Криптококкоз представляет собой повсеместно распространенное инфекционное заболевание, вызываемое инкапсулированными дрожжевыми грибами рода Cryptococcusи имеющее широкий спектр клинических проявлений. Среди прочих форм наиболее опасной для жизни больного является криптококковый менингоэнцефалит. Данная патология выявляется почти исключительно у лиц с синдромом приобретенного иммунодефицита, явившимся следствием ВИЧ-инфекции, лимфопролиферативных заболеваний или приема иммуносупрессивной терапии. [1]
К настоящему моменту описаны 2 вида, способные провоцировать развитие болезни у человека: Cryptococcus neoformansи Cryptococcus gattii.Эти организмы являются факультативными внутриклеточными паразитами: в окружающей среде они могут обнаруживаться свободно растущими в почве, либо, как показывают некоторые исследования, вегетирующими в почвенных амебах. У хозяев-млекопитающих встречаются в различных тканях и биологических жидкостях организма, а также в клетках, способных к фагоцитозу. Хотя C. neoformansи C. gattiiимеют много общих черт, касающихся структурного устройства клетки и ее физиологии, они, тем не менее, демонстрируют значительные различия в отношении географического распределения, занимаемых экологических ниш и особенностях клинической картины вызываемого заболевания. [2]
C. neoformansбыл впервые описан как патоген человека в конце 19-го века, однако до конца 1960-х сообщения о криптококкозе были единичными, и работ, посвященных этой проблеме, публиковалось чрезвычайно мало. Тем не менее, к 1970-м годам его распространение стало увеличиваться в связи с нарастанием числа больных онкологического профиля, внедрением в клиническую практику препаратов иммуносупрессивного действия и увеличением числа операций по трансплантации внутренних органов. Значительный прирост заболеваемости был отмечен в середине 1980-х, причем более 80% случаев криптококкоза в мире приходилось на пациентов с ВИЧ-инфекцией. [3]
Заболеваемость криптококкозом в США до начала 1980-х составляла всего около 0,8 случаев на 1 миллион населения в год. К 1992 году, когда число новых пациентов с ВИЧ-инфекцией в стадии СПИДа достигло исторического максимума, в крупных американских городах регистрировалось около 5 случаев заболевания на 100 000 населения в год. В середине 1990-х годов еще до начала эры АРВТ, этот показатель значительно снизился и стабилизировался на уровне порядка 1 случая на 100 000 в год в связи с началом использования флуконазола в лечении орофарингеального кандидоза. Широкое распространение препаратов для этиотропной терапии ВИЧ - инфекции еще сильнее сократило прирост числа больных. К настоящему моменту, согласно данным Центра по контролю заболеваний (CDC, США), частота криптококкоза в общемировой популяции колеблется в интервале от 0,4 до 1,3 случаев на 100 000 населения в год. [4]
Наибольших значений показатель заболеваемости достигает в африканских странах, расположенных к югу от Сахары: по разным данным от 15 до 45% больных ВИЧ-инфекцией в стадии СПИДа обнаруживают признаки обсуждаемой патологии. В популяционном исследовании части населения Южной Африки, не имеющей доступа к АРВТ, общая заболеваемость криптококкозом у ВИЧ-инфицированных пациентов составила 95 случаев на 100 000 пациентов, а у больных в стадии СПИДа 14 на 1000. [5]
По данным отчета CDC, ежегодно в мире регистрируется около 1 миллиона новых эпизодов диссеминированного криптококкоза и более чем 600 000 летальных случаев, максимальных значений уровень смертности достигает, опять же, в странах Южной Африки (75-90% всех выявленных больных). В ряде медицинских центров этого региона Cryptococcus neoformansявляется наиболее частым этиологическим агентом менингитов, подтвержденных культуральными методами, опережая даже Neisseria meningitidisи Streptococcus pneumoniae. [6] Естественное течение криптококкоза связано с летальностью, стремящейся к 100%, тем не менее, своевременно начатая терапия позволяет снизить этот показатель до 10-25%. [3]
Модели, оценивающие расчетные показатели заболеваемости криптококкозом, позволяют высказать предположения о снижении заболеваемости до уровня 200 000 случаев в год, а смертности до 100 000 при условии повсеместного распространения АРВТ. Среди факторов, лимитирующих скорость ежегодной убыли названных показателей, выделяют высокое число недиагностированных случаев ВИЧ-инфекции, распространение резистентности к отдельным антиретровирусным препаратам и низкий комплайенс пациентов, получающих АРВТ. [7]
Данные о числе больных криптококкозом по России в целом отсутствуют, единичные работы, посвященные обсуждаемой нозологии, отмечают рост заболеваемости в Санкт-Петербурге. [8]
Криптококковый менингит встречается преимущественно у лиц с дефектом клеточного звена иммунитета и является одной из наиболее распространенных оппортунистических инфекций среди пациентов с числом CD4+-клеток ниже 100 в 1 мкл. Благодаря все повышающейся доступности АРВТ заболеваемость ВИЧ-ассоциированным криптококкозом значительно снизилась в большинстве развитых стран, однако в иных группах риска она неизменна. По мере развития методов молекулярной биологии, формируется все более глубокое понимание факторов патогенности возбудителя, их адаптационных способностей и методов освоения новых экологических условий. Кроме того, к настоящему моменту активно исследуются механизмы развития криптококковой инфекции у иммунокомпетентных лиц. [3]
Совершенствование методов скрининга и схем терапии имеют хороший потенциал для контроля за распространением инфекции и, возможно, снижения глобального бремени заболевания в будущем.
