СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
ВВЕДЕНИЕ
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Формирование сердца в эмбриональном периоде.
1.2. Развитие аортального клапана
1.3. Развитие двухстворчатого аортального клапана
1.4. Генетические механизмы формирования бикуспидального аортального клапана
(БАК)
1.5. Аортальный стеноз
1.6. Механизмы оссификации и кальцификации тканей
1.7. Молекулярные механизмы кальцификации.
1.8. Эндотелиально-мезенхимный переход..
1.9. Сигнальный путь Notch и его компоненты
1.10. Участие сигнального пути Notch в развитии кальцификации аортального
клапана
2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
2.1. Материалы
2.1.1. Клеточные культуры
2.1.2. Штаммы бактерий
2.1.3. Плазмиды.
2.1.4. Праймеры
2.2. Методы.
2.2.1. Трансформация бактерий
2.2.2. Выделение плазмидной ДНК
2.2.3. Производство лентивирусных частиц
2.2.5. Магнитный сортинг CD31-позитивных клеток.
2.2.6. Культивирование интерстициальных и эндотелиальных клеток аортального
клапана человека
2.2.7. Сокультивирование интерстициальных клеток аортального клапана с
эндотелиальными клетками
2.2.8. Трансдукция интерстициальных клеток аортального клапана
лентивирусными частицами
2.2.9. Остеогенная дифференцировка интерстициальных клеток клапана аорты ....38
2.2.10. Окраска дифференцированных в остеогенном направлении
интерстициальных клеток аортального клапана
2.2.11. Выделение РНК из клеточных культур
2.2.12. Обратная транскрипция
2.2.13. ПЦР в реальном времени.
2.2.14. Статистическая обработка данных и построение графиков..............................41
3. РЕЗУЛЬТАТЫ
3.1. Динамика экспрессии остеогенов при индукции остеогенной дифференцировки и
активации сигнального пути Notch
3.2. Сокультивирование эндотелиальных и интерстициальных клеток клапана аорты
усиливает остеогенную дифференцировку клеток и активирует Notch.............................45
3.3. Активация сигнального пути Notch ведет к дозозависимому усилению
остеогенной дифференцировки клеток
3.4. Различия между группами пациентов и здоровых людей по уровню активности
сигнального пути Notch и про-остеогенным маркерам коллагену и периостину .............50
4. ОБСУЖДЕНИЕ
ВЫВОДЫ
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ...
Кальцифицированный стеноз аортального клапана является третьей ведущей причиной сердечно-сосудистых заболеваний (Iung et al., 2003). Единственным существующим на сегодняшний день вариантом лечения является операция на сердце с имплантацией протеза клапана.
Риск возникновения кальцификации сердечного клапана увеличивается с возрастом (Stewart et al., 1997). Главной особенностью заболевания является прогрессивная минерализация ткани клапана. Механизмы, лежащие в основе этого процесса, остаются неясными, однако в последние годы стало понятно, что патологическая минерализация тканей сердца и сосудов имеет некоторые сходства с физиологическим процессом образования кости (Mathieu et al., 2014).
Створки аортального клапана состоят из интерстициальных клеток (ИК) и эндотелиальных клеток клапана (ЭК). Полагают, что интерстициальные клетки являются основными функциональными единицами в клапане, которые подвергаются минерализации (RabkinAikawa et al., 2004). Однако, эндотелиальные клетки также могут принимать активное участие в минерализации (Hjortnaes et al., 2015; Cheng et al., 2013; Yao et al., 2013). В последнее десятилетие стало понятно, что прогрессирующий фиброз клапана и минерализация являются активными, а не пассивными процессами.
