Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Пластика мочевого пузыря с применением тканеинженерной конструкции (экспериментальное исследование)

Работа №127093

Тип работы

Дипломные работы, ВКР

Предмет

медицина

Объем работы55
Год сдачи2023
Стоимость4210 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
35
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


Список сокращений и условных обозначений 4
Введение 5
Глава 1. Обзор литературы 8
1.1. Основные особенности микроцистиса 8
1.2. Консервативная терапия микроцистиса 10
1.3. Хирургическое лечение микроцистиса 13
1.4. Пластика мочевого пузыря в рамках тканевой инженерии 15
1.5. Биоматериалы, подходящие для реконструкции мочевого пузыря.. 16
1.5.1. Выбор скаффолда 16
1.5.2. Выбор клеточного компонента 17
Глава 2. Материалы и методы 20
2.1. Общая характеристика материалов и методов исследования 20
2.2. Характеристика лабораторных животных 21
2.3. Первый этап: 22
2.3.1. Выбор материалов и создание скаффолдов 22
2.3.2. Выделение, культивирование стволовых клеток, создание меток
для последующей их идеитификации: 23
2.3.3. Формирование тканеинженерной конструкции 25
2.4. Второй этап 26
2.4.2. Период наблюдения и эфтаназии 28
2.4.3. Методы оценки эффективности 29
2.5. Статистическая обработка данных 31
Глава 3. Результаты 32
3.1. Оценка выживаемости и динамики массы тела кроликов перед
операцией и в конце периода наблюдения: 32
3.2. Оценка анестетической емкости мочевого пузыря 33
3.3. Результаты мскт мочевого пузыря кролика в послеоперационном
периоде 34
3.4. Оценка зоны имплантации 36
3.4.1. Макроскопическое исследование 36
3.4.2. Гистологическое исследование 37
Заключение 42
Выводы 45
Список литературы 46


Одним из инвалидизирующих заболеваний в урологии является малый мочевой пузырь (МП), к основным причинам которого относят интерстициальный цистит/ синдром болезненного мочевого пузыря, лучевой цистит, туберкулез мочевого пузыря и др. Качество жизни таких пациентов резко снижено и хирургическое лечение остается незаменимым.
Для аугментационной цистопластики или формирования неоцистиса применяют различные отделы желудочно-кишечного тракта, в основном - сегмент подвздошной кишки (Sharma S. et al., 2022). К основным осложнениям относят инфекции верхних мочевых путей, впоследствии приводящие к хронической почечной недостаточности, метаболические нарушения, недержание или задержка мочи, а также и осложнения, связанные с несостоятельностью анастомозов (Комяков Б.К., 2017). Создание и внедрение в клиническую практику тканеинженерной конструкции (ТИК) для аугментации мочевого пузыря может стать альтернативой для лечения больных с микроцистисом (Wang X. et al., 2022).
Довольно много опубликовано экспериментальных работ, ряд клинических исследований, посвященных тканевой инженерии мочевого пузыря. Зарубежные ученые давно предпринимают успешные попытки создания тканевых аналогов стенки МП (Pariente J.L. et al., 2002), применение «биоинженерных тканей» для трансплантации опробовано в экспериментальных условиях. В опыте in vivo МП у 14 собак успешно замещён резервуаром, выращенным in vitro (Oberpenning F. et al., 1999). После удачного эксперимента на лабораторных животных сгенерированный in vitro резервуар трансплантирован человеку (A. Atala, 2006; Yoo J.J. et al., 2011). Однако, дальнейших публикаций не последовало, а тканеинженерные конструкции не заменили илеоцистопластику.
В недавно проведенном экспериментальном исследовании на базе ФГБУ «СПб НИИФ» Минздрава России впервые в мировой практике на экспериментальной модели парциальной резекции мочевого пузыря выполнена имплантация тканеинженерного лоскута мочевого пузыря, содержащего мезенхимные стволовые клетки (МСК) кролика, и изучена жизнеспособность in situ введенных в область дефекта мочевого пузыря клеток (Орлова Н. В., 2022). Применение тканеинженерной конструкции, состоящей из композитной матрицы и МСК кролика, оказалось эффективным для реконструкции небольших дефектов мочевого пузыря. Восстановление морфологической структуры стенки МП подтверждено гистологически. Полученные результаты диктуют необходимость дальнейших исследований в области реконструкции стенки МП.
Цель: изучить возможность замещения участков мочевого пузыря тканеинженерной конструкцией разного диаметра.
Задачи:
1. Оценить анестетическую емкость (АЕ) мочевого пузыря до и после имплантации тканеинженерной конструкции.
2. Оценить морфологические характеристики места имплантации тканеинженерной конструкции через 1 и 3 месяца после операции.
3. Сравнить морфо-функциональные результаты имплантации тканеинженерной конструкции при замещении 5 мл и 10 мл объема мочевого пузыря.
Научная новизна
В экспериментальных условиях доказана возможность замещения различного объема мочевого пузыря при использовании созданной тканеинженерной конструкции в качестве материала для заместительной цистопластики.
Теоретическая и практическая значимость
В исследовании экспериментально обоснована возможность применения тканеинженерной конструкции на основе поли-Ь,Ь-лактида и фиброина шелка для лечения различных патологических состояний мочевого пузыря, сопровождающихся уменьшением емкости.


