Введение 4
Глава 1. Обзор литературы 6
1.1 Структура бактериальных родопсинов 6
1.2 Фотоизомеризация хромофора 6
1.3 Фотоцикл бактериородопсина 8
1.4 Исследование спектральных характеристик основного состояния
и интермедиатов фотоцикла бактериородопсина 9
1.4.1 Спектры комбинационного рассеяния 9
1.4.2 Спектры инфракрасного поглощения (ИК спектры) 13
1.4.3 Флуоресценция бактериородопсина 14
1.4.4 Сравнение фотоциклов бактериородопсина и
археородопсина-3. 14
1.5 Характеристики флуоресценции археородопсина-3 и его
мутантных форм 15
1.6 Предложенные модели механизма потенциал-зависимости
флуоресценции археородопсина-3 18
1.7 Модификация стабильности О-состояния в бактериородопсине
путем введения аминокислотных замен 20
Глава 2. Методы 22
2.1 Экспериментальные методы 22
2.2 Теоретические методы 23
2.2.1 Получение трехмерных структур белков 23
2.2.2 Расчет спектральных свойств 24
2.2.3 Расчет pKa аминокислот 24
2.2.4 Расчет энергии Гиббса между состояниями белка 24
Глава 3. Результаты и обсуждение 27
3.1 Анализ экспериментальных результатов 27
3.2 Анализ результатов компьютерного моделирования 38
Выводы 45
Благодарности 47
Список литературы 48
Приложение А. Праймеры для мутагенеза 54
Приложение Б. Использованные буферы 55
Приложение В. Результаты секвенирваний
Археородопсин-3 - трансмембранный белок из семейства бактериальных родопсинов, применяемый в оптогенетике для визуализации активности нейронов [1—3]. Данная область применения обеспечена специфическими характеристиками флуоресценции археородопсина-3. Интенсивность флуоресценции данного белка линейно зависит от величины потенциала внешнего электрического поля. Таким образом, интенсивность флуоресценции археоро¬допсина-3, функционирующего в мембране нейрона, изменяется при изменении величины мембранного потенциала нейрона, что позволяет проводить мониторинг активности нейронов при помощи оптических методов.
Важной задачей в оптогенетике является создание белков на основе археородопсина-3 с модифицированными характеристиками флуоресцентного сигнала. Основная часть исследований, посвященных разработке производных археородопсина-3 для оптогенетических применений, направлена на достижение следующих целей: 1) повышение интенсивности флуоресцентного сигнала; 2) повышение чувствительности интенсивности флуоресцентного сигнала к изменению величины мембранного потенциала; 3) сдвиг спектра поглощения белка в длинноволновой диапазон. Проводимые на сегодняшний день исследования основаны на переборе большого количества вариантов мутантных форм белка при помощи методов направленной эволюции и случайного мутагенеза. Более перспективным подходом является рациональный молекулярный дизайн, однако его применение ограничено отсутствием данных о механизме, определяющем потенциал-зависимость флуоресценции белка. В частности, необходимо определить, из какого состояния белка возникает флуоресцентный сигнал, а также механизм стабилизации этого состояния. Повышение концентрации состояния, из которого возникает флуоресценция, при помощи аминокислотных замен позволило бы увеличить интенсивность флуоресцентного сигнала. Помимо этого, необходимой задачей является определение механизма, определяющего зависимость интенсивности флуоресцентного сигнала от величины мембранного потенциала клетки.
Основной целью данного исследования стало определение механизма, отвечающего за потенциал-зависимость флуоресценции археородопсина-3 и его мутантных форм. Для достижения данной цели были поставлены и решены следующие задачи:
— Определение состояния белка, фотоактивация которого приводит к возникновению флуоресцентного сигнала (О-состояние), определение механизма стабилизации данного состояния;
— Определение механизма, определяющего потенциал-зависимость флуоресценции белка.
На основании полученных данных был предложен ряд аминокислотных замен, введение которых, согласно предложенному в работе механизму, приводит к стабилизации О-состояния археородопсина-3 и, соответственно, к повышению интенсивности флуоресцентного сигнала. На сегодняшний день проводятся работы по синтезу предложенных мутантных форм археородопсина-3 для проверки данной гипотезы.
Основные результаты работы заключаются в следующем.
1. На основе анализа экспериментально измеренных спектров комбинационного рассеяния и электронных спектров поглощения археородопсина-3 дикого типа и его мутантных форм, характеризуемых высокой интенсивностью флуоресценции, а также на основании анализа результатов компьютерного моделирования различных состояний археородопсина-3 дикого типа и его мутантных форм, была выдвинута гипотеза о стабилизации О-состояния в мутантных формах археородопсина-3, характеризуемых высокой интенсивностью флуоресценции. В рассмотренных мутантных формах белка О-состояние становится основным со-стоянием фотоцикла.