Notch – это ключевой сигнальный путь, играющий обширную роль в развитии, обеспечивающий перекрестное сообщение между различными типами клеток и их физиологической дифференцировкой (Andersson et al., 2011), и также он особенно важен в процессах формирования сердечно-сосудистой системы. Все рецепторы Notch (Notch1-4) и лиганды (Jag1 и 2 и Dll1, 3 и 4) экспрессируются в сосудистой системе. Активация Notchрецепторов требует их связывания с трансмембранным лигандом, представленным на соседних клетках. Это связывание вызывает серию последовательных протеолитических расщеплений в рецепторе, что в конечном итоге приводит к высвобождению активированного внутриклеточного домена рецептора Notch (Notch intracellular domain – NICD), который является транскрипционно активной формой Notch. NICD транслоцируется в ядро, где он регулирует широкий спектр генов-мишеней (Andersson et al., 2011).6
Существующие данные о роли Notch в кальцификации аортального клапана довольно противоречивы. Notch1 может ингибировать кальцификацию аортального клапана (Acharya et al., 2011). Однако имеются противоположные данные, свидетельствующие о том, что Notch1 может поддерживать остеогенную дифференцировку в человеческих ИК (Zeng et al., 2013). Гаплонедостаточность по NOTCH1 способствует, согласно исследованиям одной группы, экспрессии про-остеогеннов и генов, отвечающих за развитие воспалительных процессов (Theodoris et al., 2015).
Таким образом, целью данной работы стало изучить роль сигнального пути Notch в кальцификации аортального клапана человека.
Для достижения указанной цели, были поставлены следующие экспериментальные задачи:
• Выявить гены, экспрессирующиеся на начальных этапах остеогенной дифференцировки
• Изучить влияние межклеточных взаимодействий между эндотелиальными и интерстициальными клетками на остеогенную дифференцировку
• Изучить эффект активации Notch на остеогенную дифференцировку интерстициальных клеток аортального клапана
• Выяснить, существуют ли различия в уровне активации сигнального пути Notch и остеогенных генов между пациентами с кальцификацией аортального клапана и здоровыми людьми
• Сокультивирование интерстициальных клеток клапана аорты с эндотелиальными значительно усиливает степень остеогенной дифференцировки
• Активация сигнального пути Notch приводит к дозозависимому усилению остеогенной дифференцировки интерстициальных клеток аортального клапана
• Обнаружены различия между группами пациентов и здоровых людей по уровню активности сигнального пути Notch и остеогенным маркерам коллагену и периостину
Кэмм. А. Джон. 2011. Болезни сердца и сосудов: Руководство Европейского общества
кардиологов. Под ред. Е.В.Шляхто. М.: ГЭОТАР-Медиа., 780-790.
Новиков В.Н., Новикова В.Н. 2015. Клапанные Пороки Сердца. СПб.: СпецЛит., 7-26.
Орловский П..И., Гриценко В.В., Юхнев А.Д., Евдокимов С.В., Гавриленков В.И. 2007.
Искусственные клапаны сердца. Под ред. Ю.Л.Шевченко. СПб.: ЗАО “ОЛМА Медиа
Групп”, 9-21.
Abu-Issa, R., Kirby, M. L. 2007. Heart field: from mesoderm to heart tube. Annual Review of Cell
and Developmental Biology, 23(1), 45–68.
Acharya, A., Hans, C. P., Koenig, S. N., Nichols, H. A., Galindo, C. L., Garner, H. R., … Garg, V.
2011. Inhibitory role of Notch1 in calcific aortic valve disease. PloS One, 6(11), e27743.
Aikawa, E., Whittaker, P., Farber, M., Mendelson, K., Padera, R. F., Aikawa, M., Schoen, F. J.
2006. Human semilunar cardiac valve remodeling by activated cells from fetus to adult:
implications for postnatal adaptation, pathology, and tissue engineering. Circulation, 113(10),
1344–52.
Akiyama, H. 2002. The transcription factor Sox9 has essential roles in successive steps of the
chondrocyte differentiation pathway and is required for expression of Sox5 and Sox6. Genes
& Development, 16(21), 2813–2828.
Andelfinger, G., Tapper, A. R., Welch, R. C., Vanoye, C. G., George, A. L., Benson, D. W. 2002.
