Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Оптимизация методов in silicoгенотипирования по аллелям генов главного комплекса гистосовместимости человека

Работа №129715

Тип работы

Дипломные работы, ВКР

Предмет

биология

Объем работы31
Год сдачи2019
Стоимость4285 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
16
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


Введение 3
2. Обзор литературы 5
2.1 Механизм функционирования ГКГС 5
2.2 История открытия и изучения ГКГС 8
2.3 Молекулярно-генетические методы типирования 9
2.3.1 Генотипирование с помощью олигонуклеотидных зондов 10
2.3.2 Праймер-специфичное генотипирование 10
2.3.3 Генотипирование, основанное на секвенировании 11
2.4 Методы генотипирования in silico 11
2.4.1 Методы генотипирования по данным микрочипов 12
2.4.4.1 Athlates 13
2.4.2.2 HLA-LA 14
3. Материал и методы 15
3.1 Подготовка данных и генотипирование программой Athlates. 17
3.2 Подготовка данных и генотипирование программой HLA-LA 18
4. Результаты и обсуждение 19
4.1 Генотипирование с помощью программы Athlates 19
4.2 Генотипирование с помощью программы HLA-LA 20
4.3 Сравнение программ генотипирования по аллелям генов ГКГС 22
5. Заключение 24
Список литературы 25
Приложение 28

Главный комплекс гистосовместимости человека (ГКГС) или человеческие лейкоцитарные антигены - это комплекс трансмембранных белков, являющийся ключевым в распознавании чужеродных молекул и формировании иммунного ответа. Белки комплекса кодируются более чем 200 генами, которые располагаются на 6 хромосоме. Основная функция ГКГС - презентация антигенов на поверхности клеток для их последующего распознавания Т-лимфоцитами.
Существуют три класса молекул ГКГС. Молекулы ГКГС класса I отвечают за систему распознавания свой - чужой. При помощи молекул класса I на поверхность клеток выносятся аутоантигены, при заражении - вирусные антигены, антигены некоторых внутриклеточных бактерий и опухолевых клеток. Молекулы класса II отвечают за презентацию внеклеточных бактериальных антигенов, токсинов, аллергенов и т.д., и они присутствуют в основном у профессиональных антиген-презентирующих клеток (таких как дендритные клетки и В-лимфоциты). Гены ГКГС III класса кодируют некоторые элементы системы комплемента.
Так как белки ГКГС играю важную роль в иммунной системе, гены, кодирующие эти белки, характеризуются очень высоким полиморфизмом: количество обнаруженных аллелей отдельных генов превышает 10 тысяч. Кроме того, различные аллели входящих в него генов ассоциированы со многими заболеваниями - такими как, например, диабет 2 типа, гепатит В, различные виды рака. Генотипирование по аллелям генов ГКГС проводится для оценки возможности трансплантации органов, так как молекулы данного комплекса определяют гистосовместимость. По этим причинам задача генотипирования образцов по аллелям генов ГКГС является важным этапом диагностики заболеваний, трансплантации органов и поиска новых локусов, сцепленных с заболеваниями.
Из-за множественного аллелизма задача генотипирования аллелей генов ГКГС методами in silicoсильно осложняется, начиная с этапа секвенирования и выравнивания и заканчивая собственно генотипированием. Разработан ряд программ для in silico генотипирования человеческих образцов по аллелям генов ГКГС, но не существует оптимального протокола. Таким образом, для получения качественных результатов необходимо оптимизировать процесс обработки данных и, собственно, генотипирования. В данной работе были протестированы различные методики обработки данных и in silico генотипирования образцов полногеномного секвенирования по аллелям генов ГКГС, а также разработан оптимальный алгоритм и методика, позволяющие значительно улучшить качество генотипирования, проводимого в рамках различных исследований. В настоящее время эта методика применяется для генотипирования образцов проекта "Российские Геномы".
Целью работы является оптимизация методов in silicoгенотипирования образцов полногеномного секвенирования по аллелям генов ГКГС.
Задачи:
1. Подготовка данных полногеномного секвенирования для генотипирования комплекса генов гистосовместимости (выравнивание прочтений и последующее выделение участка 6 хромосомы с исследуемыми генами).
2. Проведение in silicoгенотипирования при помощи специализированных программ.
3. Сравнение работы различных программ типирования и выравнивания, выбор наиболее точного метода.
4. Анализ результатов генотипирования по аллелям генов ГКГС.

Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


В результате данной работы была проведена оценка двух методов in silico генотипирования образцов по аллелям генов ГКГС, а именно сравнение результатов работы программ Athlates и HLA-LA с результатами молекулярного типирования. Также было проведено сравнение результатов генотипирования в зависимости от выбора программ для первичного и вторичного выравнивания прочтений на базу данных генов ГКГС. Из полученных результатов следует, что генотипирование главного комплекса гистосовместимости человека программными методами на основе данных полногеномного секвенирования является сложной проблемой и требует тщательного тестирования для получения достоверных результатов.
В ходе представленной работы:
1. Были выявлены совместимые и несовместимые (BWA на этапе 1 + Athlates, bowtie2 на этапе 3 + Athlates) комбинации программ.
2. По результатам генотипирования можно предположить, что использование различных программ для вторичного выравнивания не влияет на качество генотипирования
3. Найдено наиболее оптимальное и точное сочетание программ BWA для выравнивания результатов полногеномного секвенирования и HLA-LA для определения аллелей генов ГКГС. Это сочетание программ было выбрано по следующим причинам:
• самая высокая точность генотипирования среди всех проверяемых комбинаций методов;
• доступна информация о степени достоверности генотипов, вычисляемая HLA- LA, которая может использоваться для более или менее строгой фильтрации результатов;
• на вход программе подаются результаты полногеномного выравнивания, то есть нет необходимости в дополнительных этапах обработки данных;
• программа активно разрабатывается и усовершенствуется.
Эти программы будут использоваться для генотипирования образцов по ГКГС в текущих и планируемых проектах, таких как «Российские Геномы» и полноэкзомный анализ ассоциаций инфицирования вирусом гепатита В.