Цели и задачи исследования
Целями настоящей работы стали обзор и оценка эффективности схем этиотропной терапии менингитов, вызванных Cryptococcus neoformans, использованных в СПБ ГБУЗ «Клиническая инфекционная больница им. С.П. Боткина» за период 2018-2019 гг. и проведение сравнительного анализа клинико-лабораторных показателей, выявляемых на фоне различных вариантов лечения.
В рамках поставленной цели были выделены следующие задачи:
1. Оценить стадию ВИЧ-инфекции, иммунологические показатели и сопутствующие оппортунистические инфекции в группе больных с верифицированным криптококковым менингитом .
2. Изучить неврологические проявления и особенности ликворограммы среди исследуемых лиц.
3. Произвести оценку динамики разрешения неврологической симптоматики и скорости санации ликвора, а также выживаемости и причин смерти в группах, получавших различные схемы этиотропной терапии.
4. Охарактеризовать токсическое действие используемых комбинаций препаратов.
Практическая значимость
В настоящем ретроспективном исследовании, представляющем собой анализ данных, которые были получены в ходе стационарного лечения пациентов с верифицированным криптококковым поражением ЦНС, проведена оценка особенностей иммунологического статуса исследуемых больных, определена частота коморбидных инфекционных заболеваний. Изучены особенности клинической картины и ликворологической характеристики обсуждаемой патологии. Произведена оценка динамики разрешения клинической картины и конверсии культуральных данных при использовании различных схем этиотропной терапии криптококового менингита. Определен показатель выживаемости и основные причины смерти среди исследуемых лиц. Путем сравнения интенсивности прироста креатинина и убыли гемоглобина выявлены различия токсического действия применяемых комбинаций препаратов.
В ходе анализа полученных данных выявлено более выраженное нефротоксическое и анемизирующее действие амфотерицина B дезоксихолата, в сравнении с липосомальной формой. Скорость обратного развития неврологической симптоматики, санации ликвора и выживаемость в исследуемых группах оказались неразличимы. Исходя из приводимых результатов, могут быть даны практические рекомендации по назначению L-AMB пациентам с сопутствующей нефрологической патологией, в исходе которой возможно развитие ХБП: диабетическая и гипертоническая нефропатии, гломерулонефриты, тубулоинтерстициальные заболевания, поликистозная дегенерация, системные заболевания с вовлечением почечной паренхимы и некоторые другие. С целью профилактики анемизации у пациентов с исходно сниженными уровнями гемоглобина может быть рекомендовано заблаговременное назначение препаратов железа, а в случае невозможности достаточной компенсации дефицита - эритропоэтина, являющегося в данной ситуации патогенетически обоснованным средством терапии.
Таким образом, результаты настоящего исследования позволяют проводить более тонкий подбор лекарственных средств у пациентов с сопутствующей почечной патологией или высоким риском ее развития и представляют определенный интерес для повседневной клинической практики.