2. На основе анализа спектров возбуждения флуоресценции археородоп¬сина-3 и его мутантных форм была выдвинута гипотеза, что в рассмотренных мутантных формах археородопсина-3, характеризуемых высокой интенсивностью флуоресценции, флуоресценция возникает при фотовозбуждении основного(О) состояния белка.
3. Результаты компьютерного моделирования показали, что наблюдается корреляция между стабильностью О-состояния белка и экспериментально измеренным квантовым выходом флуоресценции белка.
4. На основании анализа результатов компьютерного моделирования и экспериментальных данных было выдвинуто предположение, что мембранный потенциал клетки влияет на концентрацию О-состояния белка, которое определяется протонированным состоянием хромофора, контриона Asp222 и депротонированным состоянием аминокислот Glu204 и Glu214, входящих в ионный замок. Таким образом, зависимость интенсивности флуоресценции археородопсина-3 и его производных от потенциала объясняется тем, что мембранный потенциал влияет на концетрацию О-состояния, при фотоактивации которого возникает флуоресцентный сигнал. Экспериментальные данные показывают, что наиболее сильной зависимостью интенсивности флуоресценции от мембранного потенциала обладают белки, для которых значение pKa Asp222 и хромофора близко к физиологическому pH=7.2, что также подтверждает гипотезу.
Также на основании результатов компьютерного моделирования ряда производных археородопсина-3 были предложены аминокислотные замены, которые приводят к повышению pKa контриона Asp222 и, согласно гипотезе, к повышению концетрации О-состоянии повышению интенсивности флуоресценции. Дальнейшим направлением исследований является более детальное изучение механизма флуоресценции археородопсина-3 и его производных при помощи методов спектроскопии с высоким временным разрешением.
1. All-optical electrophysiology in mammalian neurons using engineered microbial rhodopsins / D. R. Hochbaum [и др.] // Nature methods. — 2014. — т. 11, № 8. — с. 825—833.
2. Zhang H., Cohen A. E. Optogenetic approaches to drug discovery in neuroscience and beyond // Trends in biotechnology. — 2017. — т. 35, № 7. — с. 625—639.
3. Optical recording of action potentials in mammalian neurons using a microbial rhodopsin / J. M. Kralj [и др.] // Nature methods. — 2012. — т. 9, № 1. — с. 90—95.
4. Microbial and animal rhodopsins: structures, functions, and molecular mechanisms / O. P. Ernst [и др.] // Chemical reviews. — 2014. — т. 114, № 1. — с. 126—163.
5. Shim S., Dasgupta J., Mathies R. A. Femtosecond time-resolved stimulated Raman reveals the birth of bacteriorhodopsin’s J and K intermediates // Journal of the American Chemical Society. — 2009. — т. 131, № 22. — с. 7592— 7597.
6. Lanyi J. K. Proton transfer and energy coupling in the bacteriorhodopsin photocycle // Journal of bioenergetics and biomembranes. — 1992. — т. 24, № 2. — с. 169—179.
7. Ames J. B., Mathies R. A. The role of back-reactions and proton uptake during the N. fwdarw. O transition in bacteriorhodopsin’s photocycle: a kinetic resonance Raman study // Biochemistry. — 1990. — т. 29, № 31. — с. 7181— 7190.
8. Alshuth T., Stockburger M. Structural changes in the retinal chromophore of bacteriorhodopsin studied by resonance Raman spectroscopy // Berichte der Bunsengesellschaft fur physikalische Chemie. — 1981. — т. 85, № 6. — с. 484— 489.
9. Infrared and visible absolute and difference spectra of bacteriorhodopsin photocycle intermediates / R. W. Hendler [и др.] // Applied spectroscopy. — 2011. — т. 65, № 9. — с. 1029—1045.
10. Lorenz-Fonfria V. A., Kandori H., Padros E. Probing specific molecular processes and intermediates by time-resolved Fourier transform infrared spectroscopy: Application to the bacteriorhodopsin photocycle // The Journal of Physical Chemistry B. — 2011. — т. 115, № 24. — с. 7972—7985.
11. Fourier transform infrared spectra of a late intermediate of the bacteriorhodopsin photocycle suggest transient protonation of Asp-212 / A. K. Dioumaev [и др.] // Biochemistry. — 1999. — т. 38, № 31. — с. 10070—10078.