1. Alberts B, Johnson A, Lewis J, et al. Molecular Biology of the Cell. 4th edition. New York: Garland Science; 2002. T Cells and MHC Proteins. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK26926/
2. Blees, A., Januliene, D., Hofmann, T., Koller, N., Schmidt, C., Trowitzsch, S., ... Tampd, R. (2017). Structure of the human MHC-I peptide-loading complex. Nature, 551(7681), 525-528.https://doi.org/10.1038/nature24627
3. Blum, J. S., Wearsch, P. A., & Cresswell, P. (2013). Pathways of antigen processing. Annu¬al Review of Immunology, 31, 443-473. https://doi.org/10.1146/annurev-immunol-032712- 095910
4. Browning, S. R., & Browning, B. L. (2007). Rapid and accurate haplotype phasing and missing-data inference for whole-genome association studies by use of localized haplotype clustering. American Journal of Human Genetics, 81(5), 1084-1097.
https://doi.org/10.1086/521987
5. Charles A Janeway, J., Travers, P., Walport, M., & Shlomchik, M. J. (2001). The major his-tocompatibility complex and its functions. Retrieved from https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK27156/
6. Choo, S. Y. (2007). The HLA system: genetics, immunology, clinical testing, and clinical implications. Yonsei Medical Journal, 48(1), 11-23.
https://doi.org/10.3349/ymj .2007.48.1.11
7. Dalva, K., & Beksac, M. (2014). HLA Typing with Sequence-Specific Oligonucleotide Primed PCR (PCR-SSO) and Use of the LuminexTM Technology. In Methods in molecular biology (Clifton, N.J.) (Vol. 1109, pp. 87-99). https://doi.org/10.1007/978-1-4614-9437-9_6
8. Dausset, J. (1958). Iso-leuco-anticorps. Acta Haematologica, 20(1-4), 156-166. https://doi.org/10.1159/000205478
9. Dilthey, A. T., Moutsianas, L., Leslie, S., & McVean, G. (2011). HLA*IMP—an integrated framework for imputing classical HLA alleles from SNP genotypes. Bioinformatics, 27(7), 968-972. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btr061
10. Dilthey, A. T., Moutsianas, L., Leslie, S., & McVean, G. (2011). HLA*IMP—an integrated framework for imputing classical HLA alleles from SNP genotypes. Bioinformatics, 27(7), 968-972. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btr061
11. Dilthey, A. T., Moutsianas, L., Leslie, S., & McVean, G. (2011). HLA*IMP—an integrated framework for imputing classical HLA alleles from SNP genotypes. Bioinformatics, 27(7), 968-972. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btr061
12. Dilthey, A. T., Gourraud, P.-A., Mentzer, A. J., Cereb, N., Iqbal, Z., & McVean, G. (2016). High-Accuracy HLA Type Inference from Whole-Genome Sequencing Data Using Popula-tion Reference Graphs. PLoS Computational Biology, 12(10), e1005151.
https://doi.org/10.1371/journal.pcbi.1005151
13. Dunckley, H. (2012). HLA Typing by SSO and SSP Methods. https://doi.org/10.1007/978- 1-61779-842-9_2
14. Dunckley, H. (2012). HLA Typing by SSO and SSP Methods. https://doi.org/10.1007/978- 1-61779-842-9_2
15. Dunckley, H. (2012). HLA Typing by SSO and SSP Methods. In Methods in molecular bi-ology (Clifton, N.J.) (Vol. 882, pp. 9-25). https://doi.org/10.1007/978-1-61779-842-9_2
16. Gough, S. C. L., & Simmonds, M. J. (2007). The HLA Region and Autoimmune Disease: Associations and Mechanisms of Action. Current Genomics, 8(7), 453-465.
https://doi.org/10.2174/138920207783591690
17. Horton, R., Wilming, L., Rand, V., Lovering, R. C., Bruford, E. A., Khodiyar, V. K., ... Beck, S. (2004). Gene map of the extended human MHC. Nature Reviews Genetics, 5(12), 889-899. https://doi.org/10.1038/nrg1489
18. Hughes, E. A., Hammond, C., & Cresswell, P. (1997). Misfolded major histocompatibility complex class I heavy chains are translocated into the cytoplasm and degraded by the pro- teasome. Proceedings of the National Academy of Sciences, 94(5), 1896-1901. https://doi.org/10.1073/pnas.94.5.1896
19. Jia, X., Han, B., Onengut-Gumuscu, S., Chen, W.-M., Concannon, P. J., Rich, S. S., ... de Bakker, P. I. W. (2013). Imputing amino acid polymorphisms in human leukocyte antigens. PloS One, 8(6), e64683. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0064683
20. Karnes, J. H., Shaffer, C. M., Bastarache, L., Gaudieri, S., Glazer, A. M., Steiner, H. E., ... Roden, D. M. (2017). Comparison of HLA allelic imputation programs. PloS One, 12(2), e0172444. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0172444
21. Kiyotani, K., Mai, T. H., & Nakamura, Y. (2017). Comparison of exome-based HLA class I genotyping tools: identification of platform-specific genotyping errors. Journal of Human Genetics, 62(3), 397-405. https://doi.org/10.1038/jhg.2016.141