Криптококкоз является оппортунистическим висцеральным микозом, преимущественно поражающим легочную паренхиму, ткани головного мозга и мозговые оболочки. К группам риска развития данного заболевания относят больных с первичными и вторичными иммунодефицитами, среди которых наибольший удельный вес имеют пациенты с ВИЧ-инфекцией. Начальная фаза этиотропной терапии обсуждаемой патологии отличается высокой токсичностью, связанной в основном с поражением ткани почек и анемизацией.
Обнаружение высокой частоты сочетанного течения криптококковой инфекции и туберкулеза представляет большой интерес с точки зрения клинической фармакологии: совместное назначения амфотерицина B и противотуберкулезных средств, некоторые из которых также нефротоксичны, требует тщательного анализа используемых сочетаний препаратов. В лечении таких больных применение L-AMB представляется более обоснованным, однако этот вопрос требует дальнейшего изучения.
Статистически достоверных данных, свидетельствующих о большей эффективности L-AMB в отношение регресса неврологической симптоматики и санации ликвора не выявлено. Однако прослеживается тенденция по превосходству липосомальной формы при сравнении показателей выживаемости в двух группах. Есть основания полагать, что в случае большего числа исследуемых лиц различия могут оказаться существеннее. Для отдельных пациентов должна обсуждаться возможность назначения двойной терапевтической дозы L-AMB off label, опережающей регламентированные дозы обеих форм амфотерицина B по всем обсуждаемым параметрам.
Обнаружение статистически достоверных различий в степени выраженности побочных эффектов исследуемых препаратов позволяет выделить больных, для которых назначение липосомальной формы оказывается предпочтительным: это лица с хроническими заболеваниями почек, течение которых сопровождается снижением клиренса креатинина и СКФ. С целью профилактики анемизирующего действия антимикотика может быть рассмотрено заблаговременное назначение препаратов железа или эритропоэтина.
1. Voelz K., May R.C. Cryptococcal interactions with the host immune system // Eukaryotic cell. - 2010. - Vol.9, №6 - Р. 835-846.
2. Steenbergen JN, Shuman HA, Casadevall A. Cryptococcus neoformans interactions with amoebae suggest an explanation for its virulence and intracellular pathogenic strategy in macrophages. Proc Natl Acad Sci U S A. 2001;98: 15245-50.
3. Perfect JR. Cryptococcus neoformans and Cryptococcus gattii. In: Bennett JE, Dolin R, Blaser MJ, editors. Mandell, Douglas, and Bennett’s principles and practice of infectious diseases. 8th. Philadelphia: Elsevier Saunders; 2015. pp. 2934-48.
4. Hajjman A, Conn LA, Stephens DS. Cryptococcosis: population-based multistate active surveillance and risk factors in human immunodeficiency virus-infected persons. Cryptococcal Active Surveillance Group. J Infect Dis. 1999; 179:449-454.
5. McCarthy KM, Morgan J, Wannemuehler KA, et al. Population-based surveillance for cryptococcosis in an antiretroviral-naive South African province with a high HIV seroprevalence. AIDS. 2006; 20:2199-2206.
6. Hakim JG, Gangaidzo IT, Heyderman RS. Impact of HIV infection on meningitis in Harare, Zimbabwe: a prospective study of 406 predominantly adult patients. AIDS. 2000; 14:1401-1407.
7. Rajasingham R, Smith RM, Park BJ, et al. Global burden of disease of HIV- associated cryptococcal meningitis: an updated analysis. Lancet Infect Dis. 2017.
8. Васильева Н.В. Факторы патогенности Cryptococcus neoformans и их роль в патогенезе криптококкоза: Дисс...докт. биол. наук. - СПб., 2005.
9. Barnett JA. A history of research on yeasts 14: medical yeasts part 2, Cryptococcus neoformans. Yeast. 2010;27: 875-904.
10. Cryptococcus [Electronic resource]. URL:
https://mycology.adelaide.edu.au/descriptions/yeasts/cryptococcus/ (accessed: 29.01.2020).
11. Saijo T, Chen J, Chen S, et al. Anti-granulocyte macrophage colony-stimulating factor autoantibodies are a risk factor for central nervous system infection by Cryptococcus gattii in otherwise immunocompetent patients. MBio. 2014;5(2) e00912-4.
12. Chen S, Meyer W, Sorrell T. Cryptococcus gattii infections. Clin Microbiol Rev. 2014;27(4):980-1024.
13. Gerstein AC, et al. Polyploid titan cells produce haploid and aneuploid progeny to promote stress adaptation. mBio. 2015;6: e01340-e01415.