12. Comparative studies of the fluorescence properties of microbial rhodopsins: spontaneous emission versus photointermediate fluorescence / K. Kojima [и др.] // The Journal of Physical Chemistry B. — 2020. — т. 124, № 34. — с. 7361—7367.
13. Fluorescence spectra of bacteriorhodopsin and the intermediates O and Q at room temperature / H. Ohtani [и др.] // FEBS letters. — 1995. — т. 359, № 1. — с. 65—68.
14. Ohtani H., Itoh H., Shinmura T. Time-resolved fluorometry of purple membrane of Halobacterium halobium O640 and an O-like red-shifted intermediate Q // FEBS letters. — 1992. — т. 305, № 1. — с. 6—8.
15. Fluorescence enhancement of a microbial rhodopsin via electronic reprogramming / M. d. C. Marin [и др.] // Journal of the American Chemical Society. — 2018. — т. 141, № 1. — с. 262—271.
16. Conformational changes in the archaerhodopsin-3 proton pump: detection of conserved strongly hydrogen bonded water networks / E. C. Saint Clair [и др.] // Journal of biological physics. — 2012. — т. 38, № 1. — с. 153—168.
17. Near-IR resonance Raman spectroscopy of archaerhodopsin 3: effects of transmembrane potential / E. C. Saint Clair [и др.] // The Journal of Physical Chemistry B. — 2012. — т. 116, № 50. — с. 14592—14601.
18. Screening fluorescent voltage indicators with spontaneously spiking HEK cells / J. Park [и др.] // PloS one. — 2013. — т. 8, № 12. — e85221.
19. Directed evolution of a far-red fluorescent rhodopsin / R. S. McIsaac [и др.] // Proceedings of the National Academy of Sciences. — 2014. — т. 111, № 36. — с. 13034—13039.
20. Archaerhodopsin variants with enhanced voltage-sensitive fluorescence in mammalian and Caenorhabditis elegans neurons / N. C. Flytzanis [и др.] // Nature communications. — 2014. — т. 5, № 1. — с. 1—9.
21. Mechanism of voltage-sensitive fluorescence in a microbial rhodopsin / D. Maclaurin [и др.] // Proceedings of the National Academy of Sciences. — 2013. — т. 110, № 15. — с. 5939—5944.
22. Electric-field-induced Schiff-base deprotonation in D85N mutant bacteriorhodopsin / P. Kolodner [и др.] // Proceedings of the National Academy of Sciences. — 1996. — т. 93, № 21. — с. 11618—11621.
23. Crystal structure of the D85S mutant of bacteriorhodopsin: model of an O-like photocycle intermediate / S. Rouhani [и др.] // Journal of molecular biology. — 2001. — т. 313, № 3. — с. 615—628.
24. Specificity of anion binding in the substrate pocket of bacteriorhodopsin / M. T. Facciotti [и др.] // Biochemistry. — 2004. — т. 43, № 17. — с. 4934— 4943.
25. Facciotti M. T., Rouhani S., Glaeser R. M. Crystal structures of bR (D85S) favor a model of bacteriorhodopsin as a hydroxyl-ion pump // FEBS letters. — 2004. — т. 564, № 3. — с. 301—306.
26. Hydrogen bonding interactions with the Schiff base of bacteriorhodopsin. Resonance Raman spectroscopy of the mutants D85N and D85A. / P. Rath [и др.] // Journal of Biological Chemistry. — 1993. — т. 268, № 24. — с. 17742— 17749.
27. Crystal structure of the O intermediate of the Leu93 > Ala mutant of bacteriorhodopsin / J. Zhang [и др.] // Proteins: Structure, Function, and Bioinformatics. — 2012. — т. 80, № 10. — с. 2384—2396.
28. Toth-Boconadi R., Keszthelyi L., Stoeckenius W. Photoexcitation of the O-intermediate in bacteriorhodopsin mutant L93A // Biophysical journal. — 2003. — т. 84, № 6. — с. 3857—3863.
29. Static and time-resolved absorption spectroscopy of the bacteriorhodopsin mutant Tyr-185. fwdarw. Phe: Evidence for an equilibrium between bR570 and an O-like species / S. Sonar [и др.] // Biochemistry. — 1993. — т. 32, № 9. — с. 2263—2271.
30. Fourier transform Raman spectroscopy of the bacteriorhodopsin mutant Tyr-185. fwdarw. Phe: Formation of a stable O-like species during light adaptation and detection of its transient N-like photoproduct / P. Rath [и др.] // Biochemistry. — 1993. — т. 32, № 9. — с. 2272—2281.