KCNJ2 mutation results in Andersen syndrome with sex-specific cardiac and skeletal muscle
phenotypes. American Journal of Human Genetics, 71(3), 663–8.
Andersson, E. R., Sandberg, R., Lendahl, U. 2011. Notch signaling: simplicity in design, versatility
in function. Development (Cambridge, England), 138(17), 3593–612.
Artavanis-Tsakonas, S., Rand, M. D., Lake, R. J. 1999. Notch signaling: cell fate control and signal
integration in development. Science (New York, N.Y.), 284(5415), 770–6.
Bostrom, K. I., Rajamannan, N. M., Towler, D. A. 2011. The Regulation of Valvular and Vascular
Sclerosis by Osteogenic Morphogens. Circulation Research, 109(5), 564–577.
Boström, K. I., Rajamannan, N. M., Towler, D. A. 2011. The regulation of valvular and vascular
sclerosis by osteogenic morphogens. Circulation Research, 109(5), 564–77.58
Boström, K., Watson, K. E., Horn, S., Wortham, C., Herman, I. M., Demer, L. L. 1993. Bone
morphogenetic protein expression in human atherosclerotic lesions. Journal of Clinical
Investigation, 91(4), 1800–1809.
Braverman, A. C., Güven, H., Beardslee, M. A., Makan, M., Kates, A. M., Moon, M. R. 2005. The
bicuspid aortic valve. Current Problems in Cardiology, 30(9), 470–522.
Briot, A., Bouloumié, A., Iruela-Arispe, M. L. 2016. Notch, lipids, and endothelial cells. Current
Opinion in Lipidology, 27(5), 513–20.
Brou, C., Logeat, F., Gupta, N., Bessia, C., LeBail, O., Doedens, J. R., … Israël, A. 2000. A novel
proteolytic cleavage involved in Notch signaling: the role of the disintegrin-metalloprotease
TACE. Molecular Cell, 5(2), 207–16.
Brownstein, A. J., Ziganshin, B. A., Kuivaniemi, H., Body, S. C., Bale, A. E., Elefteriades, J. A.
2017. Genes Associated with Thoracic Aortic Aneurysm and Dissection: An Update and
Clinical Implications. Aorta (Stamford, Conn.), 5(1), 11–20.
Butcher, J. T., Mahler, G. J., Hockaday, L. A. 2011. Aortic valve disease and treatment: the need
for naturally engineered solutions. Advanced Drug Delivery Reviews, 63(4–5), 242–68.
Butcher, J. T., Nerem, R. M. 2007. Valvular endothelial cells and the mechanoregulation of
valvular pathology. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B,
Biological Sciences, 362(1484), 1445–57.
Byon, C. H., Sun, Y., Chen, J., Yuan, K., Mao, X., Heath, J. M., … Chen, Y. 2011. Runx2-
upregulated receptor activator of nuclear factor κB ligand in calcifying smooth muscle cells
promotes migration and osteoclastic differentiation of macrophages. Arteriosclerosis,
Thrombosis, and Vascular Biology, 31(6), 1387–96.
Caira, F. C., Stock, S. R., Gleason, T. G., McGee, E. C., Huang, J., Bonow, R. O., … Rajamannan,
N. M. 2006. Human degenerative valve disease is associated with up-regulation of lowdensity lipoprotein receptor-related protein 5 receptor-mediated bone formation. Journal of
the American College of Cardiology, 47(8), 1707–12.
Canfield, A. E., Sutton, A. B., Hoyland, J. A., Schor, A. M. 1996. Association of thrombospondin-
1 with osteogenic differentiation of retinal pericytes in vitro. Journal of Cell Science, 109 (
Pt 2), 343–53. Retrieved from http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8838658
Capulli, M., Rufo, A., Teti, A., Rucci, N. 2009. Global transcriptome analysis in mouse calvarial59
osteoblasts highlights sets of genes regulated by modeled microgravity and identifies a
“mechanoresponsive osteoblast gene signature.” Journal of Cellular Biochemistry, 107(2),
240–252.
