. Bot. 2016. 67. P. 4813–4826. doi:10.1093/jxb/erw208
85. Yu L.-X., Zheng P., Bhamidimarri S., Liu X.-P., Main D. The Impact of Genotyping-by-Sequencing Pipelines on SNP Discovery and Identification of Markers Associated with Verticillium Wilt Resistance in Autotetraploid Alfalfa (Medicago sativa L.). Frontiers in Plant Science. 2017. 8. P. 89. doi:10.3389/fpls.2017.00089
86. Zhang H., Lin X., Han Z., Qu L.-J., Chai J. Crystal structure of PXY-TDIF complex reveals a conserved recognition mechanism among CLE peptide-receptor pairs. Cell Research. 2016. 26(5). P. 543–555. doi:10.1038/cr.2016.45
87. Zheng Y., Xu F., Li Q., Wang G., Liu N., Gong Y., Li L., Chen ZH., Xu S. QTL Mapping Combined With Bulked Segregant Analysis Identify SNP Markers Linked to Leaf Shape Traits in Pisum sativum Using SLAF Sequencing. Front Genet. 2018. 5(9). P. 615. doi:10.3389/fgene.2018.00615