Тип работы:
 Предмет:
 Язык работы:


Микроэкстракционное выделение хрома из природной воды и пищевых продуктов для его дальнейшего определения спектральными методами с применением глубоких эвтектических растворителей

Работа №128315

Тип работы

Дипломные работы, ВКР

Предмет

химия

Объем работы54
Год сдачи2021
Стоимость4230 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
17
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


Глава 1. Обзор литературы
Принятые условные сокращения и обозначения 4
Введение 5
1.1. Хром в различных объектах анализа 6
1.2. Хром в пищевых продуктах 7
1.3. Хром в природной воде 8
1.4. Методы определения хрома 9
1.5. Глубокие эвтектические растворители 13
1.6. Автоматизация химиче ского анализа 18
Заключение 20
Глава 2. Методика экспериментальных исследований
2.1. Средства измерений и оборудование 22
2.2 Ре активы и материалы 22
2.3. Приготовление растворов 24
Глава 3. Методика определения хрома в пищевых продуктах
3.1. Схема анализа 26
3.2. Оптимизация процесса микроэкстракции 28
3.3. Выбор противоиона 29
3.4. Выбор экстрагента 30
3.5. Влияние типа эвтектического растворителя 31
3.6. Выбор объема экстрагента и глубокого эвтектического растворителя 32
3.7. Выбор концентрации фотометрического регента 33
3.8. Изучение мешающего влияния 34
3.9. Аналитические характеристики методики 35
3.10. Анализ реальных объектов 35
Глава 4. Методика определения хрома в природной воде
4.1. Общая схема анализа 37
4.2. Выбор состава и массы глубокого эвтектического растворителя 37
4.3. Влияние pH 38
4.4. Выбор объема образца 39
4.5. Выбор времени экстракции 40
4.6. Изучение мешающего влияния 40
4.7. Аналитические характеристики методики 40
4.8. Анализ реальных объектов 41
Выводы 44
Список литературы 45

Контроль качества пищевых продуктов является важной составляющей современной науки и жизни. Неотъемлемой частью контроля качества продуктов питания является химический анализ как самих готовых продуктов, так и природной воды, используемой в их производстве. Одной из самых важных задач в данном направлении является определение в пищевых продуктах и природной воде тяжелых металлов, к которым в том числе относится хром (Cr). Необходимость его определения обусловлена тем, что Cr (VI), ввиду своей способности конкурировать с Fe в компонентах крови, относится к классу 'токсичных и опасных для здоровья человека веществ - канцерогенов.
Для его определения разработано большое количество подходов, но многие из них требуют дорогостоящего оборудования либо включают длительные стадии ручной пробоподготовки. Именно поэтому одной из важных задач современной аналитической химии является разработка простых, экспрессных и автоматизированных методик определения Cr (VI) в различных объектах анализа.


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!
ДИПЛОМНЫЕ МАГИСТЕРСКИЕ ДИССЕРТАЦИИ
КУРСОВЫЕ СТАТЬИ ВКР

1. В первой части работы был разработан новый подход к автоматизированной дисперсионной жидкостно-жидкостной микроэкстракции, основанный на использовании глубокого эвтектического растворителя в качестве диспергатора. ГЭР, состоящий из тетрабутиламмония бромида и муравьиной кислоты, был исследован в качестве диспергирующего растворителя для экстракции Cr (VI) из напитков. Было показано, что ГЭР способствует эффективному диспергированию, что приводит к уменьшению времени экстракции, высокой эффективности экстракции за счет эффекта высаливания (роль тетрабутиламмоний бромида) и большого количества протонов (роль муравьиной кислоты) и как следствие - это приводит к образованию ионного ассоциата. Автоматизированная процедура экстракции применялась для определения Cr (VI) в напитках. Результаты показали, что предложенная процедура проста и чувствительна. ПО, полученный для разработанной процедуры, сравним с ПО процедур, основанных на жидкофазной микроэкстракции (табл. 2). Полученные данные для Cr (VI) были меньше ПДК (ПДК для Cr (VI) в напитках составляет 0.5 мг/л [107]) Предлагаемая процедура имеет ряд преимуществ, включая автоматизацию, миниатюризацию и экономичность.