Chakraborty, S., Combs, M. D., Yutzey, K. E. 2010. Transcriptional regulation of heart valve
progenitor cells. Pediatric Cardiology, 31(3), 414–21.
Chang, K., Weiss, D., Suo, J., Vega, J. D., Giddens, D., Taylor, W. R., Jo, H. 2007. Bone
morphogenic protein antagonists are coexpressed with bone morphogenic protein 4 in
endothelial cells exposed to unstable flow in vitro in mouse aortas and in human coronary
arteries: role of bone morphogenic protein antagonists in inflammation and atherosclerosis.
Circulation, 116(11), 1258–66.
Chen, D., Harris, M. A., Rossini, G., Dunstan, C. R., Dallas, S. L., Feng, J. Q., … Harris, S. E.
1997. Bone morphogenetic protein 2 (BMP-2) enhances BMP-3, BMP-4, and bone cell
differentiation marker gene expression during the induction of mineralized bone matrix
formation in cultures of fetal rat calvarial osteoblasts. Calcified Tissue International, 60(3),
283–90.
Chen, J., Ryzhova, L. M., Sewell-Loftin, M. K., Brown, C. B., Huppert, S. S., Baldwin, H. S.,
Merryman, W. D. 2015. Notch1 Mutation Leads to Valvular Calcification Through Enhanced
Myofibroblast MechanotransductionSignificance. Arteriosclerosis, Thrombosis, and
Vascular Biology, 35(7), 1597–1605.
Cheng, S.-L., Shao, J.-S., Behrmann, A., Krchma, K., Towler, D. A. 2013. Dkk1 and MSX2-Wnt7b
signaling reciprocally regulate the endothelial-mesenchymal transition in aortic endothelial
cells. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology, 33(7), 1679–89.
Cobo, T., Viloria, C. G., Solares, L., Fontanil, T., González-Chamorro, E., De Carlos, F., …
Obaya, A. J. 2016. Role of Periostin in Adhesion and Migration of Bone Remodeling Cells.
Plos One, 11(1), e0147837.
De Strooper, B., Annaert, W., Cupers, P., Saftig, P., Craessaerts, K., Mumm, J. S., … Kopan, R.
1999. A presenilin-1-dependent gamma-secretase-like protease mediates release of Notch
intracellular domain. Nature, 398(6727), 518–22.
Demer, L. L., Tintut, Y. 2008. Vascular calcification: pathobiology of a multifaceted disease.
Circulation, 117(22), 2938–48.60
Demer, L. L., Tintut, Y. 2014. Inflammatory, metabolic, and genetic mechanisms of vascular
calcification. PubMed Commons. Arterioscler Thromb Vasc Biol., 34(4), 715–723.
Dietz, H. C., Pyeritz, R. E. 1995. Mutations in the human gene for fibrillin-1 (FBN1) in the Marfan
syndrome and related disorders. Human Molecular Genetics, 4 Spec No, 1799–809.
Egan, K. P., Kim, J.-H., Mohler, E. R., Pignolo, R. J. 2011. Role for circulating osteogenic
precursor cells in aortic valvular disease. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular
Biology, 31(12), 2965–71.
Engin, F., Yao, Z., Yang, T., Zhou, G., Bertin, T., Jiang, M. M., … Lee, B. 2008. Dimorphic effects
of Notch signaling in bone homeostasis. Nature Medicine, 14(3), 299–305.
Fedak, P. W. M., de Sa, M. P. L., Verma, S., Nili, N., Kazemian, P., Butany, J., … David, T. E.
2003. Vascular matrix remodeling in patients with bicuspid aortic valve malformations:
implications for aortic dilatation. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery,
126(3), 797–806.
Friedman, T., Mani, A., Elefteriades, J. A. 2008. Bicuspid aortic valve: clinical approach and
scientific review of a common clinical entity. Expert Review of Cardiovascular Therapy,
6(2), 235–48.