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


Представленная работа подтверждает, что использование тканеинженерной конструкции на основе поли-Ь,Ь-лактида с фиброином шелка, содержащая мезенхимные стволовые клетки, эффективна в плане восстановления дефектов стенки МП кроликов при замещении 5 и 10 мл объема мочевого пузыря.
Произведено двухэтапное экспериментальное контролируемое исследование, на первом этапе которого выполнялось формирование тканеинженерной конструкции, на втором этапе осуществлена экспериментальная заместительная цистопластика лабораторным животным с последующим мониторингом их состояния, оценкой полученных результатов при использовании методов наблюдения, лабораторной и инструментальной диагностики, статистической обработке данных.
На первом этапе in vitro при использовании мощностей института цитологии РАН синтезирован скаффолд на основе поли-Ь,Ь-лактида с фиброином шелка (1:1), впоследствии матрица заселена предварительно выделенными и культивированными МСК для получения искомой тканеинженерной конструкции.
На втором этапе in vivo произведена экспериментальная заместительная цистопластика лабораторным животным (кроликам породы «шиншилла», n=12), разделенным на 2 группы в зависимости от планируемого объема замещения (5 и 10 мл объема МП соответственно) с последующим мониторингом состояния и выведением из эксперимента через 1 и 3 месяца с оценкой полученных результатов.
Для оценки результатов экспериментальной цистопластики использовались:
1) Контроль состояния животных с динамической оценкой массы тела животных;
2) Контроль выживаемости животных;
3) Измерение анестетической емкости МП до операции и после произведенного оперативного вмешательства;
4) МСКТ органов брюшной полости и малого таза;
5) Морфологическое исследование;
6) Статистическая обработка данных.
Выбор данных методов обусловлен необходимостью: оценить состояние животных на протяжении всего периода исследования, оценить анестетическую емкость МП до и после экспериментальной цистопластики, оценить морфологические характеристики места имплантации ТИК и сравнить морфо-функциональные результаты имплантации тканеинженерной конструкции при замещении 5 и 10 мл объема мочевого пузыря.
Полученные результаты позволили сформировать описанное выше заключение о возможности замещения участков мочевого пузыря тканеинженерными конструкциями диаметрами, соответствующими 5 и 10 мл объема МП на основании:
• Незначительного нарастания массы тела кроликов и 100%
выживаемости их в послеоперационном периоде;
• Отсутствия значимых различий между АЕ МП до и после
произведенного оперативного вмешательства;
• Положительных характеристик динамики регенераторных процессов в области замещения дефекта стенки МП;
• Сопоставимости результатов замещения 5 и 10 мл объема мочевого пузыря с сохранением герметичности и возможности выполнять функцию резервуара для мочи.
На сегодняшний день в изучении применения ресурсов регенераторной медицины, в частности в аспекте урологии, остаются нерешенные вопросы - о дальнейшем поиске новых возможностей и ресурсов для замещения дефектов / полного замещения мочевого пузыря, о разработке альтернатив пластике с применением участков желудочно-кишечного тракта, грозящей пациентам не только рядом послеоперационных осложнений, но и отсутствием искомой возможности повышения качества жизни впоследствии, о изучении применения различных методик восстановления морфологических и функциональных характеристик мочевого пузыря человека. Изучение применения разработок тканевой биоинженерии имеет многообещающий потенциал не только в вопросе замещения дефектов мочевого пузыря, но и в превенции послеоперационных осложнений, как грозящих отсутствием улучшения качества жизни пациентов после операции, так и подвергающих риску саму жизнь людей, страдающих такими инвалидизирующими патологиями мочевого пузыря, остро нуждающимися в разрешении, как, например, микроцистис.