2. Во второй части работы был разработан новый подход к определению Cr, основанный на эффективной микроэкстракции аналитов с использованием глубокого эвтектического растворителя с последующей атомно-адсорбционной спектрометрией с электротермической атомизацией. Впервые для экстракции Cr (VI) был исследован ГЭР, состоящий из тетрабутиламмоний бромида и длинноцепочечного спирта. Было обнаружено, что жирные кислоты обеспечивают стабильность Cr (VI) и его удовлетворительную экстракцию. Для экстракции Cr (VI) предложен глубокий эвтектический растворитель на основе тетрабутиламмония бромида и гексановой кислоты. Процедура была оптимизирована и применена для определения содержания Cr в пробах природных и сточных вод. По сравнению с существующими процедурами (табл. 2), разработанная методика имеет сравнительно низкие ПО, не требует использования специальных сорбентов или использования токсичных и летучих органических растворителей, таких как хлороформ или дорогих и трудно синтезируемых ионных жидкостей. В своей работе мы использовали простой в синтезе, экологический и безопасный глубокий эвтектический растворитель. Использование ГЭР позволило не только разработать простой метод экстракции Cr, но и получить высокую селективность экстракции за счет образования ионного ассоциата Cr с бромидом тетрабутиламмония. Кроме того, предлагаемая процедура быстрее, чем большинство из предлагаемых в литературе. Помимо решения этой конкретной задачи, данная процедура при правильном выборе экстрагента позволит добиться селективности извлечения других опасных материалов для контроля природных и сточных вод. Кроме того, использование в качестве экстрагента экологически чистой гексановой кислоты позволит использовать не только спектральные, но и хроматографические методы обнаружения, что открывает еще большие перспективы для данного способа пробоподготовки. Полученные данные для Cr (VI) были меньше ПДК (ПДК для Cr (VI) в напитках составляет 0.02 мг/л [108]). ПДК для Cr (III) не установлено для природных вод.



[1] Третьяков Ю.Д. Неорганическая Химия. Т.2. Химия Переходных Элементов. Том 3 Книга 1, 2007. 400 с.
[2] Staniek, H. The combined effects of Cr(III) propionate complex supplementation and iron excess on copper and zinc status in rats. J. Trace Elem. Med. Biol. 53, 49-54 (2019).
[3] Zhu, Y. et al. Effects of Cr(VI)-induced calcium-sensing receptor activation on DF-1 cell pyroptosis. Ecotoxicol. Environ. Saf. 179, 257-264 (2019).
[4] Yang, S. et al. Status assessment and probabilistic health risk modeling of metals accumulation in agriculture soils across China: A synthesis. Environ. Int. 128, 165-174 (2019).
[5] Cao, X. et al. Toxic effects of Cr(VI) on the bovine hemoglobin and human vascular endothelial cells: Molecular interaction and cell damage. Chemosphere 355-363 (2019).
[6] Stasicka, J. Chromium occurrence in the environment and methods of its speciation. Environmental Pollution, 92, 263-283 (2000).
[7] Kendig, M., Jeanjaquet, S., Addison, R. & Waldrop, J. Role of hexavalent chromium in the inhibition of corrosion of aluminum alloys. Surf. Coatings Technol. 140, 58-66 (2001).
[8] Slodovnik, D., Merimes, D., Trattner, S., Ingber, A. Investigation of the threshold for allergic reactivity to chromium. Contact Dermatitis. 44, 70-74 (2000).
[9] Dhal, B., Das, N. N., Thatoi, H. N. & Pandey, B. D. Characterizing toxic Cr(VI) contamination in chromite mine overburden dump and its bacterial remediation. J. Hazard. Mater. 260, 141-149 (2013).
[10] Brown, E. M. A Conformational Study of Collagen as Affected by Tanning Procedures. Journal of the American Leather Chemists Association, 92, 225-233 (1997).
[11] Gettens, J. R. Painting Materials: A Short Encyclopaedia: Courier Dover Pulications (1966).
[12] Ellis, D. I. et al. Fingerprinting food: Current technologies for the detection of food adulteration and contamination. Chem. Soc. Rev. 41, 5706-5727 (2012).