Fuery, M. A., Liang, L., Kaplan, F. S., Mohler, E. R. 2017. Vascular ossification: Pathology,
mechanisms, and clinical implications. Bone, (2016).
Garg, V. 2006. Insights into the genetic basis of congenital heart disease. Cellular and Molecular
Life Sciences : CMLS, 63(10), 1141–8.
Garg, V., Muth, A. N., Ransom, J. F., Schluterman, M. K., Barnes, R., King, I. N., … Srivastava,
D. 2005. Mutations in NOTCH1 cause aortic valve disease. Nature, 437(7056), 270–4.
Girdauskas, E., Geist, L., Disha, K., Kazakbaev, I., Groß, T., Schulz, S., … Kurth, I. 2017. Genetic
abnormalities in bicuspid aortic valve root phenotype: preliminary results. European Journal
of Cardio-Thoracic Surgery : Official Journal of the European Association for CardioThoracic Surgery, 52(1), 156–162.
Girdauskas, E., Schulz, S., Borger, M. A., Mierzwa, M., Kuntze, T. 2011. Transforming growth
factor-beta receptor type II mutation in a patient with bicuspid aortic valve disease and
intraoperative aortic dissection. The Annals of Thoracic Surgery, 91(5), e70-1.61
Giusti, B., Sticchi, E., De Cario, R., Magi, A., Nistri, S., Pepe, G. 2017. Genetic bases of bicuspid
aortic valve: The contribution of traditional and high-throughput sequencing approaches on
research and diagnosis. Frontiers in Physiology, 8(AUG), 1–12.
Goldbarg, S. H., Elmariah, S., Miller, M. A., Fuster, V. 2007. Insights Into Degenerative Aortic
Valve Disease. Journal of the American College of Cardiology, 50(13), 1205–1213.
Grego-Bessa, J., Luna-Zurita, L., del Monte, G., Bolós, V., Melgar, P., Arandilla, A., … de la
Pompa, J. L. 2007. Notch signaling is essential for ventricular chamber development.
Developmental Cell, 12(3), 415–29.
Gridley, T. 2010. Notch Signaling in the Vasculature (pp. 277–309).
Guerraty, M., Mohler, E. R. 2007. Models of Aortic Valve Calcification. Journal of Investigative
Medicine, 55(6), 278–283.
Guo, D.-C., Grove, M. L., Prakash, S. K., Eriksson, P., Hostetler, E. M., LeMaire, S. A., …
Milewicz, D. M. 2016. Genetic Variants in LRP1 and ULK4 Are Associated with Acute
Aortic Dissections. American Journal of Human Genetics, 99(3), 762–769.
Guo, D.-C., Pannu, H., Tran-Fadulu, V., Papke, C. L., Yu, R. K., Avidan, N., … Milewicz, D. M.
2007. Mutations in smooth muscle α-actin (ACTA2) lead to thoracic aortic aneurysms and
dissections. Nature Genetics, 39(12), 1488–1493.
Guo, J., Liu, M., Yang, D., Bouxsein, M. L., Saito, H., Galvin, R. J. S., … Kronenberg, H. M. 2010.
Suppression of Wnt Signaling by Dkk1 Attenuates PTH-Mediated Stromal Cell Response
and New Bone Formation. Cell Metabolism, 11(2), 161–171.
Hjortnaes, J., Camci-Unal, G., Hutcheson, J. D., Jung, S. M., Schoen, F. J., Kluin, J., …
Khademhosseini, A. 2015. Directing valvular interstitial cell myofibroblast-like
differentiation in a hybrid hydrogel platform. Advanced Healthcare Materials, 4(1), 121–30.
Hjortnaes, J., Shapero, K., Goettsch, C., Hutcheson, J. D., Keegan, J., Kluin, J., … Aikawa, E.
2015. Valvular interstitial cells suppress calcification of valvular endothelial cells.
Atherosclerosis, 242(1), 251–260.