14. Alanio A, Vernel-Pauillac F, Sturny-Leclere A, Dromer F. Cryptococcus neoformans host adaptation: toward biological evidence of dormancy. mBio. 2015;6: e02580-e02614.
15. Zaragoza O. Multiple disguises for the same party: the concepts of morphogenesis and phenotypic variations in Cryptococcus neoformans. Front. Microbio. 2011; 2:181.
16. Coelho C, Bocca A, Casadevall A. The tools for virulence of Cryptococcus neoformans. Adv Appl Microbiol. 2014;87: 1-41.
17. Liliane Mukaremera, Keunsook K. Lee, Jeanette Wagener, Darin L. Wiesner, Neil A.R. Gow, Kirsten Nielsen. Titan cell production in Cryptococcus neoformans reshapes the cell wall and capsule composition during infection. The Cell Surface. Volume 1. 2018. Pages 15-24.
18. Heiss C, Skowyra ML, Liu H, Klutts JS, Wang Z, Williams M, Srikanta D, Beverley SM, Azadi P, Doering TL. Unusual Galactofuranose Modification of a Capsule Polysaccharide in the Pathogenic Yeast Cryptococcus neoformans. The Journal of Biological Chemistry. 2013;288: 994-1003.
19. Liliane Mukaremera, Keunsook K. Lee, Jeanette Wagener, Darin L. Wiesner, Neil A.R. Gow, Kirsten Nielsen, Titan cell production in Cryptococcus neoformans reshapes the cell wall and capsule composition during infection, The Cell Surface, Volume 1, 2018, Pages 15-24.
20. Nosanchuk JD, Casadevall A. Impact of melanin on microbial virulence and clinical resistance to antimicrobial compounds. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2006;50: 3519-28.
21. Srikanta, D., Santiago-Tirado, F. H., & Doering, T. L. (2014). Cryptococcus neoformans: historical curiosity to modern pathogen. Yeast (Chichester, England), 31(2), 47-60.
22. Nosanchuk JD, Casadevall A. Impact of melanin on microbial virulence and clinical resistance to antimicrobial compounds. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2006;50: 3519-28.
23. Brown SM, Campbell LT, Lodge JK. Cryptococcus neoformans, a fungus under stress. Current Opinion in Microbiology. 2007;10: 320-5.
24. Hagen F, Khayhan K, Theelen B, et al. Recognition of seven species in the Cryptococcus gatti/Cryptococcus neoformans species complex. Fungal Genet Biol. 2015;78: 16-48.
25. Cogliati M, D'Amicis R, Zani A, et al. Environmental distribution of Cryptococcus neoformans and C. gattii around the Mediterranean basin. FEMS Yeast Res. 2016;16(4)
26. Chen Y, Litvintseva A, Frazzitta A, et al. Comparative analyses of clinical and environmental populations of Cryptococcus neoformans in Botswana. Mol Ecol. 2015;24(14):3559-71.
27. Ruiz A, Neilson J, Bulmer G. Control of Cryptococcus neoformans in nature by biotic factors. Sabouraudia. 1982;20(1): 21-9.
28. Bratton E, El Husseini N, Chastain C, et al. Comparison and temporal trends of three groups with Cryptococcosis: HIV-infected, solid organ transplant, and HIV-negative/non-transplant. PLoS One. 2012;7(8): e43582.
29. Park BJ, Wannemuehler KA, Marston BJ, et al. Estimation of the current global burden of cryptococcal meningitis among persons living with HIV/AIDS. AIDS. 2009;23: 525-30.
30. Perfect JR. Cryptococcus neoformans and Cryptococcus gattii. In: Bennett JE, Dolin R, Blaser MJ, editors. Mandell, Douglas, and Bennett’s principles and practice of infectious diseases. 8th. Philadelphia: Elsevier Saunders; 2015. pp. 2934-48.
31. Okagaki LH, Nielsen K. Titan cells confer protection from phagocytosis in Cryptococcus neoformans infections. Eukaryot. Cell. 2012;11: 820-826.