[13] Hingston, J. A., Collins, C. D., Murphy, R. J. & Lester, J. N. Leaching of chromated copper arsenate wood preservatives: A review. Environ. Pollut. 111, 53-66 (2001).
[14] Mercer, T. G. & Frostick, L. E. Leaching characteristics of CCA-treated wood waste: A UK study. Sci. Total Environ. 427-428, 165-174 (2012).
[15] Zayed, A. et al. Linked references are available on JSTOR for this article : Planta Chromium accumulation , translocation and chemical speciation in vegetable crops. 206, 293-299 (2020).
[16] Salatas, J. H., Lowney, Y. W., Pastorok, R. A., Nelson, R. R. & Ruby, M. V. Metals that drive health-based remedial decisions for soils at U.S. Department of Defense sites. Hum. Ecol. Risk Assess. 10, 983-997 (2004).
[17] Lameiras, J. Quantification of total chromium and hexavalent chromium in UHT milk by ETAAS. Analyst 123, 2091-2095 (1998).
[18] Figueiredo, E., Soares, M. E., Baptista, P., Castro, M. & Bastos, M. L. Validation of an electrothermal atomization atomic absorption spectrometry method for quantification of total chromium and chromium(VI) in wild mushrooms and underlying soils. J. Agric. Food Chem. 55, 7192-7198 (2007).
[19] Chen, S., Zhu, S., He, Y. & Lu, D. Speciation of chromium and its distribution in tea leaves and tea infusion using titanium dioxide nanotubes packed microcolumn coupled with inductively coupled plasma mass spectrometry. Food Chem. 150, 254-259 (2014).
[20] Soares, M. E., Vieira, E. & De Lourdes Bastos, M. Chromium speciation analysis in bread samples. J. Agric. Food Chem. 58, 1366-1370 (2010).
[21] Vieira, E. et al. Quanti fi cation of Total and Hexavalent Chromium in Lager Beers: Variability between Styles and Estimation of Daily Intake of Chromium from Beer. (2014).
[22] Lendinez, E., Lorenzo, M. L., Cabrera, C. & Lopez, M. C. Chromium in basic foods of the Spanish diet: Seafood, cereals, vegetables, olive oils and dairy products. Sci. Total Environ. 278, 183-189 (2001).
[23] Proctor, D. M., Otani, J. M., Finley, B. L., Paustenbach, D. J., Bland, J. A., Speizer, N., & Sargent, E. V. Is hexavalent chromium carcinogenic via ingestion? A weight- ofevidence review. Journal of Toxicology and Environmental Health, Part A, 65(10), 701¬746 (2002).
[24] Milai, R. & Tupar, J. Simultaneous determination of chromium(III) COMPLEXES and CHROMIUM(VI) by fast protein anion-exchange liquid chromatography-atomic absorption spectrometry. Analyst 119, 627-632 (1994).
[25] Коротич В. И., Набойченко С. С., Сотников А. И., Грачев С. В., Фурман Е. Л., Ляшков В. Б. (под ред. В. И. Коротича). Начала металлургии: Учебник для вузов. — Екатеринбург: УГТУ, 2000. — 392 с. — ISBN 5-230-06611-3.
[26] Циммерман Р., Гюнтер К. Металлургия и материаловедение / Под ред. П. И. Полухина, М. Л. Бернштейна. — Справ. издание. Пер. с нем.. — М.: Металлургия, 1982. — 480 с.
[27] Q.Y. Chen, A. Murphy, H. Sun, M. Costa, Molecular and epigenetic mechanisms of Cr (VI) - induced carcinogenesis, Toxicol. Appl. Pharmacol. 377 (2019) 114636.
[28] Stasinos, S. & Zabetakis, I. The uptake of nickel and chromium from irrigation water by potatoes, carrots and onions. Ecotoxicol. Environ. Saf. 91, 122-128 (2013).
[29] Oze, C., Fendorf, S., Bird, D. K. & Coleman, R. G. Chromium geochemistry in serpentinized ultramafic rocks and serpentine soils from the Franciscan complex of California. Am. J. Sci. 304, 67-101 (2004).