31. FTIR difference spectroscopy of the bacteriorhodopsin mutant Tyr-185. fwdarw. Phe: Detection of a stable O-like species and characterization of its photocycle at low temperature / Y. He [и др.] // Biochemistry. — 1993. — т. 32, № 9. — с. 2282—2290.
32. Existence of two O-like intermediates in the photocycle of Acetabularia rhodopsin II, a light-driven proton pump from a marine alga / J. Tamogami [и др.] // Biophysics and physicobiology. — 2017. — т. 14. — с. 49—55.
33. An assessment of water placement algorithms in quantum mechanics/molecular mechanics modeling: the case of rhodopsins’ first spectral absorption band maxima / D. M. Nikolaev [и др.] // Physical Chemistry Chemical Physics. — 2020. — т. 22, № 32. — с. 18114—18123.
34. Catalysis of Ground State cis to trans Isomerization of Bacteriorhodopsin’s Retinal Chromophore by a Hydrogen-Bond Network / N. Elghobashi- Meinhardt [и др.] // The Journal of membrane biology. — 2018. — т. 251, № 3. — с. 315—327.
35. Shibata M., Tanimoto T., Kandori H. Water molecules in the Schiff base region of bacteriorhodopsin // Journal of the American Chemical Society. — 2003. — т. 125, № 44. — с. 13312—13313.
36. Kandori H. Role of internal water molecules in bacteriorhodopsin // Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Bioenergetics. — 2000. — т. 1460, № 1. — с. 177—191.
37. Shibata M., Kandori H. FTIR studies of internal water molecules in the Schiff base region of bacteriorhodopsin // Biochemistry. — 2005. — т. 44, № 20. — с. 7406—7413.
38. Photocycle of Sensory Rhodopsin II from Halobacterium salinarum (Hs SRII): Mutation of D103 Accelerates M Decay and Changes the Decay Pathway of a 13-cis O-like Species / G. Dai [и др.] // Photochemistry and photobiology. — 2018. — т. 94, № 4. — с. 705—714.
39. Crystal structures of an O-like blue form and an anion-free yellow form of pharaonis halorhodopsin / S. Kanada [и др.] // Journal of molecular biology. — 2011. — т. 413, № 1. — с. 162—176.
40. Structures of the archaerhodopsin-3 transporter reveal that disordering of internal water networks underpins receptor sensitization / J. F. B. Juarez [и др.] // Nature communications. — 2021. — т. 12, № 1. — с. 1—10.
41. AlignMe—a membrane protein sequence alignment web server / M. Stamm [и др.] // Nucleic acids research. — 2014. — т. 42, W1. — W246—W251.
42. Zhang Y. I-TASSER server for protein 3D structure prediction // BMC bioinformatics. — 2008. — т. 9, № 1. — с. 1—8.
43. Morozenko A., Stuchebrukhov A. Dowser++, a new method of hydrating protein structures // Proteins: Structure, Function, and Bioinformatics. — 2016. — т. 84, № 10. — с. 1347—1357.
44. The ONIOM method and its applications / L. W. Chung [и др.] // Chemical reviews. — 2015. — т. 115, № 12. — с. 5678—5796.
45. Gaussian 09w reference / A. Frisch [и др.] // Wallingford, USA, 25p. — 2009.
46. Neese F. The ORCA program system // Wiley Interdisciplinary Reviews: Computational Molecular Science. — 2012. — т. 2, № 1. — с. 73—78.
47. PROPKA3: consistent treatment of internal and surface residues in empirical pKa predictions / M. H. Olsson [и др.] // Journal of chemical theory and computation. — 2011. — т. 7, № 2. — с. 525—537.
48. Chipot C., Pohorille A. Free energy calculations // Springer series in chemical physics. — 2007. — т. 86. — с. 159—184.
49. Saint Clair E. C. FTIR difference and resonance raman spectroscopy of rhodopsins with applications to optogenetics : дис. ... канд. / Saint Clair Erica C. — Boston University, 2013.
50. Characterization of the branched-photocycle intermediates P and Q of bacteriorhodopsin / N. B. Gillespie [и др.] // The Journal of Physical Chemistry B. — 2002. — т. 106, № 51. — с. 13352—13361.
51. Watanabe H. C., Ishikura T., Yamato T. Theoretical modeling of the O-intermediate structure of bacteriorhodopsin // Proteins: Structure, Function, and Bioinformatics. — 2009. — т. 75, № 1. — с. 53—61.