32. Smith LM, Dixon EF, May RC. The fungal pathogen Cryptococcus neoformans manipulates macrophage phagosome maturation. Cell. Microbiol. 2014
33. Davis MJ, et al. Cryptococcus neoformans-induced macrophage lysosome damage crucially contributes to fungal virulence. J. Immunol. 2015;194: 2219-2231.
34. Nicola AM, Robertson EJ, Albuquerque P, Derengowski Lda S, Casadevall A. Nonlytic exocytosis of Cryptococcus neoformans from macrophages occurs in vivo and is influenced by phagosomal pH. mBio. 2011;2: e00167- e00111.
35. Evans RJ, et al. Cryptococcal phospholipase B1 is required for intracellular proliferation and control of titan cell morphology during macrophage infection. Infect. Immun. 2015;83: 1296-1304.
36. Erb-Downward JR, Noggle RM, Williamson PR, Huffnagle GB. The role of laccase in prostaglandin production by Cryptococcus neoformans. Mol. Microbiol. 2008;68: 1428-1437.
37. May RC, Stone NR, Wiesner DL, Bicanic T, Nielsen K. Cryptococcus: from environmental saprophyte to global pathogen. Nat Rev Microbiol. 2016;14(2):106-117. doi:10.1038/nrmicro.2015.6
38. Vu K, et al. Invasion of the central nervous system by Cryptococcus neoformans requires a secreted fungal metalloprotease. mBio. 2014;5: e01101-e01114.
39. Liu TB, et al. Brain inositol is a novel stimulator for promoting Cryptococcus penetration of the blood-brain barrier. PLoS Pathog. 2013;9: e1003247.
40. Charlier C, et al. Evidence of a role for monocytes in dissemination and brain invasion by Cryptococcus neoformans. Infect. Immun. 2009;77: 120-127.
41. Kechichian TB, Shea J, Del Poeta M. Depletion of alveolar macrophages decreases the dissemination of a glucosylceramide-deficient mutant of Cryptococcus neoformans in immunodeficient mice. Infect. Immun. 2007;75: 4792-4798.
42. Chen Y, et al. The Cryptococcus neoformans transcriptome at the site of human meningitis. mBio. 2014;5: e01087-e01013.
43. Robertson EJ, et al. Cryptococcus neoformans ex vivo capsule size is associated with intracranial pressure and host immune response in HIV- associated cryptococcal meningitis. J. Infect. Dis. 2014;209: 74-82.
44. Maziarz, E. K., & Perfect, J. R. (2016). Cryptococcosis. Infectious disease clinics of North America, 30(1), 179-206.
45. Brizendine K, Baddley J, Pappas P. Pulmonary cryptococcosis. Semin Respir Crit Care Med. 2011;32(6): 727-34.
46. Visnegarwala F, Graviss EA, Lacke CE, Dural AT, Johnson PC, Atmar RL, Hamill RJ. Acute respiratory failure associated with cryptococcosis in patients with AIDS: analysis of predictive factors. Clin Infect Dis. 1998;27: 1231 -7.
47. Clark RA, Greer DL, Valainis GT, Hyslop NE. Cryptococcus neoformans pulmonary infection in HIV-1 infected patients. J Acquir Immune Defic Syndr. 1990;3: 480-4.
48. Ghatalia PA, Vick A, Vattoth S, Roberson GH, Pappas PG, et al. Reversible blindness in cryptococcal meningitis with normal intracranial pressure: case report and review of the literature. Clin Infect Dis. 2014; 59: 310-3.
49. da Cunha Colombo ER, Mora DJ, Silva-Vergara ML. Immune reconstitution inflammatory syndrome (IRIS) associated with Cryptococcus neoformans infection in AIDS patients. Mycoses. 2011;54(4): e178-82.
50. Franco-Paredes C, Womack T, Bohlmeyer T, et al. Management of Cryptococcus neoformans meningoencephalitis. Lancet Infect Dis. 2015;15: 348-55.
51. Antinori S. New Insights into HIV/AIDS-Associated Cryptococcosis. ISRN AIDS. 2013;2013: 471363.
52. Sato Y, Osabe S, Kuno H, et al. Rapid diagnosis of cryptococcal meningitis by microscopic examination of centrifuged cerebrospinal fluid sediment. J Neurol Sci. 1999;164: 72-5.
53. Malabonga VM, Basti J, Kamholz SL. Utility of bronchoscopic sampling techniques for cryptococcal disease in AIDS. Chest. 1991;99: 370-2.