[30] Prado, F. E., Hilal, M., Chocobar-Ponce, S., Pagano, E., Rosa, M., & Prado, C. Chapter 6 - Chromium and the Plant: A Dangerous Affair? A2 - Ahmad, Parvaiz. In Plant Metal Interaction, 149-177 (2016).
[31] Loubna, E. F., Hafidi, M., Silvestre, J., Kallerhoff, J., Merlina, G., & Pinelli, E. Efficiency of cocomposting process to remove genotoxicity from sewage sludge contaminated with hexavalent chromium. Ecological Engineering, 82, 355-360 (2015).
[32] Utermann, J., Duwel, O., & Nagel, I. Background values in European soils and sewage sludges. Results of a JRC-coordinated study on background values (Part II). In). European Commission DG-JRC., EUR 22265 EN. Luxembourg:Office for Official Publications of the European Communities (2006).
[33] Ritchie, G. S. P., & Sposito, G. Speciation in Soils. In Chemical Speciation in the Environment, 237-264 (2007).
[34] Jardine, P. M. et al. Influence of soil geochemical and physical properties on chromium(VI) sorption and bioaccessibility. Environ. Sci. Technol. 47, 11241-11248 (2013).
[35] James, B. R., & Bartlett, R. J. Behavior of Chromium in Soils: VII. Adsorption and Reduction of Hexavalent Forms1. Journal of Environmental Quality, 12(2) (1983).
[36] Fendorf, S., Wielinga, B. W. & Hansel, C. M. Chromium transformations in natural environments: The role of biological and abiological processes in chromium(vi) reduction. Int. Geol. Rev. 42, 691-701 (2000).
[37] M. Zhan, H. Yu, L. Li, D.T. Nguyen, W. Chen, Detection of Hexavalent Chromium by Copper Sulfide Nanocomposites, Anal. Chem. 91 (2019) 2058-2065.
[38] J. Ma, Z. Wang, Q. Li, R. Gai, X. Li, On-line separation and preconcentration of hexavalent chromium on a novel mesoporous silica adsorbent with determination by solution-cathode glow discharge-atomic emission spectrometry, J. Anal. At. Spectrom. 29
[39] Environmental Protection Agency, Toxicological review of trivalent chromium (CAS no. 16065-83-1), in: Support of Summery Information on the Integrated Risk System (IRIS), US Environmental Protection Agency, Washington, DC, 1998.
[40] Tuzen, M. & Soylak, M. Multiwalled carbon nanotubes for speciation of chromium in environmental samples. J. Hazard. Mater. 147, 219-225 (2007).
[41] Uluozlu, O. D., Tuzen, M., Mendil, D., Kahveci, B. & Soylak, M. 3-Ethyl-4-(p- chlorobenzylidenamino-4,5-dihydro-1H-1,2,4-triazol-5-one (EPHBAT) as precipitant for carrier element free coprecipitation and speciation of chromium(III) and chromium(VI). J. Hazard. Mater. 172, 395-399 (2009).
[42] Narin, I., Kars, A. & Soylak, M. A novel solid phase extraction procedure on Amberlite XAD-1180 for speciation of Cr(III), Cr(VI) and total chromium in environmental and pharmaceutical samples. J. Hazard. Mater. 150, 453-458 (2008).
[43] Saygi, K. O., Tuzen, M., Soylak, M. & Elci, L. Chromium speciation by solid phase extraction on Dowex M 4195 chelating resin and determination by atomic absorption spectrometry. J. Hazard. Mater. 153, 1009-1014 (2008).
[44] Tuzen, M. & Soylak, M. Chromium speciation in environmental samples by solid phase extraction on Chromosorb 108. J. Hazard. Mater. 129, 266-273 (2006).
[45] Karatepe, A., Korkmaz, E., Soylak, M. & Elci, L. Development of a coprecipitation system for the speciation/preconcentration of chromium in tap waters. J. Hazard. Mater. 173, 433-437 (2010).
[46] Zhao, L. yu, Fei, J. jun, Lian, H. zhen, Mao, L. & Cui, X. bing. Development of a novel amine- and carboxyl-bifunctionalized hybrid monolithic column for non-invasive speciation analysis of chromium. Talanta 212, 120799 (2020).
