Видоидентификация и молекулярная паспортизация фитопатогенных грибов природно-трансгенных растений рода Linaria

Гомжина М.М., Проблемы идентификации грибов рода Phoma sensu lato в условиях чистой культуры, Вестник защиты растений 3(89) – 2016, 52-53
Губанов И. А., Иллюстрированный определитель растений Средней России. В 3 т. — М.: Т-во науч. изд. КМК, Ин-т технолог. иссл., 2004. Т. 3. Покрытосеменные (двудольные: раздельнолепестные). С. 181.
Лутова Л.А. Генетическая инженерия растений: свершения и надежды. Соросовский образовательный журнал, Том 6, №10, 2000.
Матвеева Т.В., Сокорнова С.В., Биологические особенности природно-трансгенных растений и их роль в эволюции, Физиология растений, 2017, том 64, № 5, с. 1–15
Полуэктова Е. В., Фитотоксические метаболиты гриба Paraphoma sp. ВИЗР 1.46 и перспективы их практического использования, диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук, ФГБНУ ВИЗР, 2015
Попкова К.В. Общая фитопатология, Общая фитопатология : учебник для вузов. 2-е изд., перераб. и доп. Дрофа 448 с.
Сокорнова С.В., Гасич Е.Л., Матвеева Т.В., Афонин А.Н. Микромицеты растений рода Linaria, содержащих в своем геноме Т-ДНК (2015) Микология и фитопатология, 49 (2): 140 - 145.
Сокорнова С.В., Гасич Е.Л., Бемова В.Д., Матвеева Т.В. Поиск и видовая идентификация патогенов природно-трансгенного вида Linaria vulgaris. Экологическая генетика. – 2018. – Т. 16. – № 1. – С. 27–34.
Хлесткина Е.К. Молекулярные маркеры в генетических исследованиях и в селекции. Вавиловский журнал генетики и селекции, 2013, Том 17, № 4/2 С. 1044-1054.
Цицин Н.В., М.Атлас лекарственных растений СССР. Медгиз, 1962. С. 14-16. 702 с.
Aveskamp M.M., Gruyter de J., Woudenberg J.H.C., Verkley G.J.M. and Crous P.W. Highlights of the Didymellaceae: A polyphasic approach to characterise Phoma and related pleosporalean genera. Studies in Mycology 2010. Vol 65. P. 1–60.
Cherieta, Mancinib I., Seghiria R., Benayachea F. and Benayachea S.. Chemical constituents and biological activities of the genus Linaria (Scrophulariaceae). Natural Product Research, 2015.
Chen K, Otten L. Natural Agrobacterium Transformants: Recent Results and Some Theoretical Considerations. Front Plant Sci. 2017.
Chen Q, Jiang JR, Zhang GZ, et al. Resolving the Phoma enigma. Stud Mycol. 2015; 82:137-217.
Chen Q., Ke Zhang, Zhang G. & Cai l., A polyphasic approach to characterise two novel species of Phoma (Didymellaceae) from China, Phytotaxa 197 (4): 267–281, 2015.
Dangre D.M., Dnyaneshwar P. R., Aniket K. G. and Mahendra K. RaiAn in Silico Molecular Evolutionary Analysis of Selected Species of Phoma : A Comparative Approach, JPB, Vol.2, 2009.
De Gruyter J., Woudenberg J.H., Aveskamp M.M., Verkley G.J., Groenewald J.Z., Crous P.W.., Revised taxonomy of Phoma and allied genera, Stud Mycol. 2013; 75(1):1-36
Fründt C., Meyer A.D., Ichikawa T., Meins F. Jr., A tobacco homologue of the Ri-plasmid orf13 gene causes cell proliferation in carrot root discs, Mol Gen Genet. 1998; 259(6):559-68.
Garnica S., Schön M.E., Abarenkov K., Riess K., Liimatainen K., Niskanen T., Dima B., Soop K., Frøslev T.G., Jeppesen T.S., Peintner U., Kuhnert-Finkernagel R., Brandrud T.E., Saar G., Oertel B., Ammirati J.F. , Determining threshold values for barcoding fungi: lessons from Cortinarius (Basidiomycota), a highly diverse and widespread ectomycorrhizal genus. FEMS Microbiol Ecol. 2016
Helfer A., Pien S., Otten L., Functional diversity and mutational analysis of Agrobacterium 6B oncoproteins. Mol Genet Genomics. 2002; 267(5):577-86.
Matveeva T.V.,Bogomaz D.I., Pavlova O.A.,Nester E.W. andLutova, L. A.(2012).Horizontal Gene Transfer from Genus Agrobacterium to the Plant Linaria in Nature. Mol.PlantMicrobeInteract. 25, 1542–1551.
Matveeva T. V. and Lutova L.A. Horizontal gene transfer from Agrobacterium to plants. Front Plant Sci. 2014; 5:326
Matveeva T.V., Sokornova S.V., Lutova L.A. Influence of Agrobacterium oncogenes on secondary metabolism of plants. Phytochem Rev. 2015; 14(3):541-554.
Nuenen M., de Ruffray P., Otten L., Rapid divergence of Agrobacterium vitis octopine-cucumopine Ti plasmids from a recent common ancestor, Mol Gen Genet. 1993; 240(1):49-57.
Rai MK, Tiwari VV, Irinyi L, Kovics GJ. Advances in Taxonomy of Genus Phoma: Polyphyletic Nature and Role of Phenotypic Traits and Molecular Systematics. Indian J Microbiol. 2013;54(2):123-128.
Shkryl Y.N., Veremeichik G.N., Bulgakov V.P., Tchernoded G.K., Mischenko N.P., Fedoreyev S.A., Zhuravlev Y.N., Individual and combined effects of the rolA, B, and C genes on anthraquinone production in Rubia cordifolia transformed calli. Biotechnol Bioeng. 2008 May 1; 100(1):118-25.
Smit S., Widmann J., Knight R., Evolutionary rates vary among rRNA structural elements. Nucleic Acids Res. 2007; 35(10):3339-54
Truong C., Mujic A.B., Healy R., Kuhar F., Furci G., Torres D., Niskanen T., Sandoval-Leiva P.A., Fernández N., Escobar J.M., Moretto A., Palfner G., Pfister D., Nouhra E., Swenie R., Sánchez-García M., Matheny P.B., Smith M.E.. How to know the fungi: combining field inventories and DNA-barcoding to document fungaldiversity. New Phytol. 2017 May;214(3):913-919
Tautz D., Hypervariability of simple sequences as a general source for polymorphic DNA markers, Nucleic Acids Res. 1989 Aug
Yahr R., Conrad L. Schoch and Bryn T. M. Dentinger, Scaling up discovery of hidden diversity in fungi: impacts of barcoding approaches, Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2016 Sep 5;

Купить