Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Проявление адаптационного потенциала Candida albicans в смешанных биопленках с лактобактериями на фоне изменения температуры и рН

Работа №126991

Тип работы

Дипломные работы, ВКР

Предмет

медицина

Объем работы65
Год сдачи2023
Стоимость4270 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
26
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ 3
ВВЕДЕНИЕ 4
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 7
1.1. Биоплёнки 7
1.2. Гетерогенность биоплёнок и влияние стрессовых факторов 13
1.3. Способы воздействия на биопленки 16
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ 22
2.1. Объекты исследования 22
2.1.1. Lactobacillus plantarum 8PA-3 22
2.1.2. Candida albicans 23
2.1.3. Candida tropicalis 31
2.1.4. Candida parapsilosis 31
2.1.5. Молочная кислота 32
2.2. Методы исследования 34
ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ 36
3.1. Метод O’Tolle 36
3.2. Метод сканирующей электронной микроскопии 50
3.3. Заключение 59
3.4. Выводы 61
Список литературы 61
Благодарности 65


Современные представления об инфекционных заболеваниях человека включают в себя понятие о способности микроорганизмов к сосуществованию в виде биоплёночных сообществ. Формирование биоплёнок ведёт к значительному снижению эффективности терапии, повышает количество осложнений, вероятность хронизации и генерализации инфекционного процесса [1,2]. Доказана существенная роль биоплёнок в появлении госпитальных штаммов и их связь с катетер-ассоциированными, вентилятор-ассоциированными инфекциями. Эта особенность характерна для большого количества микроорганизмов, включая микроскопические грибы [3]. Биопленки могут повышать устойчивость микроорганизмов к ультрафиолетовому излучению, температурному фактору и pH, высокому содержанию солей в среде, высокому давлению, недостатку питательных веществ, антибиотикам и другим неблагоприятным факторам [4]. Именно поэтому исследованию способности микроорганизмов к формированию сообществ посвящено множество работ в области фундаментальных биологических наук и в сфере клинических дисциплин. Одним из наиболее перспективных направлений является анализ межвидовых взаимодействий микроорганизмов, способных к биоплёнкообразованию.
Микроскопические грибы рода Candidaявляются наиболее распространенной причиной развития грибковых инфекций. При проявлении патогенных свойств клетки Candida spp.могут изменять свои морфофизиологические параметры и образовывать микробные сообщества в виде биоплёнок. Сформированные биопленки Candida spp.снижают эффективность воздействия противогрибковых препаратов и приводят к появлению резистентных штаммов.
В организме человека микроскопические грибы рода Candida присутствуют в составе нормальной микробиоты, преимущественно ротовой полости и влагалища; при этом в данных областях одними из доминирующих микроорганизмов являются грамположительные бактерии рода Lactobacillus [5,6]. Бактерии рода Lactobacillusобладают способностью к выделению ряда веществ, в частности, молочной кислоты, которые потенциально могут влиять на другие микроорганизмы, в том числе и на биоплёнки микроскопических грибов.
Настоящее исследование посвящено анализу эффекта, оказываемого супернатантом лактобактерий Lactobacillus plantarum8РА-3 на клетки и биоплёнки грибов рода Candida.На данный момент в научной литературе есть ряд исследований, посвящённых этому вопросу, однако их результаты зачастую противоречивы и не позволяют сделать выводы о влиянии внешних факторов на действие супернатанта лактобактерий. Необходимо учитывать, что инфекционные процессы, в том числе первичный и вторичный кандидоз, зачастую сопровождаются реакциями макроорганизма, проявляющимися в том числе изменением базальной температуры и кислотно-основного равновесия. Эффект, оказываемый лактобактериями на клетки и биоплёнки микроскопических грибов, может изменяться в зависимости от факторов внешней среды.
Цель исследования
Анализ деструктивных изменений в клетках и биоплёнках микроскопических грибов рода Candida spp.при воздействии супернатанта лактобактерий Lactobacillus plantarum8РА-3 на фоне изменения температурного режима и уровня pH среды культивирования.
Задачи исследования
1. Оценить способность микроскопических грибов рода Candidaк формированию биоплёнок при воздействии супернатанта Lactobacillus plantarum8РА-3 при разных температурных режимах культивирования.
2. Изучить влияние действия раствора фосфатного буфера и молочной кислоты на клетки грибов рода Candidaи их биоплёнки.
3. Провести анализ биоплёнкообразования и морфологических изменений в клетках грибов рода Candidaпри сочетанном воздействии супернатанта Lactobacillus plantarum8РА-3 и раствора фосфатного буфера либо молочной кислоты.