[47] Zhu, Q. yun et al. Speciation analysis of chromium by carboxylic group functionalized mesoporous silica with inductively coupled plasma mass spectrometry. Talanta 195, 173-180 (2019).
[48] Bulut, V. N., Duran, C., Tufekci, M., Elci, L. & Soylak, M. Speciation of Cr(III) and Cr(VI) after column solid phase extraction on Amberlite XAD-2010. J. Hazard. Mater. 143, 112-117 (2007).
[49] Narin, I., Surme, Y., Soylak, M. & Dogan, M. Speciation of Cr(III) and Cr(VI) in environmental samples by solid phase extraction on Ambersorb 563 resin. J. Hazard. Mater. 136, 579-584 (2006).
[50] Martendal, E., Maltez, H. F. & Carasek, E. Speciation of Cr(III) and Cr(VI) in environmental samples determined by selective separation and preconcentration on silica gel chemically modified with niobium(V) oxide. J. Hazard. Mater. 161, 450-456 (2009).
[51] Aydin, F. A. & Soylak, M. Thulium hydroxide: A new coprecipitant for speciation of chromium in natural water samples. J. Hazard. Mater. 162, 1228-1232 (2009).
[52] Wang, L. L., Wang, J. Q., Zheng, Z. X. & Xiao, P Cloud point extraction combined with high-performance liquid chromatography for speciation of chromium(III) and chromium(VI) in environmental sediment samples. J. Hazard. Mater. 177, 114-118 (2010).
[53] Alahmad, W., Varanusupakul, P, Kaneta, T. & Varanusupakul, P Chromium speciation using paper-based analytical devices by direct determination and with electromembrane microextraction. Anal. Chim. Acta 1085, 98-106 (2019).
[54] Wang, J. et al. Landing microextraction sediment phase onto surface enhanced Raman scattering to enhance sensitivity and selectivity for chromium speciation in food and environmental samples. Food Chem. 323, 126812 (2020).
[55] Zeng, C., Lin, Y., Zhou, N., Zheng, J. & Zhang, W. Room temperature ionic liquids enhanced the speciation of Cr(VI) and Cr(III) by hollow fiber liquid phase microextraction combined with flame atomic absorption spectrometry. J. Hazard. Mater. 237-238, 365-370 (2012).
[56] Yousefi, S. M. & Shemirani, F. Selective and sensitive speciation analysis of Cr(VI) and Cr(III) in water samples by fiber optic-linear array detection spectrophotometry after ion pair based-surfactant assisted dispersive liquid-liquid microextraction. J. Hazard. Mater. 254-255, 134-140 (2013).
[57] Moghadam, M. R., Dadfarnia, S. & Haji Shabani, A. M. Speciation and determination of ultra trace amounts of chromium by solidified floating organic drop microextraction (SFODME) and graphite furnace atomic absorption spectrometry. J. Hazard. Mater. 186, 169-174 (2011).
[58] Kiran, K. et al. Speciation determination of chromium(III) and (VI) using preconcentration cloud point extraction with flame atomic absorption spectrometry (FAAS). J. Hazard. Mater. 150, 582-586 (2008).
[59] Liang, P. & Sang, H. Speciation of chromium in water samples with cloud point extraction separation and preconcentration and determination by graphite furnace atomic absorption spectrometry. J. Hazard. Mater. 154, 1115-1119 (2008).
[60] Yilmaz, E. & Soylak, M. Ultrasound assisted-deep eutectic solvent based on emulsification liquid phase microextraction combined with microsample injection flame atomic absorption spectrometry for valence speciation of chromium(III/VI) in environmental samples. Talanta 160, 680-685 (2016).
[61] L.L. Wang, J.Q. Wang, Z.X. Zheng, P Xiao, Cloud point extraction combined with high-performance liquid chromatography for speciation of chromium(III) and chromium(VI) in environmental sediment samples, J. Hazard. Mater. 177 (2010) 114-118.