Hruska, K. A., Mathew, S., Saab, G. 2005. Bone Morphogenetic Proteins in Vascular Calcification.
Circulation Research, 97(2), 105–114.
Hunt, J. L., Fairman, R., Mitchell, M. E., Carpenter, J. P., Golden, M., Khalapyan, T., … Mohler,62
E. R. 2002. Bone formation in carotid plaques: a clinicopathological study. Stroke, 33(5),
1214–9.
Hutcheson, J. D., Chen, J., Sewell-Loftin, M. K., Ryzhova, L. M., Fisher, C. I., Su, Y. R., Merryman,
W. D. 2013. Cadherin-11 regulates cell-cell tension necessary for calcific nodule formation
by valvular myofibroblasts. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology, 33(1), 114–
20.
Ignatieva, E., Kostina, D., Irtyuga, O., Uspensky, V., Golovkin, A., Gavriliuk, N., … Malashicheva,
A. 2017. Mechanisms of Smooth Muscle Cell Differentiation Are Distinctly Altered in
Thoracic Aortic Aneurysms Associated with Bicuspid or Tricuspid Aortic Valves. Frontiers
in Physiology, 8.
Ignatius, A., Blessing, H., Liedert, A., Schmidt, C., Neidlingerwilke, C., Kaspar, D., … Claes, L.
2005. Tissue engineering of bone: effects of mechanical strain on osteoblastic cells in type I
collagen matrices. Biomaterials, 26(3), 311–318.
Irtyuga, O., Malashicheva, A., Zhiduleva, E., Freylikhman, O., Rotar, O., Bäck, M., … Moiseeva,
O. 2017. NOTCH1 Mutations in Aortic Stenosis: Association with
Osteoprotegerin/RANK/RANKL. BioMed Research International, 2017, 1–10.
Iso, T., Kedes, L., Hamamori, Y. 2003. HES and HERP families: Multiple effectors of the notch
signaling pathway. Journal of Cellular Physiology, 194(3), 237–255.
Itoh, M., Kim, C.-H., Palardy, G., Oda, T., Jiang, Y.-J., Maust, D., … Chitnis, A. B. 2003. Mind
bomb is a ubiquitin ligase that is essential for efficient activation of Notch signaling by Delta.
Developmental Cell, 4(1), 67–82.
Iung, BIung B, Baron G, Butchart EG, Delahaye F, Gohlke-Bärwolf C, Levang OW, Tornos P,
Vanoverschelde JL, Vermeer F, Boersma E, Ravaud P, V. A. 2003. A prospective survey of
patients with valvular heart disease in Europe: The Euro Heart Survey on Valvular Heart
Disease. - PubMed - NCBI.
Jahnen-Dechent, W., Heiss, A., Schäfer, C., Ketteler, M. 2011. Fetuin-A regulation of calcified
matrix metabolism. Circulation Research, 108(12), 1494–509.
Jarriault, S., Brou, C., Logeat, F., Schroeter, E. H., Kopan, R., Israel, A. 1995. Signalling
downstream of activated mammalian Notch. Nature, 377(6547), 355–8.
Jensen, E. D., Gopalakrishnan, R., Westendorf, J. J. 2010. Regulation of gene expression in63
osteoblasts. BioFactors, 36(1), NA-NA.
Jeziorska, M., McCollum, C., Wooley, D. E. 1998. Observations on bone formation and
remodelling in advanced atherosclerotic lesions of human carotid arteries. Virchows Archiv :
An International Journal of Pathology, 433(6), 559–65.
Johnson, R. C., Leopold, J. A., Loscalzo, J. 2006. Vascular calcification: pathobiological
mechanisms and clinical implications. Circulation Research, 99(10), 1044–59.
Kaden, J. J., Reinöhl, J. O., Blesch, B., Brueckmann, M., Haghi, D., Borggrefe, M., … Ortlepp, J.
R. 2007. Systemic and local levels of fetuin-A in calcific aortic valve stenosis. International
Journal of Molecular Medicine, 20(2), 193–7.