1. Демидов А. А. и др. Консервативные методы лечения микроцистиса у детей с миелодисплазией //Детская хирургия. - 2015. - Т. 19. - №. 5. - С. 32-38.
2. Зубань, О.Н. Хирургическая коррекция малого мочевого пузыря / О.Н. Зубань, Б.К. Комяков. - СПб: Стикс. - 2011. - 227с.
3. Комяков Б. К. Полное замещение обоих мочеточников и мочевого пузыря подвздошной кишкой у больной микроцистисом и болезнью Ормонда //Урология. - 2021. - №. 1. - С. 107-111.
4. Комяков Б. К. Реконструкция мочевых путей сегментами желудочно-кишечного тракта. Абдоминальная урология //Материалы Конгресса Российского общества урологов.-19-20 сентября. - 2019. - С. 289-294.
5. Комяков Б. К. Технические особенности кишечной пластики мочеточников. Часть 6: одновременная пластика мочеточников и мочевого пузыря //Урология. - 2017. - №. 1. - С. 12-15.
6. Котов С. В. Анализ качества жизни пациентов после радикальной цистэктомии с формированием ортотопического необладдера или илеокондуита //Вестник урологии. - 2021. - Т. 9. - №. 1. - С. 47-55.
7. Кульчавеня Е. В., Краснов В. А. Болезни мочевого пузыря //Наука. - 2012. - C. 187.
8. Кульчавеня Е. В., Краснов В. А. Избранные вопросы фтизиоурологии //Наука. - 2010. - C. 142.
9. Муравьев, А.Н. Роль суправезикального отведения мочи в комплексном лечении больных туберкулезом почек и мочеточников / А.Н. Муравьев, О.Н. Зубань // Урология. - 2012. - №. 6. - С. 16-20.
10. Орлова Н. В. Аллогенные тканеинженерные продукты в экспериментальной реконструкции мочевого пузыря: возможности применения //Вестник Башкирского государственного медицинского университета. - 2019. - №. 5. - С. 318-325.
11. Орлова Н. В. Аугментация мочевого пузыря с применением аллогенных тканеинженерных конструкций //Гены и клетки. - 2022. - Т. 17. - №. 3.
- С. 167-168.
12. Орлова Н. В. Положительный опыт трансплантации
многокомпонентного композита, содержащего аллогенные
мезенхимальные стволовые клетки после резекции стенки мочевого пузыря кролика (описание одного эксперимента) //Экспериментальная и клиническая урология. - 2019. - №. 4. - С. 24-28.
13. Семенов С. А., Куренков А. В. Туберкулез мочевого пузыря: оценка эффективности аугментационной илеоцистопластики с позиции качества жизни //Врач-аспирант. - 2013. - Т. 61. - №. 6.1. - С. 132-137.
14. Сивков А. В. Оценка социальной дезадаптации и выраженности депрессивных расстройств у пациентов с нейрогенной дисфункцией мочевого пузыря до и после ботулинотерапии //Экспериментальная и клиническая урология. - 2015. - №. 3. - С. 120-127.
15. Холтобин Д. П. Туберкулез мочевого пузыря 4-й стадии: как восстановить мочеиспускание? //Урология. - 2014. - №. 5. - С. 26-29.
16. Abbas T. O. Current status of tissue engineering in the management of severe hypospadias //Frontiers in Pediatrics. - 2018. - Vol. 5. - P. 283.
17. Affas S. Augmentation cystoplasty of diseased porcine bladders with bi-layer silk fibroin grafts //Tissue Engineering Part A. - 2019. - Vol. 25. - Iss. 11-12.
- P. 855-866.
18. Armatys S. A. Use of ileum as ureteral replacement in urological reconstruction //The Journal of urology. - 2009. - Vol. 181. - Iss. 1. - P. 177-181.
19. Atala A. Tissue-engineered autologous bladders for patients needing cystoplasty //The lancet. - 2006. - Vol. 367. - Iss. 9518. - P. 1241-1246.
20. Aufderklamm S. Collagen cell carriers seeded with human urothelial cells for urethral reconstructive surgery: first results in a xenograft minipig model //World journal of urology. - 2017. - Vol. 35. - P. 1125-1132.
21. Bouhout, S. Maintenance of bladder urothelia integrity and successful urothelialization of various tissue-engineered mesenchymes in vitro / S. Bouhout, J. Tremblay, S. Bolduc // In Vitro Cell Dev. Biol. Anim. - 2015. - Vol.51 -- Iss. 9. - P. 922-931.