[62] J. Wang, W. Ahmad, M. Mehedi Hassan, M. Zareef, A. Viswadevarayalu, M. Arslan, H. Li, Q. Chen, Landing microextraction sediment phase onto surface enhanced Raman scattering to enhance sensitivity and selectivity for chromium speciation in food and environmental samples, Food Chem. 323 (2020) 126812.
[63] E. Yilmaz, M. Soylak, Ultrasound assisted-deep eutectic solvent based on emulsification liquid phase microextraction combined with microsample injection flame atomic absorption spectrometry for valence speciation of chromium(III/VI) in environmental samples, Talanta. 160 (2016) 680-685.
[65] K. Xu, Y. Wang, Y. Huang, N. Li, Q. Wen, A green deep eutectic solvent-based aqueous two-phase system for protein extracting, Anal. Chim. Acta. 864 (2014) 9-20.
[66] Shishov, A., Bulatov, A., Locatelli, M., Carradori, S. & Andruch, V. Application of deep eutectic solvents in analytical chemistry. A review. Microchem. J. 135, 33-38 (2017).
[67] A. Shishov, N. Volodina, D. Nechaeva, S. Gagarinova, A. Bulatov, Deep eutectic solvents as a new kind of dispersive solvent for dispersive liquid-liquid microextraction, RSC Adv. 8 (2018) 38146-38149.
[68] A. Shishov, P. Terno, L. Moskvin, A. Bulatov, In-syringe dispersive liquid-liquid microextraction using deep eutectic solvent as disperser: Determination of chromium (VI) in beverages, Talanta. 206 (2020) 120209.
[69] A. Shishov, A. Pochivalov, L. Nugbienyo, V. Andruch, A. Bulatov, Deep eutectic solvents are not only effective extractants, TrAC Trends Anal. Chem. (2020) 115956.
[70] C.M.A. Brett, Deep eutectic solvents and applications in electrochemical sensing, Curr. Opin. Electrochem. 10 (2018) 143-148.
[71] Tan Ting, Qiao Xin, Wan Yiqun, Qiu Hongdeng, Deep eutectic solvent: a new kind of mobile phase modifier for hydrophilic interaction liquid chromatography, Chinese Journal of Chromatography (2015) 934-937.
[72] G. Li, T. Zhu, K.H. Row, Isolation of Ferulic Acid from Wheat Bran with a Deep Eutectic Solvent and Modified Silica Gel, Anal. Lett. 50 (2017) 1926-1938.
[73] Y.L. Chen, X. Zhang, T.T. You, F. Xu, Deep eutectic solvents (DESs) for cellulose dissolution: a mini-review, Cellulose. 26 (2019) 205-213.
[74] R. Germani, M. Orlandini, M. Tiecco, T. Del Giacco, Novel low viscous, green and amphiphilic N-oxides/phenylacetic acid based Deep Eutectic Solvents, J. Mol. Liq. 240 (2017) 233-239.
[75] B. Hashemi, P Zohrabi, S. Dehdashtian, Application of green solvents as sorbent modifiers in sorptive-based extraction techniques for extraction of environmental pollutants, TrAC - Trends Anal. Chem. 109 (2018) 50-61.
[76] A. Shishov, D. Nechaeva, A. Bulatov, HPLC-MS/MS determination of non-steroidal anti-inflammatory drugs in bovine milk based on simultaneous deep eutectic solvents formation and its solidification, Microchem. J. 150 (2019) 104080.
[77] M. Soylak, M. Koksal, Deep eutectic solvent microextraction of lead(II), cobalt(II), nickel(II) and manganese(II) ions for the separation and preconcentration in some oil samples from Turkey prior to their microsampling flame atomic absorption spectrometric determination, Microchem. J. 147 (2019) 832-837.
[78] A.G. Solaesa, J.O. Fernandes, M.T. Sanz, O. Benito-Roman, S.C. Cunha, Green determination of brominated flame retardants and organochloride pollutants in fish oils by vortex assisted liquid-liquid microextraction and gas chromatography-tandem mass spectrometry, Talanta. 195 (2019) 251-257.
[79] J.J. Li, H. Xiao, X.D. Tang, M. Zhou, Green Carboxylic Acid-Based Deep Eutectic Solvents as Solvents for Extractive Desulfurization, Energy and Fuels. 30 (2016) 5411-5418.