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


В контрольных образцах всех исследованных культур Candidaвыявлены многослойные скопления клеток в виде биопленок. Микроскопические грибы имели характерную стандартную форму и размеры клеток. Добавление буфера и молочной кислоты в контрольные образцы к статистически значимым изменениям не приводило. Добавление в среду выращивания грибов супернатанта L. plantarum 8РА-3 вызывало при 37 и 39°С уменьшение площади формирования биопленок в 3-72 раза, увеличение численности деструктурированных и лизированных клеток.
Сочетанное воздействие супернатанта L. plantarum8РА-3 с буфером или кислотой не приводило к существенным изменениям указанных выше параметров роста грибов при температуре 30 и 39°С. Поскольку при этих условиях ожидалось соответственно ингибирование и потенцирование эффекта, оказываемого молочной кислотой, можно предположить, что основным механизмом воздействия супернатанта не являлось воздействие молочной кислотой. Лактобактерии L. plantarum8РА-3 способны вырабатывать и другие факторы агрессии [49,50], которые, вероятно, вносят основной вклад в подавление роста и биоплёнкообразования грибов рода Candida.
В опытных образцах С. albicans,С. tropicalisи C. parapsilosisпри 37 и 39°С наблюдали статистически значимое увеличение размеров клеток, по сравнению с контролем, а также изменение структуры клеточной стенки. В то же время существенных изменений при температуре 30°С обнаружено не было. Микроскопические грибы рода Candidaобладают сложным механизмом регуляции метаболических процессов, который влияет в том числе и на размеры клеток [51], поэтому увеличение размера клеток может быть как проявлением реакции непосредственно клеток микроскопических грибов, так и патологическим процессом, развившимся в результате агрессивного влияния факторов, выделяемых лактобактериями L. plantarum.
Таким образом, в ходе анализа полученных данных обнаружено, что супернатант L. plantarum 8РА-3 вызывал существенное снижение способности к биоплёнкообразованию всех исследованных видов грибов Candida.На уровне световой микроскопии выявлены признаки ингибирования развития биопленок Candida spp.супернатантом лактобактерий. На уровне электронной микроскопии выявлены признаки изменения морфологических свойств клеток Candida spp.Изменение pН среды до 3.5 не отразилось на морфологических свойствах клеток и биопленок грибов. Значительные изменения морфологических свойств клеток грибов при воздействии супернатанта свидетельствовали о деструктивных процессах, ведущих к их деградации.
Вырабатываемые лактобактериями Lactobacillus plantarum8РА-3 факторы агрессии оказывали выраженное подавляющее действие на клетки и биоплёнки микроскопических грибов рода Candida, причём молочная кислота не являлась основным фактором агрессии. Этот эффект находится в прямой зависимости с температурными условиями и не зависит от pH окружающей среды.