54. Marcio L. Rodrigues, Mauricio Alvarez, Fernanda L. Fonseca, Arturo Casadevall, Binding of the Wheat Germ Lectin to Cryptococcus neoformans Suggests an Association of Chitinlike Structures with Yeast Budding and Capsular Glucuronoxylomannan, Eukaryotic Cell Apr 2008, 7 (4) 602-609.
55. Tanner DC, Weinstein MP, Fedorciw B, et al. Comparison of commercial kits for detection of cryptococcal antigen. J Clin Microbiol. 1994;32: 1680-4.
56. Huang H, Fan L, Rajbanshi B, et al. Evaluation of a new cryptococcal antigen lateral flow immunoassay in serum, cerebrospinal fluid and urine for the diagnosis of cryptococcosis: a meta-analysis and systematic review. PLoS One. 2015;10(5): e0127117.
57. Williams D, Kiiza T, Kwizera R, et al. Evaluation of fingerstick cryptococcal antigen lateral flow assay in HIV-infected persons: a diagnostic accuracy study. Clin Infect Dis. 2015;61(3): 464-7.
58. Kabanda T, Siedner M, Klausner J, et al. Point-of-care diagnosis and prognostication of cryptococcal meningitis with the cryptococcal lateral flow assay on cerebrospinal fluid. Clin Infect Dis. 2014;58(1): 113-6.
59. Brizendine KD, Baddley JW, Pappas PG. Predictors of mortality and differences in clinical features among patients with cryptococcosis according to immune status. PLoS ONE. 2013;8: e60431.
60. Anderson TM, et al. Amphotericin forms an extramembranous and fungicidal sterol sponge. Nat. Chem. Biol. 2014;10: 400-406.
61. Brouwer AE, et al. Combination antifungal therapies for HIV-associated cryptococcal meningitis: a randomised trial. Lancet. 2004;363: 1764-1767.
62. Day JN, et al. Combination antifungal therapy for cryptococcal meningitis. N. Engl. J. Med. 2013;368: 1291-1302.
63. Hamill RJ, Sobel JD, El-Sadr W, et al. Comparison of 2 doses of liposomal amphotericin B and conventional amphotericin B deoxycholate for treatment of AIDS-associated acute cryptococcal meningitis: a randomized, double¬blind clinical trial of efficacy and safety. Clin Infect Dis. 2010;51(2): 225-32.
64. van der Horst CM, Saag MS, Cloud GA, et al. Treatment of cryptococcal meningitis associated with the acquired immunodeficiency syndrome. National Institute of Allergy and Infectious Diseases Mycoses Study Group and AIDS Clinical Trials Group. N Engl J Med. 1997;337: 15-21.
65. Dromer F, Mathoulin-Pelissier S, Launay O, et al. Determinants of disease presentation and outcome during cryptococcosis: The Crypto A/D Study. PLoS Med. 2007;4: e21.
66. Dromer F, Bernede-Bauduin C, Guillemot D, et al. Major role for amphotericin-flucytosine combination in severe cryptococcosis. PLoS One. 2008;3(8): e2870.
67. Day JN, Chau T, Wolbers M, et al. Combination antifungal therapy for cryptococcal meningitis. N Engl J Med. 2013;368: 1291 -302.
68. Pappas PG, Chetchotisakd P, Larsen RA, et al. A phase II randomized trial of amphotericin B alone or combined with fluconazole in the treatment of HIV-associated cryptococcal meningitis. Clin Infect Dis. 2009;48: 1775-83.
69. Perfect JR, Dismukes WE, Dromer F, et al. Clinical Practice Guide lines for the Management of Cryptococcal Disease: 2010 update by the Infectious Disease Society of America. Clin Infect Dis. 2010;50: 291-322.
70. Bozette SA, Larsen RA, Chiu J, et al. A placebo-controlled trial of maintenance therapy with fluconazole after treatment for cryptococcal meningitis in the Acquired Immunodeficiency Syndrome. N Engl J Med. 1991;324: 580-4.
71. Mussini C, Pezzotti P, Miro JM, et al. Discontinuation of maintenance therapy for cryptococcal meningitis in patients with AIDS treated with HAART: an international observational study. Clin Infect Dis. 2004;38: 565¬71.