[80] T. Krizek, M. Bursova, R. Horsley, M. Kuchar, P Tuma, R. Cabala, T. Hlozek, Menthol-based hydrophobic deep eutectic solvents: Towards greener and efficient extraction of phytocannabinoids, J. Clean. Prod. 193 (2018) 391-396.
[81] A. Shishov, R. Chroma, C. Vakh, J. Kuchar, A. Simon, V. Andruch, A. Bulatov, In situ decomposition of deep eutectic solvent as a novel approach in liquid-liquid microextraction, Anal. Chim. Acta. 1065 (2019) 49-55. doi:10.1016/j.aca.2019.03.038.
[82] C. Florindo, L.C. Branco, I.M. Marrucho, Development of hydrophobic deep eutectic solvents for extraction of pesticides from aqueous environments, Fluid Phase Equilib. 448 (2017) 135-142.
[83] D.J.G.P. Van Osch, L.F. Zubeir, A. Van Den Bruinhorst, M.A.A. Rocha, M.C. Kroon, Hydrophobic deep eutectic solvents as water-immiscible extractants, Green Chem. 17 (2015) 4518-4521.
[84] Ji Y., Zhao M., Li A., Zhao L. Hydrophobic deep eutectic solvent-based ultrasonic- assisted dispersive liquid-liquid microextraction for preconcentration and determination of trace cadmium and arsenic in wine samples. Microchemical Journal. 164 105-974 (2021).
[85] Liu, R. et al. Extraction of platinum(IV) by hydrophobic deep eutectic solvents based on trioctylphosphine oxide. Hydrometallurgy 199, 105521 (2021).
[86] Sorouraddin, S. M., Farajzadeh, M. A. & Okhravi, T. Application of deep eutectic solvent as a disperser in reversed-phase dispersive liquid-liquid microextraction for the extraction of Cd(II) and Zn(II) ions from oil samples. J. Food Compos. Anal. 93, 103590 (2020).
[87] Spathariotis, S. et al. Separation of iron(iii), zinc(ii) and lead(ii) from a choline chloride-ethylene glycol deep eutectic solvent by solvent extraction. RSC Adv. 10, 33161-33170 (2020).
[88] Werner, J. Ligandless, deep eutectic solvent-based ultrasound-assisted dispersive liquid-liquid microextraction with solidification of the aqueous phase for preconcentration of lead, cadmium, cobalt and nickel in water samples. J. Sep. Sci. 43, 1297-1305 (2020).
[89] Fasihi, M., Rajabi, M., Barfi, B. & Sajjadi, S. M. Efficacious and environmentally friendly deep eutectic solvent-based liquid-phase microextraction for speciation of Cr(III) and Cr(VI) ions in food and water samples. Int. J. Environ. Anal. Chem. (2020). doi:10.1080/03067319.2020.1784408
[90] Thongsaw, A., Udnan, Y., Ross, G. M. & Chaiyasith, W. C. Speciation of mercury in water and biological samples by eco-friendly ultrasound-assisted deep eutectic solvent based on liquid phase microextraction with electrothermal atomic absorption spectrometry. Talanta 197, 310-318 (2019).
[91] Ola, P. D. & Matsumoto, M. Use of deep eutectic solvent as extractant for separation of Fe (III) and Mn (II) from aqueous solution. Sep. Sci. Technol. 54, 759-765 (2019).
[92] Habibollahi, M. H. et al. Extraction and determination of heavy metals in soil and vegetables irrigated with treated municipal wastewater using new mode of dispersive liquid-liquid microextraction based on the solidified deep eutectic solvent followed by GFAAS. J. Sci. Food Agric. 99, 656-665 (2019).
[93] Ezoddin, M., Lamei, N., Siami, F., Abdi, K. & Karimi, M. A. Deep Eutectic Solvent Based Air Assisted Ligandless Emulsification Liquid-Liquid Microextraction for Preconcentration of Some Heavy Metals in Biological and Environmental Samples. Bull. Environ. Contam. Toxicol. 101, 814-819 (2018).