1. Roy R. et al. Strategies for combating bacterial biofilms: A focus on anti¬biofilm agents and their mechanisms of action // Virulence. 2017. Vol. 9, № 1. P. 522-554.
2. Aparna M.S., Yadav S. Biofilms: microbes and disease // Braz J Infect Dis. 2008. Vol. 12, № 6. P. 526-530.
3. Савилов Е.Д. et al. Бактериальные биоплёнки при гнойно-септических инфекциях: 5 // Acta Biomedica Scientifica. Россия, Иркутск: Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека», 2019. Vol. 4, № 5. P. 38-42.
4. Yin W. et al. Biofilms: The Microbial “Protective Clothing” in Extreme Environments // Int J Mol Sci. 2019. Vol. 20, № 14. P. 3423.
5. Zijnge V. et al. Oral biofilm architecture on natural teeth // PLoS One. 2010. Vol. 5, № 2. P. e9321.
6. Kalia N., Singh J., Kaur M. Microbiota in vaginal health and pathogenesis of recurrent vulvovaginal infections: a critical review // Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2020. Vol. 19, № 1. P. 5.
7. Рыбальченко Оксана Владимировна, Бондаренко Виктор Михайлович, Добрица Валерий Павлович. Атлас ультраструктуры микробиоты кишечника человека. СПб: ИИЦ ВММ, 2008. 112 p.
8. Donlan R.M., Costerton J.W. Biofilms: Survival Mechanisms of Clinically Relevant Microorganisms // Clin Microbiol Rev. 2002. Vol. 15, № 2. P. 167¬193.
9. Gulati M., Nobile C.J. Candida albicans biofilms: development, regulation, and molecular mechanisms // Microbes Infect. 2016. Vol. 18, № 5. P. 310-321.
10. Donlan R.M. Biofilms: Microbial Life on Surfaces // Emerg Infect Dis. 2002. Vol. 8, № 9. P. 881-890.
11. Хрянин А.А. БИОПЛЁНКИ МИКРООРГАНИЗМОВ: СОВРЕМЕННЫЕ ПРЕДСТАВЛЕНИЯ: 5-6 // Антибиотики и химиотерапия. Россия, Москва: Общество с ограниченной ответственностью «Издательство ОКИ», 2020. Vol. 65, № 5-6. P. 70-77.
12. Рыбальченко О.В. et al. ОСОБЕННОСТИ ФОРМИРОВАНИЯ
БАКТЕРИАЛЬНЫХ БИОПЛЕНОК В УСЛОВИЯХ КОСМИЧЕСКОГО ПОЛЕТА: 6 // Журнал микробиологии, эпидемиологии и
иммунобиологии. 2016. Vol. 0, № 6. P. 3-10.
13. Muhammad M.H. et al. Beyond Risk: Bacterial Biofilms and Their Regulating Approaches // Front Microbiol. 2020. Vol. 11. P. 928.
14. Guzman-Soto I. et al. Mimicking biofilm formation and development: Recent progress in in vitro and in vivo biofilm models // iScience. 2021. Vol. 24, № 5. P. 102443.
15. Ma H., Bryers J.D. Non-invasive determination of conjugative transfer of plasmids bearing antibiotic-resistance genes in biofilm-bound bacteria: effects of substrate loading and antibiotic selection // Appl Microbiol Biotechnol. 2013. Vol. 97, № 1. P. 317-328.
16. Sadiq F.A. et al. Phenotypic and genetic heterogeneity within biofilms with particular emphasis on persistence and antimicrobial tolerance // Future Microbiol. 2017. Vol. 12. P. 1087-1107.
17. Stewart P.S., Franklin M.J. Physiological heterogeneity in biofilms // Nat Rev Microbiol. 2008. Vol. 6, № 3. P. 199-210.
18. Majzoub M.E. et al. Genomic Evolution of the Marine Bacterium Phaeobacter inhibens during Biofilm Growth // Appl Environ Microbiol. Vol. 87, № 19. P. e00769-21.
19. Ikezaki S. et al. Mild Heat Stress Affects on the Cell Wall Structure in Candida albicans Biofilm // Medical Mycology Journal. The Japanese Society for Medical Mycology, 2019. Vol. 60, № 2. P. 29-37.
20. Cho T. et al. In Vitro Efficacy of Continuous Mild Heat Stress on the Antifungal Susceptibility of Candida albicans Biofilm Formation // Biological and Pharmaceutical Bulletin. 2012. Vol. 35, № 8. P. 1371-1373.
21. Cottier F. et al. The Transcriptional Stress Response of Candida albicans to Weak Organic Acids // G3 (Bethesda). 2015. Vol. 5, № 4. P. 497-505.
22. Goncalves B. et al. Environmental pH modulates bio film formation and matrix composition in Candida albicans and Candida glabrata // Biofouling. 2020. Vol. 36, № 5. P. 621-630.
23. Sun Y. et al. pH Regulates White-Opaque Switching and Sexual Mating in Candida albicans// Eukaryot Cell. 2015. Vol. 14, № 11. P. 1127-1134.
24. Huang G. Regulation of phenotypic transitions in the fungal pathogen Candida albicans// Virulence. 2012. Vol. 3, № 3. P. 251-261.
25. Parolin C. et al. Lactobacillus Biofilms Influence Anti-Candida Activity // Front Microbiol. 2021. Vol. 12. P. 750368.
26. Strus M. et al. The in vitro activity of vaginal Lactobacillus with probiotic properties against Candida.// Infect Dis Obstet Gynecol. 2005. Vol. 13, № 2. P. 69-75.