22. Bricker E. M. Bladder substitution after pelvic evisceration //Surgical Clinics of North America. - 1950. - Vol. 30. - Iss. 5. - P. 1511-1521.
23. Brossard C. Molecular Mechanisms and Key Processes in Interstitial, Hemorrhagic and Radiation Cystitis //Biology. - 2022. - Vol. 11. - Iss. 7. - P. 972.
24. Cantu H. The inflammatory contracted bladder //Current Bladder Dysfunction Reports. - 2019. - Vol. 14. - P. 67-74.
25. Casarin M. Porcine Small Intestinal Submucosa (SIS) as a Suitable scaffold for the creation of a tissue-engineered urinary conduit: Decellularization, biomechanical and biocompatibility characterization using new approaches //International Journal of Molecular Sciences. - 2022. - Vol. 23. - Iss. 5. - P. 2826.
26. Casarin M. Bladder Substitution: The Role of Tissue Engineering and Biomaterials //Processes. - 2021. - Vol. 9. - Iss. 9. - P. 1643.
27. Casarin M. Tissue Engineering and Regenerative Medicine in Pediatric Urology: Urethral and Urinary Bladder Reconstruction //International Journal of Molecular Sciences. - 2022. - Vol. 23. - Iss. 12. - P. 636
28. Cervigni M. A randomized, open-label, multicenter study of the efficacy and safety of intravesical hyaluronic acid and chondroitin sulfate versus dimethyl sulfoxide in women with bladder pain syndrome/interstitial cystitis //Neurourology and Urodynamics. - 2017. - Vol. 36. - Iss. 4. - P. 1178-1186.
29. Clemens J. Q. Diagnosis and treatment of interstitial cystitis/bladder pain syndrome //The Journal of urology. - 2022. - Vol. 208. - Iss. 1. - С. 34-42.
30. Colemeadow J. Clinical management of bladder pain syndrome/interstitial cystitis: a review on current recommendations and emerging treatment options //Research and reports in urology. - 2020. - P. 331-343.
31. Colomba C. A Case of Epididymo-orchitis after intravesical bacille Calmette- Guerin therapy for superficial bladder carcinoma in a patient with latent tuberculosis infection //Infectious Agents and Cancer. - 2016. - Vol. 11. - P. 1-3.
32. Dallosso H. M. The association of diet and other lifestyle factors with the onset of overactive bladder: a longitudinal study in men //Public health nutrition. - 2004. - Vol. 7. - Iss. 7. - P. 885-891.
33. de C Williams A. C. Psychological therapies for the management of chronic pain (excluding headache) in adults //Cochrane database of systematic reviews. - 2020. - Iss. 8. - P. 47-54.
34. de Cassan D. Blending chitosan-g-poly (caprolactone) with poly (caprolactone) by electrospinning to produce functional fiber mats for tissue engineering applications //Journal of Applied Polymer Science. - 2020. - Vol. 137. - Iss. 18. - P. 48650.
35. El-Taji O. Bladder reconstruction: the past, present and future //Oncology letters. - 2015. - Vol. 10. - Iss. 1. - P. 3-10.
36. Fang Y. Biodegradable core-shell electrospun nanofibers based on PLA and y-PGA for wound healing //European Polymer Journal. - 2019. - Vol. 116. - P. 30-37.
37. Figueiredo A. A. Epidemiology of urogenital tuberculosis worldwide //International journal of urology. - 2008. - Vol. 15. - Iss. 9. - P. 827-832.
38. Figueiredo A. A., Lucon A. M. Urogenital tuberculosis: update and review of 8961 cases from the world literature //Reviews in urology. - 2008. - Vol. 10. - Iss. 3. - P. 207.
39. Fry C. H., Vahabi B. The role of the mucosa in normal and abnormal bladder function //Basic & clinical pharmacology & toxicology. - 2016. - Vol. 119. - P. 57-62.
40. Gupta N. P. Reconstructive bladder surgery in genitourinary tuberculosis //Indian journal of urology: IJU: journal of the Urological Society of India. - 2008. - Vol. 24. - Iss. 3. - P. 382.
41. Hanno P. M. Diagnosis and treatment of interstitial cystitis/bladder pain syndrome: AUA guideline amendment //The Journal of urology. - 2015. - Vol. 193. - Iss. 5. - P. 1545-1553.