[94] Akramipour, R., Golpayegani, M. R., Gheini, S. & Fattahi, N. Speciation of organic/inorganic mercury and total mercury in blood samples using vortex assisted dispersive liquid-liquid microextraction based on the freezing of deep eutectic solvent followed by GFAAS. Talanta 186, 17-23 (2018).
[95] Matong, J. M., Nyaba, L. & Nomngongo, P. N. Determination of As, Cr, Mo, Sb, Se and V in agricultural soil samples by inductively coupled plasma optical emission spectrometry after simple and rapid solvent extraction using choline chloride-oxalic acid deep eutectic solvent. Ecotoxicol. Environ. Saf. 135, 152-157 (2017).
[96] Habibi, E., Ghanemi, K., Fallah-Mehrjardi, M. & Dadolahi-Sohrab, A. A novel digestion method based on a choline chloride-oxalic acid deep eutectic solvent for determining Cu, Fe, and Zn in fish samples. Anal. Chim. Acta 762, 61-67 (2013).
[97] Meneses, D., Junior, J. G. F. & de Oliveira, P C. C. FIA-coupled spectrophotometric method for determination of Cr (VI) traces in natural waters: application of in-line dissolution of 1,5-diphenylcarbazide after heat treatment and activated alumina as adsorbent for preconcentration. Environ. Monit. Assess. 190, (2018).
[98] Prasada Rao, T., Karthikeyan, S., Vijayalekshmy, B. & Iyer, C. S. P. Speciative determination of chromium(VI) and chromium(III) using flow-injection on-line preconcentration and flame atomic-absorption spectrometric detection. Anal. Chim. Acta 369, 69-77 (1998).
[99] Colica, G., Mecarozzi, P C. & De Philippis, R. Biosorption and recovery of chromium from industrial wastewaters by using saccharomyces cerevisiae in a flow-through system. Ind. Eng. Chem. Res. 51, 4452-4457 (2012).
[100] Kim, M. L., Stripeikis, J. D. & Tudino, M. B. Hybrid mesoporous materials for on-line preconcentration of Cr(VI) followed by one-step scheme for elution and colorimetric determination at ultratrace levels. Talanta 77, 1068-1074 (2009).
[101] Beinrohr, E., Manova, A. & Dzurov, J. Preconcentration of Cr(III) and total Cr in waters for flame AAS in a flow-through electrochemical/sorption cell. Fresenius. J. Anal. Chem. 355, 528-531 (1996).
[102] Souza, I. G. et al. On-line electrolytic dissolution of alloys in flow-injection analysis. Part 3. Multi-elemental analysis of stainless steels by inductively coupled plasma atomic emission spectrometry. Anal. Chim. Acta 245, 211-216 (1991).
[103] Yoshimura, K. Application of ion-exchanger phase absorptiometry to flow analysis. determination of trace amounts of chromium(VI) in water. Analyst 113, 471-474 (1988).
[104] R. Borstnar, A.R. Choudhury, J. Stare, M. Novic, J. Mavri, Calculation of pKa values of carboxylic acids: application to bilirubin, J. Mol. Struct. Theochem. 947 (2010) 76-82.
[105] Y. Zhang, H.K. Lee, Determination of ultraviolet filters in water samples by vortexassisted dispersive liquid-liquid microextraction followed by gas chromatographymass spectrometry, J. Chromatogr. A 1249 (2012) 25-31.
[106] N. Khan, I.S. Jeong, I.M. Hwang, J.S. Kim, S.H. Choi, E.Y. Nho, et al., Method validation for simultaneous determination of chromium, molybdenum and selenium in infant formulas by ICP-OES and ICP-MS, Food Chem. 141 (2013) 3566-3570.
[107] Единые санитарно-эпидемиологические и гигиенические требования к продукции (товарам), подлежащей санитарно-эпидемиологическому надзору (контролю). Утверждены Решением Комиссии таможенного союза от 28 мая 2010 года N 299.
[108] Приказ Министерства сельского хозяйства Российской Федерации от 13 декабря 2016 года № 552 Об утверждении нормативов качества воды водных объектов рыбохозяйственного значения, в том числе нормативов предельно допустимых концентраций вредных веществ в водах водных объектов рыбохозяйственного значения (с изменениями на 10 марта 2020 года).

Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ
.