27. Vazquez-Munoz R. et al. Insights From the Lactobacillus johnsonii Genome Suggest the Production of Metabolites With Antibiofilm Activity Against the Pathobiont Candida albicans // Front Microbiol. 2022. Vol. 13. P. 853762.
28. Srivastava N. et al. Lactobacillus plantarum 108 Inhibits Streptococcus mutans and Candida albicans Mixed-Species Biofilm Formation // Antibiotics (Basel). 2020. Vol. 9, № 8. P. 478.
29. Krzysciak W. et al. Effect of a Lactobacillus Salivarius Probiotic on a Double - Species Streptococcus Mutans and Candida albicans Caries Biofilm // Nutrients. Multidisciplinary Digital Publishing Institute (MDPI), 2017. Vol. 9, № 11.
30. Honorato L. et al. Extracellular Vesicles Regulate Biofilm Formation and Yeast-to-Hypha Differentiation in Candida albicans // mBio. Vol. 13, № 3. P. e00301-22.
31. De Angelis M., Gobbetti M. Lactobacillus SPP.: General Characteristics☆ // Reference Module in Food Science. Elsevier, 2016.
32. Landete J.M. et al. Chapter 43 - Degradation of Phenolic Compounds Found in Olive Products by Lactobacillus plantarum Strains // Olives and Olive Oil in Health and Disease Prevention / ed. Preedy V.R., Watson R.R. San Diego: Academic Press, 2010. P. 387-396.
33. Salas-Jara M.J. et al. Biofilm Forming Lactobacillus: New Challenges for the Development of Probiotics // Microorganisms. 2016. Vol. 4, № 3. P. 35.
34. Aoudia N. et al. Biofilms of Lactobacillus plantarum and Lactobacillus fermentum: Effect on stress responses, antagonistic effects on pathogen growth and immunomodulatory properties // Food Microbiol. 2016. Vol. 53, № Pt A. P. 51-59.
35. Silva S. et al. Candida glabrata, Candida parapsilosis and Candida tropicalis: biology, epidemiology, pathogenicity and antifungal resistance // FEMS Microbiology Reviews. 2012. Vol. 36, № 2. P. 288-305.
36. Jones T. et al. The diploid genome sequence of Candida albicans // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 2004. Vol. 101, № 19. P. 7329-7334.
37. Ene I.V., Bennett R.J., Anderson M.Z. Mechanisms of genome evolution in Candida albicans// Curr Opin Microbiol. 2019. Vol. 52. P. 47-54.
38. Rosenberg S.M. Stress-Induced Loss of Heterozygosity in Candida: a Possible Missing Link in the Ability to Evolve // mBio. 2011. Vol. 2, № 5. P. e00200 - 11.
39. Ponde N.O. et al. Candida albicans Biofilms and Polymicrobial Interactions // Crit Rev Microbiol. 2021. Vol. 47, № 1. P. 91-111.
40. Lagree K., Mitchell A.P. Fungal Biofilms: Inside Out // Microbiol Spectr. 2017. Vol. 5, № 2. P. 10.1128/microbiolspec.FUNK-0024-2016.
41. Odds F.C., Odds F.C. Candida and candidosis. 2. ed. London: Bailliere Tindall, 1988. 468 p.
42. Trofa D., Gacser A., Nosanchuk J.D. Candida parapsilosis, an Emerging Fungal Pathogen // Clin Microbiol Rev. 2008. Vol. 21, № 4. P. 606-625.
43. Toth R. et al. Candida parapsilosis: from Genes to the Bedside // Clin Microbiol Rev. 2019. Vol. 32, № 2. P. e00111-18.
44. PubChem. Lactic Acid [Electronic resource]. URL:
https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/612 (accessed: 28.03.2023).
45. Zeise K.D., Woods R.J., Huffnagle G.B. Interplay between Candida albicans and Lactic Acid Bacteria in the Gastrointestinal Tract: Impact on Colonization Resistance, Microbial Carriage, Opportunistic Infection, and Host Immunity // Clin Microbiol Rev. Vol. 34, № 4. P. e00323-20.
46. Zangl I. et al. Human Pathogenic Candida Species Respond Distinctively to Lactic Acid Stress // J Fungi (Basel). 2020. Vol. 6, № 4. P. 348.
47. МУК 4.2.1890-04 Определение чувствительности микроорганизмов к
антибактериальным препаратам. Методические указания - docs.cntd.ru [Electronic resource]. URL: https://docs.cntd.ru/document/1200038583
(accessed: 22.05.2023).
48. O’Toole G.A. Microtiter Dish Biofilm Formation Assay // JoVE. 2011. № 47. P. 2437.
49. da Silva Sabo S. et al. Overview of Lactobacillus plantarum as a promising bacteriocin producer among lactic acid bacteria // Food Res Int. 2014. Vol. 64. P. 527-536.
50. Nettoor Veettil V., A V.C. Optimization of bacteriocin production by Lactobacillus plantarum using Response Surface Methodology // Cell Mol Biol (Noisy-le-grand). 2022. Vol. 68, № 6. P. 105-110.
51. Chaillot J., Cook M.A., Sellam A. Novel determinants of cell size homeostasis in the opportunistic yeast Candida albicans // Curr Genet. 2023. Vol. 69, № 1. P. 67-75.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.



Подобные работы


©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