42. Hemal A. K., Aron M. Orthotopic neobladder in management of tubercular thimble bladders: initial experience and long-term results //Urology. - 1999.
- Vol. 53. - Iss. 2. - P. 298-301.
43. Horst M. Tissue Engineering in Pediatric Bladder Reconstruction—The Road to Success //Frontiers in Pediatrics. - 2019. - Vol. 7. - P. 91.
44. Hurst R. E. Increased bladder permeability in interstitial cystitis/painful bladder syndrome //Translational andrology and urology. - 2015. - Vol. 4. - Iss. 5. - P. 563.
45. Jaal J., Dorr W. Radiation induced inflammatory changes in the mouse bladder: the role of cyclooxygenase-2 //The Journal of urology. - 2006. - Vol. 175. - Iss. 4. - P. 1529-1533.
46. Jaal J., Dorr W. Radiation-induced damage to mouse urothelial barrier //Radiotherapy and Oncology. - 2006. - Vol. 80. - Iss. 2. - P. 250-256.
47. Jhang J. F. Current understanding of the pathophysiology and novel treatments of interstitial cystitis/bladder pain syndrome //Biomedicines. - 2022. - Vol. 10. - Iss. 10. - P. 2380.
48. Johnson S. C. Tissue engineering and conduit substitution //Urologic Clinics.
- 2018. - Vol. 45. - Iss. 1. - P. 133-141.
49. Keay S. K. Evidence for bladder urothelial pathophysiology in functional bladder disorders //BioMed research international. - 2014. - Vol. 2014. - P. 865463
50. Kingham, P.J. Stimulating the neurotrophic and angiogenic properties of human adipose-derived stem cells enhances nerve repair. / P.J. Kingham, M.K. Kolar, L.N. Novikova et al. // Stem Cells Dev. - 2014. - Vol. 23. - P. 741-754.
51. Krishnamoorthy S. Aspects of evolving genito urinary tuberculosis-A profile of genito urinary tuberculosis (GUTB) in 110 patients //Journal of Clinical and Diagnostic Research: JCDR. - 2017. - Vol. 11. - Iss. 9. - P. PC01.
52. Krotoszyner M. The cystoscopic diagnosis of contracted bladder //Journal of the American Medical Association. - 1917. - Vol. 68. - Iss. 9. - P. 687-691.
53. Kulchavenya E. V. Diagnosis and treatment of cystitis: more questions than answers? //Urologiia. - 2016. - Iss. 5. - P. 37-42.
54. Kulchavenya E., Cherednichenko A. Urogenital tuberculosis, the cause of ineffective antibacterial therapy for urinary tract infections //Therapeutic Advances in Urology. - 2018. - Vol. 10. - Iss. 3. - P. 95-101.
55. Kulchavenya E. Urogenital tuberculosis: classification, diagnosis, and treatment //European Urology Supplements. - 2016. - Vol. 15. - Iss. 4. - P. 112-121.
56. Lee S. 3D brain angiogenesis model to reconstitute functional human blood-brain barrier in vitro //Biotechnology and bioengineering. - 2020. - Vol. 117. - Iss. 3. - P. 748-762. Lee, S.; Chung, M.;
57. Lee Y. L. Elucidating mechanisms of bladder repair after hyaluronan instillation in ketamine-induced ulcerative cystitis in animal model //The American Journal of Pathology. - 2017. - Vol. 187. - Iss. 9. - P. 1945-1959.
58. Lin N. Y. C. Renal reabsorption in 3D vascularized proximal tubule models //Proceedings of the National Academy of Sciences. - 2019. - Vol. 116. - Iss. 12. - P. 5399-5404.
59. Lind J. U. Instrumented cardiac microphysiological devices via multimaterial three-dimensional printing //Nature materials. - 2017. - Vol. 16. - Iss. 3. - P. 303-308.
60. Liu D. A review of manufacturing capabilities of cell spheroid generation technologies and future development //Biotechnology and Bioengineering. - 2021. - Vol. 118. - Iss. 2. - P. 542-554.
61. Lopez S. R., Mangir N. Current standard of care in treatment of bladder pain syndrome/interstitial cystitis //Therapeutic Advances in Urology. - 2021. - Vol. 13. - P. 17562872211022478.