22. Koopmann, J. O., Albring, J., Huter, E., Bulbuc, N., Spee, P., Neefjes, J., ... Momburg, F. (2000). Export of antigenic peptides from the endoplasmic reticulum intersects with retro-grade protein translocation through the Sec61p channel. Immunity, 13(1), 117-127. Re-trieved from http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10933400
23. Langmead, B., & Salzberg, S. L. (2012). Fast gapped-read alignment with Bowtie 2. Nature Methods, 9(4), 357-359. https://doi.org/10.1038/nmeth.1923
24. Lee, W.-P., Stromberg, M. P., Ward, A., Stewart, C., Garrison, E. P., & Marth, G. T. (2014). MOSAIK: A Hash-Based Algorithm for Accurate Next-Generation Sequencing Short-Read Mapping. PLoS ONE, 9(3), e90581. https://doi.org/10.1371/JOURNAL.PONE.0090581
25. Leggett, R. M., Ramirez-Gonzalez, R. H., Clavijo, B. J., Waite, D., & Davey, R. P. (2013). Sequencing quality assessment tools to enable data-driven informatics for high throughput genomics. Frontiers in Genetics, 4, 288. https://doi.org/10.3389/fgene.2013.00288
26. Li, H., & Durbin, R. (2009). Fast and accurate short read alignment with Burrows-Wheeler transform. Bioinformatics, 25(14), 1754-1760.
https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btp324
27. Li, H., Handsaker, B., Wysoker, A., Fennell, T., Ruan, J., Homer, N., ... 1000 Genome Pro-ject Data Processing Subgroup. (2009). The Sequence Alignment/Map format and SAMtools. Bioinformatics, 25(16), 2078-2079.
https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btp352
28. Liu, C., Yang, X., Duffy, B., Mohanakumar, T., Mitra, R. D., Zody, M. C., & Pfeifer, J. D. (2013). ATHLATES: accurate typing of human leukocyte antigen through exome sequenc-ing. Nucleic Acids Research, 41(14), e142. https://doi.org/10.1093/nar/gkt481
29. Ma, X., & Qiu, D. K. (2001). Relationship between autoimmune hepatitis and HLA-DR4 and DRbeta allelic sequences in the third hypervariable region in Chinese. World Journal of Gastroenterology, 7(5), 718-721. https://doi.org/10.3748/WJG.V7.I5.718
30. Mungall, A. J., Palmer, S. A., Sims, S. K., Edwards, C. A., Ashurst, J. L., Wilming, L., ... Beck, S. (2003). The DNA sequence and analysis of human chromosome 6. Nature, 425(6960), 805-811. https://doi.org/10.1038/nature02055
31. Neefjes, J., Jongsma, M. L. M., Paul, P., & Bakke, O. (2011). Towards a systems under-standing of MHC class I and MHC class II antigen presentation. Nature Reviews Immunol-ogy, 11(12), 823-836. https://doi.org/10.1038/nri3084
32. Nowak, J., Mika-Witkowska, R., & Graczyk-Pol, E. (2012). Genetic Methods of HLA Typ-ing. https://doi.org/10.1007/978-3-642-29467-9_21
33. Oliveira, L. C., Porta, G., Marin, M. L. C., Bittencourt, P. L., Kalil, J., & Goldberg, A. C. (2011). Autoimmune hepatitis, HLA and extended haplotypes. Autoimmunity Reviews, 10(4), 189-193. https://doi.org/10.1016Zj.autrev.2010.09.024
34. Park, I., & Terasaki, P. (2000). Origins of the first HLA specificities. Human Immunology, 61(3), 185-189.
35. Szolek, A., Schubert, B., Mohr, C., Sturm, M., Feldhahn, M., & Kohlbacher, O. (2014). OptiType: precision HLA typing from next-generation sequencing data. Bioinformatics, 30(23), 3310-3316. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btu548
36. Tanwandee, T., Wanichapol, S., Vejbaesya, S., Chainuvati, S., & Chotiyaputta, W. (2006). Association between HLA class II alleles and autoimmune hepatitis type 1 in Thai patients. Journal of the Medical Association of Thailand = Chotmaihet Thangphaet, 89 Suppl 5, S73- 8. Retrieved from http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17722299
37. Thorsby, E. (2009). A short history of HLA. Tissue Antigens, 74(2), 101-116. https://doi.org/10.1111/j.1399-0039.2009.01291.x
38. Vyas, J. M., Van der Veen, A. G., & Ploegh, H. L. (2008). The known unknowns of antigen processing and presentation. Nature Reviews Immunology, 8(8), 607-618. https://doi.org/10.1038/nri2368
39. Zheng, X., Shen, J., Cox, C., Wakefield, J. C., Ehm, M. G., Nelson, M. R., & Weir, B. S. (2014). HIBAG—HLA genotype imputation with attribute bagging. The Pharmacogenomics Journal, 14(2), 192-200. https://doi.org/10.1038/tpj.2013.18
40. Zhernakova, D. V., Kliver, S., Cherkasov, N., Tamazian, G., Rotkevich, M., Krasheninniko-va, K., ... O’Brien, S. J. (2018). Analytical “bake-off’ of whole genome sequencing quality for the genome Russia project using a small cohort for autoimmune hepatitis. PLoS ONE, 13(7). https://doi.org/bi10.1371/journal.pone.0200423


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.



Подобные работы


©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