72. Loyse A, Wilson D, Meintjes G, et al. Comparison of the early fungicidal activity of high-dose fluconazole, voriconazole, and flucytosine as second- line drugs given in combination with amphotericin B for the treatment of HIV - associated cryptococcal meningitis. Clin Infect Dis. 2012;54: 121-8.
73. Bisson G, Molefi M, Bellamy S, et al. Early versus delayed antiretroviral therapy and cerebrospinal fluid fungal clearance in adults with HIV and cryptococcal meningitis. Clin Infect Dis. 2013;56(8): 1165-73.
74. Boulware D, Meya D, Muzoora C, et al. Timing of antiretroviral therapy after cryptococcal meningitis. N Engl J Med. 2014;370: 2487-98.
75. Ostrosky-Zeichner L, Marr KA, Rex JH, et al. Amphotericin B: time for a new “gold standard”. Clin Infect Dis. 2003;37: 415-425.
76. Cleary JD, Rogers PD, Chapman SW. Variability in polyene content and cellular toxicity among deoxycholate amphotericin B formulations. Pharmacotherapy. 2003;23: 572-578.
77. Rocha PN, Kobayashi CD, de Carvalho Almeida L, et al. Incidence, predictors, and impact on hospital mortality of amphotericin B nephrotoxicity defined using newer acute kidney injury diagnostic criteria. Antimicrob Agents Chemother. 2015;59: 4759-4769.
78. Hamill RJ. Amphotericin B formulations: a comparative review of efficacy and toxicity. Drugs. 2013;73: 919-934.
79. Stone NRH, Bicanic T, Salim R, et al. Liposomal amphotericin B (Ambisome): a review of the pharmacokinetics, pharmacodynamics, clinical experience and future directions. Drugs. 2016;76: 485-500.
80. Johnson PC, Wheat LJ, Cloud GA, et al. Safety and efficacy of liposomal amphotericin B compared with conventional amphotericin B for induction therapy of histoplasmosis in patients with AIDS. Ann Intern Med. 2002;137: 105-109.
81. Prentice HG, Hann IM, Herbrecht R, et al. A randomized comparison of liposomal versus conventional amphotericin B for the treatment of pyrexia of unknown origin in neutropenic patients. Br J Haematol. 1997;98: 711 -718.
82. McClelland EE, Hobbs LM, Rivera J, et al. The role of host gender in the pathogenesis of Cryptococcus neoformans infections. PLoS ONE. 2013;8: e63632.
83. Is HIV-associated tuberculosis a risk factor for the development of cryptococcal disease? Jarvis JN, Harrison TS, Corbett EL, Wood R, Lawn SD AIDS. 2010 Feb 20; 24(4):612-4.
84. Fang W, Zhang L, Liu J, et al. Tuberculosis/cryptococcosis co-infection in China between 1965 and 2016. Emerg Microbes Infect. 2017;6(8): e73. Published 2017 Aug 23. doi:10.1038/emi.2017.61
85. Perfect JR. Cryptococcosis. Infect Dis Clin North Am. 1989; 3:77-102.
86. Диагностическое значение лабораторных показателей: практ. пособие/ Е. Т. Зубовская [и др.]; М-во здравоохранения Респ. Беларусь, Респ. науч.-практ. центр «Мать и дитя», Респ. мед. акад. последиплом. образования. Минск: БГУФК, 2013. 422 с.
87. Клинические рекомендации Министерства здравоохранения Российской Федерации, Национальная ассоциация специалистов по профилактике, диагностике и лечению ВИЧ-инфекции «ВИЧ-инфекция у взрослых», 2019 г.
88. Stages of HIV Infection [Electronic resource]. URL: https ://wwwn.cdc. gov/hivrisk/what_is/stages_hiv_infection.html (accessed: 27.03.2020).
89. Leenders AC, Reiss P, Portegies P, et al. Liposomal amphotericin B (Ambisome) compared with amphotericin B followed by oral fluconazole in the treatment of AIDS-associated cryptococcal meningitis. AIDS. 1997;11: 1463-1471.
90. Hamil RJ, Sobel JD, El-Sadr W, et al. Comparison of 2 doses of liposomal amphotericin B and amphotericin B for the treatment of AIDS-associated acute cryptococcal meningitis: randomized, double-blind clinical trial of efficacy and safety. Clin Infect Dis. 2010;51: 225-232.