62. Ma D. Research progress of cell sheet technology and its applications in tissue engineering and regenerative medicine / D. Ma, L. Ren, T. Mao // Sheng Wu Yi Xue Gong Cheng Xue Za Zhi. - 2014. - Vol. 31, Issue 5. - P. 1164-67.
63. Mao W. Cost-effectiveness analysis of two kinds of bladder cancer urinary diversion: Studer versus Bricker //Translational Andrology and Urology. - 2020. - Vol. 9. - Iss. 3. - P. 1113.
64. Mazini L. Hopes and limits of adipose-derived stem cells (ADSCs) and mesenchymal stem cells (MSCs) in wound healing //International journal of molecular sciences. - 2020. - Vol. 21. - Iss. 4. - P. 1306.
65. Mittal A. Surgical management of genitourinary tuberculosis: Our experience and review of literature //Polish Journal of Surgery. - 2020. - Vol. 92. - Iss. 6. - P. 1-6.
66. Muneer A. Urogenital tuberculosis—epidemiology, pathogenesis and clinical features //Nature Reviews Urology. - 2019. - Vol. 16. - Iss. 10. - P. 573-598.
67. Nickel J. C. Clinical phenotyping of women with interstitial cystitis/painful bladder syndrome: a key to classification and potentially improved management //The Journal of urology. - 2009. - Vol. 182. - Iss. 1. - P. 155-160.
68. Nishikawa S. The promise of human induced pluripotent stem cells for research and therapy //Nature reviews Molecular cell biology. - 2008. - Vol. 9. - Iss. 9. - P. 725-729.
69. Oberpenning F. De novo reconstitution of a functional mammalian urinary bladder by tissue engineering //Nature biotechnology. - 1999. - Vol. 17. - Iss. 2. - P. 149-155.
70. Olson L. E. A systematic review of the literature on cystodistension in bladder pain syndrome //International Urogynecology Journal. - 2018. - Vol. 29. - P. 251-257.
71. Panwar V. K. Small contracted bladders posing bigger problems: Etiology, presentation, and management and a short review of literature //Journal of Family Medicine and Primary Care. - 2022. - Vol. 11. - Iss. 5. - P. 2246.
72. Pariente J. L., Atala A. In vitro biocompatibility evaluation of naturally derived and synthetic biomaterials using normal human bladder smooth muscle cells //The Journal of urology. - 2002. - Vol. 167. - Iss. 4. - P. 1867-1871.
73. Parsons C. L. Abnormal urinary potassium metabolism in patients with interstitial cystitis //The Journal of urology. - 2005. - Vol. 173. - Iss. 4. - P. 1182-1185.
74. Patnaik S. S. Etiology, pathophysiology and biomarkers of interstitial cystitis/painful bladder syndrome //Archives of gynecology and obstetrics. - 2017. - Vol. 295. - P. 1341-1359.
75. Pederzoli F. Regenerative and engineered options for urethroplasty //Nature Reviews Urology. - 2019. - Vol. 16. - Iss. 8. - P. 453-464.
76. Pokrywczynska M. Human urinary bladder regeneration through tissue engineering-an analysis of 131 clinical cases //Experimental Biology and Medicine. - 2014. - Vol. 239. - Iss. 3. - P. 264-271.
77. Qin D. Urine-derived stem cells for potential use in bladder repair / D. Qin, T. Long, J. Deng, Y. Zhang // Stem Cell. Res. Ther. - 2014. - Vol. 5. - Iss. 3. - P. 69.
78. Schafer F. M., Stehr M. Tissue engineering in pediatric urology-a critical appraisal //Innovative Surgical Sciences. - 2018. - Vol. 3. - Iss. 2. - P. 107-118.
79. Schultz G. S., Wysocki A. Interactions between extracellular matrix and growth factors in wound healing //Wound repair and regeneration. - 2009. - Vol. 17. - Iss. 2. - P. 153-162.
80. Serrano-Aroca A. Bioengineering approaches for bladder regeneration //International Journal of Molecular Sciences. - 2018. - Vol. 19. - Iss. 6. - P. 1796.
81. Sharma S., Basu B. Biomaterials assisted reconstructive urology: The pursuit of an implantable bioengineered neo-urinary bladder //Biomaterials. - 2022. - Vol. 281. - P. 121331.
82. Shie J. H., Kuo H. C. Higher levels of cell apoptosis and abnormal E-cadherin expression in the urothelium are associated with inflammation in patients with interstitial cystitis/painful bladder syndrome //BJU international. - 2011. - Vol. 108. - Iss. 2b. - P. E136-E141.
83. Schultz G. S., Wysocki A. Interactions between extracellular matrix and growth factors in wound healing //Wound repair and regeneration. - 2009. - Vol. 17. - Iss. 2. - P. 153-162.
84. Sihra N. Renal tuberculosis following intravesical bacillus Calmette-Guerin for high-grade non-muscle-invasive bladder cancer //Urology. - 2017. - Vol. 107. - P. e3-e4.
85. Singal A. Tuberculosis of the glans penis: an important differential diagnosis of genital ulcer disease //International journal of STD & AIDS. - 2017. - Vol. 28. - Iss. 14. - P. 1453-1455.
86. Singh A., Bivalacqua T. J., Sopko N. Urinary tissue engineering: challenges and opportunities //Sexual medicine reviews. - 2018. - Vol. 6. - Iss. 1. - P. 35-44.
87. Singh V. Reconstructive surgery for tuberculous contracted bladder: experience of a center in northern India //International urology and nephrology. - 2011. - Vol. 43. - P. 423-430.
88. Sloff M. Tissue engineering in animal models for urinary diversion: a systematic review //PLOS one. - 2014. - Vol. 9. - Iss. 6. - P. e98734.
89. Turner A. M. Generation of a functional, differentiated porcine urothelial tissue in vitro //European urology. - 2008. - Vol. 54. - Iss. 6. - P. 1423-1432.
90. Uchida N. Nanometer-sized extracellular matrix coating on polymer-based scaffold for tissue engineering applications //Journal of biomedical materials research Part A. - 2016. - Vol. 104. - Iss. 1. - P. 94-103.
91. van Ophoven A. Efficacy of pentosan polysulfate for the treatment of interstitial cystitis/bladder pain syndrome: results of a systematic review of randomized controlled trials //Current Medical Research and Opinion. - 2019.
- Vol. 35. - Iss. 9. - P. 1495-1503.
92. Vanneste B. G. L. Development of a management algorithm for acute and chronic radiation urethritis and cystitis //Urologia Internationalis. - 2022. - Vol. 106. - Iss. 1. - P. 63-74.
93. Wang X. Application of biomaterials and tissue engineering in bladder regeneration //Journal of Biomaterials Applications. - 2022. - Т. 36. - Iss. 8.
- С. 1484-1502.
94. Wang J. Renal tuberculosis tends to be low symptoms: how to improve the diagnosis and treatment of renal tuberculosis //Asian Journal of Andrology. - 2016. - Vol. 18. - Iss. 1. - P. 145.
95. Warren L. Highly efficient reprogramming to pluripotency and directed differentiation of human cells with synthetic modified mRNA //Cell stem cell.
- 2010. - Vol. 7. - Iss. 5. - P. 618-630.
96. Witjes J. A. Updated 2016 EAU guidelines on muscle-invasive and metastatic bladder cancer //European urology. - 2017. - Vol. 71. - Iss. 3. - P. 462-475.
97. Wu S. Urothelial differentiation of human umbilical cord-derived mesenchymal stromal cells in vitro / S. Wu, Z. Cheng, G. Liub, et al. // Analytical Cellular Pathology. - 2013. - Vol. 36. - P. 63-69.
98. Yamanaka S. Induction of pluripotent stem cells from mouse fibroblasts by four transcription factors //Cell proliferation. - 2008. - Vol. 41. - P. 51-56.
99. Yoo J. J. Regenerative medicine strategies for treating neurogenic bladder //International neurourology journal. - 2011. - Vol. 15. - Iss. 3. - P. 109.
100. Zhou Q. A comprehensive review of the therapeutic value of urine-derived stem cells //Frontiers in Genetics. - 2022. - Vol. 12. - P. 2623.
101. Zwaans B. M. M. Modeling of chronic radiation-induced cystitis in mice //Advances in radiation oncology. - 2016. - Vol. 1. - Iss. 4. - P. 333-343.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.



Подобные работы


©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